optimasi fer.batch
DESCRIPTION
Fermentasi BatchTRANSCRIPT
OPTIMASI FERMENTASI BATCH
Selama pengembangan proses batch, parameter pertumbuhan utama dapat ditentukan
yang memungkinkan produksi produk mikroba yang diberikan kepada dioptimalkan apakah
biomassa sendiri atau-spesifikasi c metabolit Parameter penting adalah hasil koefisien (Y)
yang ditentukan pada dasar kuantitas gizi rate limiting, biasanya sumber karbohidrat diubah
menjadi produk mikroba. Dalam hal biomassa, itu didefinisikan sebagai:
Pertumbuhan yang berkelanjutan kinetika
Awalnya, fermentasi kontinyu mulai sebagai budaya batch, namun pertumbuhan
eksponensial kemudian dapat diperpanjang inde fi nitely, dalam teori, melalui penambahan
terus menerus dari medium fermentasi segar.Reaktor terus diaduk dan volume konstan
dipertahankan dengan memasukkan over flow weir atau perangkat meratakan lain
(Fig.2.4). Media segar terus ditambahkan dan memindahkan volume yang sama
menghabiskan kaldu fermentasi dan sel-sel pada tingkat yang sama sebagai media segar
diperkenalkan. Kondisi steady state berlaku, di mana laju pertumbuhan sel mikroba sama
dengan tingkat di mana sel-sel yang mengungsi dari kapal.Seperti fermentasi batch, tingkat
yang spesifik di mana mikroorganisme tumbuh dalam budaya terus menerus dikendalikan
oleh ketersediaan hara tingkat-membatasi. Oleh karena itu, laju penambahan media segar
mengontrol tingkat di mana mikroorganisme tumbuh. Namun, tingkat pertumbuhan
sebenarnya tidak hanya tergantung pada fl ow tingkat volumetrik dari media ke dalam
reaktor, tetapi juga pada tingkat pengenceran (D). Ini sama dengan jumlah volume reaktor
melewati reaktor per satuan waktu dan dinyatakan dalam satuan waktu timbal balik, per jam.
Tingkat pertumbuhan dan tingkat hilangnya sel dari fermentor akan ditentukan oleh tingkat
masukan media. Jika tingkat pengenceran meningkat di atas , Mencuci-out lengkap dari sel
terjadi, karena sel-sel memiliki insufisiensi waktu fi sien untuk 'ganda' sebelum dicuci dari
reaktor melalui atas aliran. Titik di mana ini hanya dihindari disebut sebagai tingkat
pengenceran kritis. Akibatnya, konsentrasi substrat sisa dalam reaktor dikontrol oleh tingkat
pengenceran. Setiap perubahan ini hasil tingkat pengenceran dalam perubahan tingkat
pertumbuhan sel-sel yang akan tergantung pada ketersediaan substrat pada tingkat
pengenceran baru. Dengan demikian, pertumbuhan dikendalikan oleh ketersediaan nutrisi
tingkat-membatasi.
Sistem ini, di mana konsentrasi nutrisi tingkat-membatasi memasuki sistem adalah
yang tetap, sering digambarkan sebagai chemostat, sebagai lawan untuk beroperasi
sebagai turbidostat, di mana nutrisi dalam medium tidak membatasi. Dalam hal ini
kekeruhan atau absorbansi budaya dimonitor dan dijaga pada nilai konstan dengan
mengatur tingkat pengenceran, yaitu konsentrasi sel tetap konstan. Pada tingkat
pengenceran rendah dengan konsentrasi substrat yang tetap, konsentrasi substrat sisa akan
rendah. Namun, seperti D pendekatan Mmax sisa meningkat konsentrasi substrat seiring
dengan laju pertumbuhan mikroorganisme. Selain Dcrit, konsentrasi substrat masukan akan
sama konsentrasi output, karena semua sel telah hilang dari sistem.Dengan demikian,
reaktor kontinu ini dapat digambarkan sebagai chemostat.The tinggi konsentrasi pakan
mengatur diri sendiri terbatas nutrisi, semakin besar konsentrasi biomassa dan konsentrasi
substrat sisa tetap konstan. Namun, semakin tinggi tingkat pengenceran, semakin cepat sel-
sel tumbuh, yang menghasilkan peningkatan simultan dalam konsentrasi substrat sisa dan
pengurangan konsekuen dalam konsentrasi biomassa mapan.
