Acara I

FERMENTASI SUBSTRAT CAIR

FERMENTASI NATA DE COCO

LAPORAN RESMI PRAKTIKUM

TEKNOLOGI FERMENTASI

Disusun oleh:

Fellycia Devi P. 12.70.0109

Kelompok F5

PROGRAM STUDI TEKNOLOGI PANGAN

FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN

UNIVERSITAS KATOLIK SEOGIJAPRANATA

SEMARANG

2015

1

1. HASIL PENGAMATAN

1.1. Lapisan Nata de Coco

Data pengamatan lapisan nata de coco kloter F dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Lapisan nata de coco

Kel Tinggi awal

media (cm)

Tinggi ketebalan nata (cm) % lapisan nata (%)

0 7 14 0 7 14

F1 0,5 0 0,4 0,4 0 80 80

F2 2,0 0 0,2 0,2 0 10 10

F3 1,5 0 0,5 0,2 0 33,33 13,33

F4 1,5 0 0,3 0,3 0 20 20

F5 1,5 0 0,3 0,1 0 20 6,67

Berdasarkan Tabel 1., dapat dilihat bahwa tinggi ketebalan nata serta % lapisan nata untuk

seluruh kelompok adalah berbeda. Perbedaan ini terlihat sejak hari ke-0 hingga hari ke-7

yang mengalami peningkatan ketebalan nata. Setelah 14 hari, tinggi ketebalan nata pada

kelompok F3 dan F5 mengalami menurunan, sedangkan untuk kelompok lainnya tidak

mengalami penurunan/tetap. Persentase lapisan nata tertinggi dan terendah dimiliki oleh

kelompok F1 dan F2 yaitu 80% dan 10%.

1.2. Uji Sensori Nata de Coco

Data pengamatan uji sensori nata de coco kloter F dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 2. Uji sensori nata de coco

Kel Tinggi awal media (cm) Aroma Warna

F1 0,5 +++ +

F2 2 +++ +

F3 1,5 +++ +

F4 1,5 +++ +

F5 1,5 +++ + Keterangan:

Aroma Warna

+ : sangat asam + : kuning

++ : asam ++ : putih bening

+++ : agak asam +++ : putih agak bening

++++ : tidak asam ++++ : putih

2

Berdasarkan Tabel 2., dapat dilihat bahwa terdapat 2 atribut yang diuji pada uji sensori

nata de coco yang meliputi atribut aroma dan warna. Aroma nata de coco yang dihasilkan

pada seluruh kelompok adalah agak asam. Warna nata de coco yang dihasilkan pada

seluruh kelompok adalah kuning.

3

2. PEMBAHASAN

Pada praktikum kali ini, praktikan akan membuat fermentasi substrat cair fermentasi nata

de coco. Tujuan dilakukannya praktikum kali ini adalah untuk memahami prinsip

pembuatan nata de coco, dan praktikan dapat memanfaatkan limbah air kelapa sebagai

bahan pokok pembuatan nata de coco. Nata de coco atau bacterial cellulose (BC)

merupakan komponen selulosa atau eksopolisakarida yang didapatkan dari fermentasi air

kelapa dengan menggunakan bantuan bakteri Acetobacter xylinum (Sutarminingsih, 2004

dalam Santosa et al., 2012; Jagannath et al., 2008; Halib et al., 2012; Almeida et al.,

2013). Nata de coco biasanya digunakan untuk dessert, fruit cocktail dan fruit jellies

(Jagannath et al., 2008). Nata de coco memiliki kandungan dietary fiber yang tinggi

sehingga sangat dibutuhkan untuk tubuh, dimana dapat membantu mengontrol berat

badan, melindungi tubuh dari penyakit dan kanker kolon serta rektum (Mesomya et al.,

2006). Strain Acetobacter xylinum dapat memproduksi selulosa dan biasanya dapat

tumbuh pada substrat yang mengadung glukosa, sukrosa, fruktosa, gula invert, etanol dan

gliserol (White & Brown, 1989 dalam Jagannath et al., 2008). Acetobacter xylinum dapat

hidup pada pH 3,5 (Lapuz et al., 1967 dalam Jagannath et al., 2008). pH 4,0 5,0

merupakan pH yang optimal untuk pembentukan selulosa (Verschuren et al., 2000 dalam

Jagannath et al., 2008). Nata de coco memiliki ciri-ciri seperti berbentuk padat, berwarna

putih transparan, dan memiliki tekstur yang kenyal (Anastasia & Afrianto, 2008).

