BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1. Gambaran Umum Amphibia

Amphibia berasal dari kata Amphi yang artinya rangkap, dan bios yang

artinyakehidupan. Dan amphibia adalah hewan yang hidup dengan dua bentuk

kehidupan,mula-mula dalam air tawar kemudian dilanjutkan di darat. Fase kehidupan di

dalam air  berlangsung sebelum alat reproduksinya masak, keadaan ini merupakan fase larva

atau biasa disebut berudu. Hewan dewasa memiliki columna vertebralis dan biasa

extremitatesdengan digiti atau jari-jari yang berbeda-beda, sedang kulitnya lembut dan tidak

berambut,tidak bersisik atau tidak berbulu. (Radiopoetro 1996).

Gambar 1, Ciri-ciri Amphibia.

Amphibia memiliki kelopak mata dan kelenjar air mata yang berkembang baik. Pada

mata terdapat membrana nictitans yang berfungsi untuk melindungi mata dari debu,

kekeringan dan kondisi lain yang menyebabkan kerusakan pada mata. Sistem syaraf

mengalami modifikasi seiring dengan perubahan fase hidup. Otak depan menjadi lebih besar

dan hemisphaerium cerebri terbagi sempurna. Pada cerebellum konvulasi hampir tidak

berkembang. Pada fase dewasa mulai terbentuk kelenjar ludah yang menghasilkan bahan

pelembab atau perekat. Walaupun demikian, tidak semua amphibi melalui siklus hidup dari

kehidupan perairan ke daratan. Pada beberapa amphibi, misalnya anggota Plethodontidae,

tetap tinggal dalam perairan dan tidak menjadi dewasa. Selama hidup tetap dalam fase

berudu, bernafas dengan insang dan berkembang biak secara neotoni. Ada beberapa jenis

amphibi lain yang sebagian hidupnya berada di daratan, tetapi pada waktu tertentu kembali ke

air untuk berkembang biak. Tapi ada juga beberapa jenis yang hanya hidup di darat selama

hidupnya. Pada kelompok ini tidak terdapat stadium larva dalam air (Duellman 1986).

Vertebrata pertama di darat adalah anggota kelas Amphibia. Saat ini kelastersebut

diwakili oleh kurang lebih 4000 spesies katak, salamander, dan caecilian (makhluk tak

bertungkai yang membuat lubang untuk sarang di hutan tropis dandanau air tawar. Terdapat

tiga ordo Kelas Amphibia yang masih hidup saat ini, yaitu Urodela (berekor ± salamander);

Anura (tidak berekor ± katak, termasuk bangkong); dan Apoda (tak berkaki ±  caecilian).

Hanya ada sekitar 400 spesies dari ordo Urodela.Beberapa di antaranya hanya hidup di air,

tetapi yang lain hidup di darat sebagaihewan dewasa atau bahkan sepanjang masa kehidupan.

Sebagian besar salamander yang hidup di darat berjalan dengan pembengkokan badan dari

sisi ke sisi yang miripdengan cara berjalan tetrapoda awal.

Gambar 2. Jenis-jenis amphibia.

2.2. Metoda Inventarisasi Amphibia

Mengingat keanekaragaman spesies dan jumlah hewan yang berada di daerah tropis

jauh lebih banyak di bandingkan dengan daerah temperatur dan daerah beriklim dingin.

Untuk beberapa tujuan yang praktis, ada suatu cara penentuan untuk mendukung indeks

keanekaragaman suatu habitat/komunitas tanpa harus mengetahui nama masing-masing jenis

hewan sama atau tidak/berbeda pada pola pengurutan pengambilan sampel yang dilakukan

secara aacak pada saat pengamatan di laboratorium atau di lapangan secara langsung, metode

itu dikemukakan oleh Kennedy pada tahun 1997 ( Lakitan, 1994 ).

Secara umum ada ada dua metode yang digunakan untuk menghitung kerapatan dan

jumlah amfibi, yaitu metode langsung (direct) dan metode tidak langsung (indirect).

Sampling langsung amfibi meliputi pengamatan hewan yang ada di lokasi sampel. Sedangkan

sampling tidak langsung dilakukan dengan cara memperoleh informasi spesies tanpa melihat

hewan itu secara langsung, misalnya melalui jejak atau suara (Bismark, 2010).

Pitfall trap adalah sebuah teknik sampling yang banyak digunakan dalam studi

kejadian musiman, untuk memeriksa distribusi spasial pola, untuk membandingkan

kelimpahan yang relatif di berbagai micro-habitats, untuk mempelajari irama kegiatan harian,

dan dalam survei. komunitas Penggunaan pitfall perangkap adalah dianggap oleh binatang

panel kajian penelitian satwa liar kelompok penasehat berikut keprihatinan dibesarkan ke

panelis mengenai penggunaan formalin sebagai sebuah membunuh agen di basah pitfall

perangkap. Solusi seperti formalin yang digunakan dalam basah pitfall perangkap karena

mereka melestarikan spesimen, tidak karena mereka manusiawi. Tidak ada rapid kehilangan

kesadaran sebelum tenggelam dan melestarikan (Anonim1, 2012).

Pitfall trap merupakan adaptasi oleh ahli ekologi dari teknik berburu yang umum:

penggunaan lubang di tanah di mana binatang jatuh dan tidak dapat melarikan diri. Pitfall

trap oleh ahli ekologi ini pada dasarnya terdiri dari wadah kaca, plastik atau logam,

tenggelam ke dalam tanah sehingga mulut adalah tingkat dengan permukaan tanah. Banyak

hewan tanah jatuh ke dalam perangkap dan tidak melarikandiri (Gist,1973).