Metode penghitungan mikroskopis langsung
Jumlah sel dalam suspensi dapat diukur, kecuali untuk organisme filamen,
berdasarkan mikroskopis langsung jumlah, menggunakan Petroff-Hauser atau Neubauer -
jenis hitung ruang. Yang pertama adalah lebih cocok untuk menghitung bakteri.
Counter sel Elektronik
Electronic peralatan penghitungan sel juga cepat, tapi kebanyakan metode yang
lebih cocok untuk yang lebih besar uniseluler mikroba, seperti ragi, protozoa dan beberapa
ganggang, dan kurang berguna untuk memperkirakan bakteri. The Coulter
counter ,misalnya, digunakan untuk menghitung dan partikel ukuran, dan berdasarkan
pengukuran perubahan listrik yang dihasilkan oleh partikel non-konduktif ditangguhkan
dalam elektrolit. Metode ini melibatkan menggambar sebuah suspensi dari sel melalui
aperture kecil di mana arus listrik dipertahankan. Sebagai sel melewati melalui aperture
yang dipindahkan Volume sendiri pemilu trolyte dan perubahan hambatan listrik. Maskapai
perubahan terdeteksi dan dikonversi ke pulsa dihitung. Namun, pada dasarnya menghitung
partikel, dan quences berkala rentan terhadap kesalahan karena sel-sel menggumpal dan
adanya puing-puing partikulat.
Teknik Penghitungan Plat
Metode plate counting mendeteksi sel yang dapat bertahan hidup yang ditandai dengan
terbentuknya koloni pada medium padat. Dua metode yang sering digunakan adalah metode
tebar dan metode tuang.
Pada metode tebar, 0,1 mL sampel ditebar pada permukaan medium agar menggunakan
alat penyebar yang steril. Kemudian cawan disimpan pada suhu pertumbuhan optimal.
Semua koloni harus terpisah dengan baik dan mudah dihitung. Karena mikroorganisme
dengan toleransi rendah terhadap oksigen tidak dapat tumbuh, maka metode tuang lebih
sering digunakan. Biasanya 1 mL sampel diletakkan pada cawan petri yang sudah dicampur
dengan medium agar pada suhu 48-50°C dan memadat ketika diinkubasi. Hasil dari metode
tuang, perkembangan koloni mikroba seluruhnya terjadi di agar. Organism dengan toleransi
oksigen rendah dapat tumbuh. Koloni dari organism aerobic sering mempunyai ukuran yang
berubah-ubah dan tumbuh di dekat permukaan untuk mendapatkan asupan oksigen. Oleh
karena itu, sering kesulitan ketika ingin melihat persamaan morfologi antara koloni yang ada
di permukaan dengan yang ada di agar dan juga pehitungannya lebih sulit daripada metode
tebar. Perawatan media menentukan agar medium tidak terlalu panas, jika tidak beberapa
sel mikroba bisa terluka dan lambat dalam membentuk koloni atau bahkan mati.
Hasil yang tercatat, cawan hanya mengandung 30-300 koloni. Perhitungan konsentrasi sel
di sampel awal di masukkan ke dalam data pelarutan volume cawan. Kedua metode
tersebut diukur dalam satuan colony-forming unit (CFU). Hal ini bisa jadi tidak sama
dengan jumlah sel tergantung pada luasnya sekumpulan koloni dan morfologi selular
mikroorganisme. Teknik ini akurat tetapi membutuhkan minimal 1-2 hari inkubasi sebelum
koloni dapat dihitung.
Teknik turbidimetri dan spektofotometri
Metode ini sederhana, cepat dan cocok untuk memperkirakan total biomass. Metode ini
biasanya dilakukan pada panjang gelombang spesifik untuk setiap mikroorganisme. Metode
turbidimetri mengukur cahaya yang dihamburkan oleh suspensi sel, yang sebanding dengan
konsentrasi sel, sedangkan spektrofotometri menggunakan absorbansi dari suspensi sel.