2.1. Cara Membuat Nata de Coco

Terdapat 2 tahapan dalam membuat nata de coco, yaitu pembuatan media dan proses

fermentasi. Pertama-tama, dilakukan proses penyaringan media terlebih dahulu dengan

menggunakan kain saring. Media yang digunakan pada praktikum kali ini adalah air

kelapa. Air kelapa dipilih karena cocok sebagai substrat untuk tumbuhnya Acetobacter

xylinum (Volk & Wheeler, 1993). Media yang baik untuk strain Acetobacter harus

memiliki karbohidrat, protein, vitamin dan garam inorganik (Baruque-Ramos et al., 2001

dalam Almeida, et al., 2012) Tujuan penyaringan adalah untuk memisahkan kotoran agar

didapatkan air kelapa yang bersih dan bebas dari kotoran (Pato & Dwiloka, 1994).

Kemudian, dilakukan penambahan gula sebanyak 10% dan diaduk hingga larut.

Penambahan gula ditujukan untuk memberi kondisi yang optimal untuk pertumbuhan

4

Acetobacter xylinum (Hayati, 2003). Sukrosa merupakan sumber karbon yang cocok

dalam pembuatan nata de coco karena harganya yang ekonomis dan mudah untuk

didapatkan (Pambayun, 2002; Awang, 1991). Lalu, dilakukan penambahan amonium

sulfat sebanyak 0,5%. Penambahan amonium sulfat dimaksudkan untuk menjadi sumber

nitrogen untuk tumbuhnya Acetobacter xylinum (Pambayun, 2002). Awang (1991)

menambahkan bahwa medium yang baik untuk proses fermentasi harus mengandung

sumber nitrogen karena dapat mendukung aktivitas bakteri pada proses pembuatan nata

de coco. Selain amonium sulfat, sumber nitrogen lainnya adalah protein, ekstrak yeast,

amonium fosfat, serta urea (Pambayun, 2002).

Gambar 1. Penyaringan, Penambahan Gula dan Amonium Sulfat pada Media

Selanjutnya, dilakukan penambahan asam cuka glasial hingga pH mencapai 4-5. Asam

cuka glasial diambil pada ruang asam. Pengecekan pH dilakukan dengan menggunakan

pH meter. Penambahan asam cuka glasial bertujuan untuk mendapatkan pH air kelapa

yang asam. Atlas (1984) menambahkan bahwa Acetobacter xylinum tidak dapat tumbuh

baik pada pH yang terlalu asam karena energi akan dikeluarkan secara berlebihan yang

dapat berakibat pada berhentinya proses fermentasi.

Gambar 2. Penambahan Asam Cuka Glasial pada Media

5

Selanjutnya, dilakukan pemanasan hingga seluruh bahan larut dan dilakukan penyaringan

dengan menggunakan kertas saring. Proses pemanasan bertujuan untuk membunuh

mikroorganisme kontaminan yang ada pada air kelapa (Tortora et al., 1995). Selain dapat

membunuh mikroorganisme kontaminan, pemanasan juga dapat membantu gula pasir

agar larut. Apabila gula pasir belum larut, maka gula akan sulit diserap dan dihasilkan

lapisan atau selaput yang tebal. Mikroorganisme lain dapat mengganggu aktivitas

pertumbuhan Acetobacter xylinum apabila proses pemanasan tidak dilakukan (Astawan

& Astawan, 1991).