Pitfall trap kering digunakan untuk mengumpulkan reptil atau katak dijelaskan oleh

Harold Cogger seperti umumnya terdiri "dari botol, kaleng atau drum yang terkubur di dalam

tanah dengan bibirnya sejajar dengan permukaan tanah. Bukaan dilindungi oleh tutup sedikit

terangkat, untuk mencegah predator dan mencegah hewan terjebak terlalu panas (siang hari)

atau tenggelam (saat hujan) (Gist, 1973)

Lubang perangkap dan corong dengan pagar melayang secara luas digunakan untuk

menangkap amfibi dan reptil, dan ini adalah satu-satunya metode yang direkomendasikan

untuk kelompok persediaan di habitat darat. Papan penutup Tiruan telah digunakan untuk

menilai kelimpahan relatif, tetapi efektivitas teknik ini dan penggunaan spesies-spesifik

microhabitats buatan belum dikembangkan untuk spesies lain. Kuadrat dan transek pencarian

habitat darat dapat digunakan jika hewan berada di permukaan, tetapi efektivitas pencarian

tersebut belum ditunjukkan untuk spesies ini (Jones 1986).

Kegunaan pitfall trap untuk pengambilan sampel populasi hewan (Southwood, 1978):

1. Menangkap spesies yang sulit untuk didapatkan dengan metode lain;

2. Memperkirakan kelimpahan relatif dan kekayaan spesies atau untuk menangkap jenis

hewan tertentu;

3. Menentukan pola pergerakan individu hewan.

Pitfall trap adalah metode relatif memperkirakan jumlah hewan dan spesies, sehingga

tidak dapat digunakan untuk memperkirakan ukuran populasi absolut atau kekayaan spesies

keseluruhan daerah. Ini menghasilkan sebuah "index" dimana beberapa daerah dapat

dibandingkan. Ini adalah "pasif" bentuk sampling yang bergantung pada hewan daripada

pengamat membuat tindakan yang mengarah untuk menangkap dan pencacahan (Jansen,

1979).

Untuk amfibi di fase terestrial, perangkap perangkap dapat disusun secara sistematis

dalam grid dalam habitat yang akan dijadikan sampel, dalam kombinasi dengan pagar

melayang, atau dalam array dengan kedua pagar drift dan perangkap corong (Campbell dan

Christman 1982). Atau, melayang pagar dan perangkap corong dapat digunakan tanpa

perangkap perangkap. Pagar hanyut selaras dengan cara yang dirancang untuk mencegat

hewan ketika mereka bergerak, dan untuk mengalihkan mereka ke dalam perangkap.

Pemilihan desain dan konfigurasi dari perangkap perangkap / pagar array akan ditentukan

oleh tujuan penelitian dan jenis. "Array Standard" terdiri dari perangkap yang ditempatkan di

kedua ujung pagar 5 m, dengan perangkap corong ditempatkan di tengah pagar, dan dengan

array ditempatkan di seluruh wilayah triad studi (Corn, 1994).

Gambar 3. Ilustrasi susunan pitfall trap amphibia.

Perangkap dan pagar telah ditempatkan dengan benar atau sebagian mengelilingi

kolam penangkaran dan danau kecil, untuk sampel amfibi pindah ke dan dari daerah

peternakan misalnya. Namun hal ini tidak dianjurkan di sini untuk penilaian kelimpahan

relatif. Hal ini lebih efisien untuk menilai kelimpahan relatif antara kolam dengan survei

sistematis dan larva (Dodd and Scott, 1994).

Gambar 3. Contoh pagar dalam pitfall trap.

Gambar 4. Contoh pembuatan pitfall trap.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim1. 2012. Amfibia. http://id.wikipedia.org/. Diakses pada tanggal 27 November 2012

pukul 18.00 WIB.

Bismark, M. 2011. Prosedur Operasi standar (SOP) untuk Keragaman Jenis pada Kawasan

Konservasi Survei Prosedur. Kementrian Kehutanan Indonesia. Bogor.

Campbell, H.W., and S.P. Christman. 1982. Field techniques for herpetofaunal community

analysis.

Corn, P. S. 1994. Straight-line drift fences and pitfall traps. Smithsonian Institution Press,

Washington, D.C

Dodd, C.K., Jr. and D.E. Scott. 1994. Drift fences encircling breeding sites.Standard methods

for amphibians. Smithsonian Institution Press, Washington.

Duellman, W. E. and L. Trueb. 1986. Biology of Amphibians. McGraw – Hill Book

Company. New York

Gist, C.S. and Crossley, D.A. (1973) A method for quantifying pitfall trapping.

Jansen, M.J.W. and Metz, J.A.J. (1979) How many victims will the pitfall make? Acta

Biotheoretica

Jones, K.B. 1986. Amphibians and reptiles. Pages 267-290 In A.Y. Cooperrider, R.J. Boyd,

and H.R. Stuart (eds). Inventory and monitoring of wildlife habitat. U.S. Dept.

Interior, Bur. Land Management, Denver, CO.

Lakitan, B. 1994. Ekologi. PT. Raja Grafindo Persada : Jakarta

Radiopoetro.1996. Zoologi. Jakarta

Southwood, T.R.E. (1978) Ecological methods. Chapman and Hall. London. 524pp.