Metode turbidimetri dan spektrofotometri membutuhkan kurva kalibrasi, yang disiapkan
menggunakan suspensi sel standard yang mengandung konsentrasi sel dan harus hati-hati
ketika menafsirkan hasil jika fermentasi mengandung partikulat.
Perkiraan berat kering
Metode ini menentukan berat dari total sel baik yang hidup maupun yang mati dalam sampel
kultur cair. Metode ini meliputi pemisahan biomass dari volume suspensi sel homogeny yang
sudah diketahui. Biasanya, hasil bisa didapatkan dengan penyaringan di bawah keadaan
vakum melalui penyaring membran dengan ukuran pori sebesar 0,2 µm atau µm. Penyaring
yang berisi kumpulan sel ‘dicuci’ dengan air untuk menghilangkan sisa medium
pertumbuhan dan dikeringkan sampai beratnya konstan di dalam oven dengan suhu 105°C.
Biasanya, hasilnya dinyatakan dalam mg sel/mL kultur. Tidak bisa dipungkiri kalau ada
bahan non suspensi yang ikut tersaring dan menyebabkan error. Batasan selanjutnya
adalah waktu yang dibutuhkan untuk mendapatkan hasil akhir dan volume sampel yang
relative tinggi dibutuhkan untuk mendapatkan biomass supaya berat yang didapatkan lebih
akurat.
ATP bioluminometri
ATP lepas dari sel yang telah mati dan sangat bermanfaat dalam penentuan konsentrasi
mikroorganisme yang bertahan hidup. Jumlah ATP dalam sampel dapat diukur
menggunakan ATP bioluminometer. Teknik ini memanfaatkan enzim-substrat kompleks,
seperti luciferase-luciferin yang didapatkan dari kunang-kunang, Photinus pyralis, yang
dapat menghasilkan cahaya foton pada setiap molekul ATPnya. Ketika cairan luciferase-
luciferin ditambahkan pada ekstrak ATP dari sampel suspensi sel, cahaya yang dikeluarkan
dapat dideteksi oleh bioluminometer. Hasilnya berupa sinyal yang dapat dibaca dan
dinyatakan sebagai keluaran data digital.
ATP + O2 + luciferin oxyluciferin + AMP + CO2 + PPi + cahaya foton (562
nm)
Prosedur ini sangat cepat dan sensitif. Alat ini dapat mendeteksi sampai 10 femtomol
ATP (1 femtomol = 10-15mol). ATP bioluminometer adalah alat yang paling cocok untuk
mengukur sampel yang tidak berwarna secara langsung. Karena metode ini sangat sensitif,
sampel sangat membutuhkan pelarutan.
Perkiraan secara on-line
Pengawasan fermentor secara on-line memberikan perkiraan biomass pada waktu yang
sebenarnya dan meminimalisir analisis ulang. Sistem pengawasan meliputi densitas optic
atau kapasitas pemeriksaan dan juga pada kebanyakan proses fermentasi, mikroorganisme
membutuhkan oksigen dan menghasilkan karbondioksida. Dalam kasus tersebut, secara
teori dapat menentukan hubungan antara faktor dan konsentrasi biomass dalam reactor.
Oleh karena itu, perkiraan konsentrasi biomass dan produk pembentukan dapat dibuat
lucifera
dengan mengukur parameter-parameter tersebut menggunakan detektor karbondioksida
atau oksigen dan biosensor yang ditangkap oleh komputer. Metode ini memberikan
perkiraan akurat dari konsentrasi biomass.
Pemantauan pertumbuhan mikroba dalam kultur
Selama fermentasi sebuah, metode yang diperlukan untuk penentuan rutin populasi
mikroba, jumlah sel dan / atau biomassa, dalam rangka untuk memonitor
kemajuannya. Banyak metode langsung dan tidak langsung yang tersedia untuk tujuan
ini. Prosedur langsung melibatkan penentuan berat kering, menghitung sel dengan
mikroskop dan menghitung piring metode. Metode tidak langsung meliputi turbidimetri,
spektrofotometri, estimasi komponen sel (protein, DNA, RNA atau ATP), dan pemantauan
online produksi karbon dioksida atau pemanfaatan oksigen.