Gambar 3. Pemanasan dan Penyaringan Media

Setelah media air kelapa dibuat, lalu dilanjutkan dengan proses fermentasi. Pertama-tama,

200 ml media steril dimasukkan ke dalam wadah dan ditutup rapat. Lalu, ditambahkan

biang nata (starter) sebanyak 10% secara aseptis. Starter yang digunakan untuk membuat

nata de coco kali ini adalah bakteri Acetobacter xylinum. Acetobacter xylinum merupakan

bakteri asam laktat yang memiliki kemampuan untuk mengoksidasi alkohol serta gula

menjadi asam asetat (Trcek, 2005 dalam Halib et al., 2012). Selama proses pembuatan

nata de coco, Acetobacter xylinum menggunakan glukosa pada air kelapa sebagai sumber

karbon dan mengubahnya menjadi selulosa ekstraseluler sebagai metabolitnya (Cannon

& Anderson, 1991 dalam Halib et al., 2012). Penambahan biang nata pada umumnya

sekitar 1-10% dari berat media (Rahayu, et al., 1993). Atlas (1984) dan Hadioetomo

(1993) menambahkan, mengenai cara untuk menghindari kontaminasi adalah dengan

metode aseptis, seperti menggunakan masker, penyemprotan alkohol pada tangan,

penggunaan api bunsen dan pemindahan kultur harus secara cepat dan dekat dengan api

bunsen. Penyemprotan alkohol pada tangan serta meja dan sekitar tempat pemindahan

kultur termasuk metode aseptis untuk mencegah kontaminasi dari udara sekitar.

6

Kemudian dilakukan pengadukan secara perlahan dan ditutup dengan menggunakan

kertas coklat. Penggunaan kertas coklat dimaksudkan untuk memberi jalan O2 untuk

dapat masuk ke wadah untuk tumbuh Acetobacter xylinum (Pambayun, 2002).

Selanjutnya dilakukan proses inkubasi selama 14 hari pada suhu ruang. Penginkubasian

selama 14 hari sudah sesuai dengan teori Rahman (1992) bahwa proses fermentasi

optimal untuk nata de coco adalah antara 10-14 hari pada suhu 28-32 oC. Fermentasi

dapat dihentikan ketika terbentuk lapisan putih pada permukaan media yang disebut nata

de coco (Halib et al., 2012).

Gambar 4. Pengkulturan Biang Nata dan Penutupan Wadah dengan Kertas Coklat

Setelah itu, pengukuran ketebalan lapisan nata de coco pada hari ke-7 dan ke-14 beserta

dengan persentase kenaikan ketebalan nata de coco. Setelah hari ke-14, dilakukan sensori

dengan bantuan panelis. Atribut yang digunakan untuk pengujian adalah aroma dan warna

nata de coco. Menurut Kartika et al., (1988) uji sensori (sensory test methods) merupakan

cara untuk mengetahui kualitas suatu bahan pangan berdasarkan pada penilaian oleh alat

inderawi manusia yang bersifat subjektif. Didukung pula oleh teori Soekarto (1981)

mengatakan bahwa pengamatan secara organoleptik menggunakan bantuan panelis yang

dimaksudkan untuk mengenalkan alat indera akan sifat suatu benda dengan adanya

rangsangan yang diterima seperti warna, rasa, bau dan lainnya. Setelah beberapa waktu,

akan terbentuk lembaran-lembaran gelatin pada permukaan fermentasi air kelapa yang

telah diberi starter Acetobacter xylinum. Lembaran tadi akan semakin tebal hingga

mencapai ketebalan 1 cm dan setelah itu dipotong menjadi kubus (Halib et al., 2012).

Persentase lapisan nata dapat dihitung dengan menggunakan rumus berikut.

% lapisan nata =tinggi ketebalan nata (cm)

tinggi media awal (cm) 100%

7

Gambar 5. Hari ke-0

Gambar 6. Hari ke-7

Gambar 7. Hari ke-14

8

2.2. Hasil Pengamatan

Berdasarkan pada data hasil pengamatan yang telah didapatkan, tinggi ketebalan nata dan

persentase lapisan nata untuk seluruh kelompok memperoleh hasil yang berbeda-beda.

Tinggi awal media pada seluruh kelompok pun berbeda dikarenakan bentuk wadah yang

digunakan tidaklah seragam, sehingga volume dan tinggi awal media yang ditambahkan

pastinya akan berbeda satu sama lain. Pada data hasil pengamatan hari ke-0 ke hari ke-7,

didapati peningkatan tinggi ketebalan nata tiap kelompok F1 hingga F5 berturut-turut

yaitu 0,4 cm, 0,2 cm, 0,5 cm, 0,3 cm dan 0,3 cm. Anastasia & Afrianto (2008) mengatakan

bahwa selama proses fermentasi berlangsung, Acetobacter xylinum memecah gula pada

media, sehingga selulosa akan terbentuk. Proses inkubasi selama 14 hari dapat

menyebabkan lapisan selulosa semakin menebal. Ketinggian nata yang optimal adalah

sekitar 1,5-2 cm dengan gel selulosa yang homogen serta memiliki transparasi yang tinggi

(Seumahu et al., 2007). Berdasarkan teori tersebut, seluruh nata kloter F tidak sesuai

dengan teori yang ada karena seluruh ketinggian nata masih dibawah 0,5 cm. Wijayanti

et al., (2010) menambahkan bahwa hal tersebut dapat terjadi karena kurangnya suplai O2

pada saat fermentasi berlangsung, sehingga pertumbuhan Acetobacter xylinum dapat

terhambat.

Namun, pada hari ke-14 didapati penurunan tinggi ketebalan nata pada kelompok F3 dan

F5, sedangkan untuk kelompok F1, F2 dan F4 tinggi ketebalan natanya tetap. Persentase

lapisan nata tertinggi dan terendah dimiliki oleh kelompok F1 dan F2 yaitu 80% dan 10%.

Hal ini kurang sesuai dengan teori Lapuz et al., (1967) yang mengatakan bahwa ketebalan

nata dipengaruhi oleh waktu inkubasi proses fermentasi. Semakin lama waktu inkubasi,

maka lapisan nata akan semakin tebal. Kemudian, penurunan ketebalan nata pada

kelompok F3 dan F5 dapat terjadi karena adanya guncangan sewaktu pengamatan

berlangsung. Sehingga, lapisan nata rusak dan tidak terbentuk lagi. Rahman (1992)

menambahkan bahwa penurunan ketebalan nata dapat terjadi karena pada saat pembuatan

media terjadi ketidaksesuaian, proses inkubasi terganggu, kurangnya suplai O2,

kurangnya nutrien, serta wadah plastik yang digunakan. Wijayanti et al., (2010)

menambahkan bahwa media fermentasi yang tidak sesuai seperti terlalu pekatnya media

dapat menghambat pembentukan selulosa. Pekatnya media juga dapat mengakibatkan

tekanan osmosis yang tinggi sehingga dapat terjadi lisis pada sel bakteri. Seluruh hasil

9

nata de coco pada kloter F dinyatakan gagal atau tidak terbentuk karena penggunaan

kultur yang digunakan tidak segar, lingkungan yang tidak steril, kurang aseptisnya saat

pengkulturan, tidak digunakannya sarung tangan serta masker pada saat pengkulturan.

Berdasarkan data hasil pengamatan uji sensori nata de coco pada atribut aroma dan

warna, didapati hasil uji sensori yang sama. Seharusnya, terdapat 4 atribut sensori yaitu

aroma, warna, tekstur dan rasa. Atribut tekstur dan rasa tidak diuji pada praktikum kali

ini karena nata de coco yang dihasilkan tidak berhasil/gagal. Pada atribut aroma, seluruh

kelompok memiliki aroma nata de coco yang agak asam. Aroma asam yang ada pada

nata de coco dikarenakan penambahan asam cuka glasial pada media. Selain itu,

pengubahan alkohol dan gula menjadi asam asetat oleh Acetobacter xylinum selama

proses fermentasi juga dapat menyebabkan aroma nata de coco menjadi asam (Fardiaz,

1992; Rahman, 1992; Trcek, 2005 dalam Halib et al., 2012). Astawan & Astawan (1991)

menambahkan bahwa terbentuknya aroma asam dapat mengindikasikan bahwa proses

fermentasi nata de coco telah berlangsung.

Kemudian, atribut selanjutnya adalah warna. Warna yang dihasilkan pada seluruh nata

de coco kloter F adalah kuning. Data yang dihasilkan pada kloter F adalah kurang sesuai

dengan teori yang dikemukakan oleh Rahman (1992) bahwa nata de coco merupakan

makanan yang berwarna putih transparan. Astawan & Astawan (1991) menambahkan

bahwa pada saat proses fermentasi beralngsung, warna keruh pada nata akan terjadi

sehingga warnanya akan menjadi putih tidak transparan. Ketidaksesuaian data hasil

pengamatan dengan teori dikarenakan kegagalan pembuatan nata de coco, sehingga

warnanya masih kuning. Selain itu, kesalahan juga bisa terjadi karena keterbatasan indera

penglihatan panelis sewaktu melakukan sensori warna nata de coco yang hampir serupa.

Pengamatan ini seharusnya dilakukan seobjektif mungkin agar akurat. Seharusnya, untuk

meningkatkan keakuratan pengamatan pada warna, dapat dilakukan dengan bantuan

chromameter untuk membantu panelis dalam mengamati warna pada kecap. Menurut

Gonnet (1999), chromameter merupakan alat bantu yang digunakan untuk mengukur

indeks warna LAB color yang diukur dengan cahaya masuk yang ditembakkan kepada

bahan yang diukur dengan bantuan chromameter. Lightness dengan nilai antara 0 dan 100

10

menunjukkan nilai gelap dan terang. Pada nilai a* (+) dan (-) mengindikasikan warna

merah dan hijau. Pada nilai b* (+) dan (-) menunjukkan warna biru dan kuning.

Faktor-faktor yang dapat mempengaruhi fermentasi nata adalah:

a. pH

pH 4,0-5,0 merupakan pH yang optimal untuk pembentukan selulosa atau nata

(Verschuren et al., 2000 dalam Jagannath et al., 2008).

b. Temperatur

Proses fermentasi optimal untuk nata de coco adalah antara 10-14 hari pada suhu 28-

32 oC. Pada suhu dan waktu fermentasi yang tepat, maka akan dihasilkan nata yang

tebal (Rahman, 1992). Fermentasi dapat dihentikan ketika terbentuk lapisan putih pada

permukaan media yang disebut nata de coco (Halib et al., 2012).

c. Gula

Gula digunakan untuk sebagai substrat dan dapat memberi kondisi yang optimal untuk

tumbuhnya Acetobacter xylinum. Penambahan gula yang tepat yaitu 10% dari berat

media cair (Hayati, 2003). Sukrosa adalah sumber karbon yang cocok dalam

pembuatan nata de coco karena harganya yang ekonomis dan mudah untuk didapatkan

(Pambayun, 2002; Awang, 1991).

d. Sumber nitrogen

Amonium sulfat digunakan sebagai sumber nitrogen untuk tumbuhnya Acetobacter

xylinum (Pambayun, 2002). Medium yang baik untuk proses fermentasi harus

mengandung sumber nitrogen karena dapat mendukung aktivitas bakteri pada proses

pembuatan nata de coco (Awang, 1991). Selain amonium sulfat, sumber nitrogen

lainnya adalah protein, ekstrak yeast, amonium fosfat, serta urea (Pambayun, 2002).

11

3. KESIMPULAN

Nata de coco adalah hasil produk fermentasi dari bakteri Acetobacter xylinum pada

media air kelapa yang diinkubasi selama 14 hari pada suhu ruang.

Prinsip pembuatan nata de coco adalah dengan membuat media air kelapa dan

melakukan proses fermentasi.

Limbah air kelapa dapat digunakan sebagai bahan utama pembuatan nata de coco.

Proses fermentasi yang terjadi selama pembuatan nata de coco adalah terbentuknya

lapisan nata di permukaan media karena adanya Acetobacter xylinum.

Acetobacter xylinum mengkonversi gula dan alkohol menjadi asam asetat selama

proses fermentasi.

Tinggi ketebalan nata de coco yang optimal adalah sekitar 1,5-2 cm.

Selama proses fermentasi dan pengkulturan, kondisi aseptis sangat direkomendasikan

agar tidak terjadi kontaminasi.

Faktor-faktor yang dapat mempengaruhi proses fermentasi adalah pH, temperatur,

gula serta kandungan nitrogen.

Semarang, 10 Juli 2015

Praktikan Asisten Praktikum,

- Nies Mayangsari

- Wulan Apriliana

Fellycia Devi Paramitha

12.70.0109

12

4. DAFTAR PUSTAKA

Almeida, D. M., R. A. Prestes., A. D. da Fonseca., A. L. Woiciechowski., dan G.

Wosiacki. (2013). Minerals consumption by Acetobacter xylinum on cultivation

medium on coconut water. Brazilian Journal of Microbiology 44(1): 197-206.

Anastasia, N. dan Afrianto, E. (2008). Mutu Nata de Seaweed dalam Berbagai

Konsentrasi Sari Jeruk Nipis. Prosiding Seminar Nasional Sains dan Teknologi II.

Universitas Lampung.

Astawan, M. dan M.W. Astawan. (1991). Teknologi Pengolahan Nabati Tepat Guna Edisi

Pertama. Akademika Pressindo. Bogor.

Atlas, R. M. (1984). Microbiology: Fundamentals and Applications. MacMillan

Publishing Company. New York.

Awang, S.A. (1991). Kelapa: Kajian SosialEkonomi. Aditya Media. Yogyakarta.

Baruque-Ramos J, Hiss H, Vicentin MA, Paz MF, Peixoto A, Leal MBB, Sato RA,

Vassoler UM, Raw I (2001) Nitrogen consumption during batch cultivation of

Neisseria meningitides (serogroup C) in frantz medium. Braz J Microbiol 32:305-310.

Cannon, R.E. & Anderson, S.M. 1991. Biogenesis of Bacterial Cellulose. Critical

Reviews in Microbiology 17(6): 435-447.

Fardiaz, S. (1992). Mikrobiologi Pangan 1. PT Gramedia. Jakarta.

Gonnet, J. (1999). Colour effects of co-pigmentation of anthocyanins revisited 2. A

colorimetric look at the solutions of cyanin co-pigmented by rutin using the CIELAB

scale. Food Chemistry.

Hadioetomo, R. S., (1993). Mikrobiologi Dasar Dalam Praktek. PT Gramedia Pustaka.

Jakarta.

Halib, N., M. C. Iqbal., M. Amin., dan I. Ahmad. (2012). Physicochemical properties and

characterization of nata de coco from local food industries as a source of cellulose.

Sains Malaysiana. 41(2): 205-211.

Hayati, M. (2003). Membuat Nata de Coco. Adi Cita Karya Nusa. Yogyakarta.

13

Jagannath, A., A. Kalaiselvan., dan S. S. Manjunatha. (2008). The effect of pH, sucrose

and ammonium sulphate concentration on production of bacterial cellulose (nata-de-

coco) by Acetobacter xylinum. World J. Microbiol. Biotechnol. 24:2593-2599.

Kartika, B; P. Hastuti dan W. Supartono. (1988). Pedoman Uji Inderawi Bahan Pangan.

PAU Pangan dan Gizi UGM. Yogyakarta.

Lapuz MM, Gallardo EG, Palo MA (1967) The nata organismcultural requirements,

characteristics and identity. Philipp J Sci 96(2):91108.

Mesomya, W., V. Pakpeankitvatana., S. Komindr., P. Leelahakul., Y. Cuptapun., D.

Hengsawadi., P. Tammarate., dan P. Tangkanakul. (2006). Effect of health food from

cereal and nata de coco on serum lipids in human. Songklanakarin J. Sci. Technol., 28:

23-28.

Pambayun, R. (2002). Teknologi Pengolahan Nata de Coco. Kanisius. Yogyakarta.

Pato, U. dan Dwiloka, B. (1994). Proses dan Faktor Yang Mempengaruhi Pembentukan

Nata de Coco. Sains Teks I (A): 70 77.

Rahayu, E.S.; Indriati, R.; Utami, T.; Harmayanti, E. dan Cahyanto, M.N. (1993). Bahan

Pangan Hasil Fermentasi. UGM. Yogyakarta.

Rahman, A. (1992). Teknologi Fermentasi. ARCAN Pusat Antar Universitas Pangan dan

Gizi IPB. Bandung.

Santosa, B., Kgs. Ahmadi., dan D. Taeque. (2012). Dextrin concentration and carboxy

melthyl cellulosa (CMC) in making of fiber-rich instant beverage from nata de coco.

IEESE Int. J. of Sci. and Technol. Vol 1. No. 1. 6-11.

Seumahu, Cecilia Anna, Antonius Suwanto, Debora Hadisusanto, dan Maggy

Thenawijaya Suhartono. (2007). The Dynamics of Bacterial Communities During

Traditional Nata de Coco Fermentation. Microbiology Indonesia, August 2007, p 65-

68.

Soekarto, S. T. (1981). Penilaian Organoleptik untuk Industri Pangan dan Hasil Pertanian.

PUSBANGTEPA / Food Technology Development Center. IPB. Bogor.

Sutarminingsih. (2004). Business Opportunity Nata de Coco. Publisher Canisius.

Yogyakarta

14

Tortora, G.J., Funke, R. and Case, C.L. (1995). Microbiology. The Benjamin/Cummings

Publishing Company, Inc. USA.

Trcek, J. 2005. Quick identification of acetic acid bacteria based on nucleotide sequences

of the 16S-23S rDNA internal transcribed spacer region and of the PQQ-dependent

alcohol dehydrogenase gene. Systematic and Applied Microbiology 28(8): 735-745.

Verschuren PG, Carodona TD, Nout MJR, de Gooijer KD, van den Heuvel JC (2000)

Location and limitation of cellulose production by Acetobacter xylinum established

from oxygen profiles. J Biosci Bioeng 89(5):414419. doi:10.1016/S1389-1723(00) 89089-1.

Volk, W.A. and M.F. Wheeler. (1993). Mikrobiologi Dasar. Erlangga. Jakarta.

White DG, Brown RM Jr (1989) Prospects for the commercialization of the biosynthesis

of microbial cellulose. In: Schuerech C (ed) Cellulose and wood-chemistry and

technology. Wiley, New York.

Wijayanti, F; Sri K; dan Masud E. (2010). Pengaruh Penambahan Sukrosa dan Asam Asetat Glacial terhadap Kualitas Nata dari Whey Tahu dan Substrat Air Kelapa. Jurnal

Industria 1(2) : 86-93.

15

5. LAMPIRAN

5.1. Perhitungan

Persentase Lapisan Nata = 100%x Awal Media Tinggi

NataKetebalan Tinggi

Kelompok F1

H0 % Lapisan Nata = 100%x 0,5

0 = 0

H7 % Lapisan Nata = 100%x 0,5

0,4 = 80

H14 % Lapisan Nata = 100%x 0,5

0.4

= 80

Kelompok F2

H0 % Lapisan Nata = 100%x 2

0 = 0

H7 % Lapisan Nata = 100% x 2

0,2 = 10

H14 % Lapisan Nata = 100% x 2

0,2 = 10

Kelompok F3

H0 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0 = 0

H7 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0,5 = 33,33

H14 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0,2

= 13,33

Kelompok F4

H0 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0 = 0

H7 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0,3 = 20

H14 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0,3

= 20

Kelompok F5

H0 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0 = 0

H7 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0,3

= 20

H14 % Lapisan Nata = 100%x 1,5

0,1

= 80

5.2. Laporan Sementara

5.3. Jurnal