Nekropsi pada Reptildrh. Andreas Bandang Hardian, MVSc.

2020

Tujuan dan Rekomendasi Referensi

• Mampu menjelaskan konsep nekropsi dan tujuannya

• Mampu melakukan nekropsi pada berbagai jenis reptil

• Mampu membuat deskripsi morfologi lesi dan diagnosis morfologi

• Mampu menuliskan laporan kasus

Konsep Nekropsi

Pemeriksaan menyeluruh dan dokumentasi bangkai yang betujuan untuk mengetahui penyebab dan cara kematian.

“No matter how you look at it, the death of ananimal is unfortunate. What is truly unfortunate,however, is failure to take the opportunity tolearn from the death of that animal. That is thevalue of a necropsy.” (Jacobson, 2017)

Max

ie&

Mill

er,2

01

5

Manfaat mengetahui penyebab kematian???

Diagnosis Morfologi

DAMN IT IV!Degenerative

Anomaly

Metabolic

Neoplastic, necrosis

Inflammatory, infectious, idiopathic

Traumatic, toxic

Vascular

• Dipengaruhi suhu, kelembapan, adiposa, penyakit (darat, air, freezing)

• Dekomposisi (autolisis→imbibisipigmen)

• Rigor mortis (kaku bangkai)

• Algor mortis (penurunan suhu)

• Livor mortis (hipostasis darah, postmortem clot)

• Perubahan perimortem/agonal (kongesti postmortem, rupturkapiler, surfaktan berbusa di trakhea)

Perubahan Postmortem

Nekropsi pada Reptil

• Kumpulkan informasi! (owner, BKSDA, KKP, keeper, dll).

• Pada hewan dilindungi, perlukoordinasi dengan BKSDA.

• Jangan lakukan pemindahanbangkai sebelum verifikasi! Dokumentasikan!

• Informasi umum1. Waktu temuan/kematian2. Preservasi3. Kode kondisi karkas4. Sinyalemen5. Pakan dan populasi6. Mortalitas/morbiditas

Kumpulkan informasi

Persiapan nekropsi

Pemeriksaan eksternal

Pemeriksaan internal

Bedah bangkai

Sampling

Disposal

Sterilisasi

Pelaporan

Nekropsi Ular

1. Identifikasi jenis ular. Venom atau non-venom??? Identifikasi sisik?

2. Timbang berat dan morfometritubuh ular. BCS???

3. Inspeksi sisik dan mukosa, palpasi sepanjang badan. Parasit? Lesi? Status ekdisis?

4. Foto tubuh ular dan bagianyang mengalami lesi bersamadengan Nomor Protokol

Pemeriksaan Eksternal

Hif

um

iet

al.,

20

15

Proteroglypha Solenoglypha Ophistopglypha

Ho

ngk

on

gSn

akeI

D.c

om

,20

20

Ch

anh

om

eet

al.,

20

10

Lycodon subcinctus Bungarus candidus

Nekropsi Ular

1. Posisikan ular rebah dorsal. Ular berbisa→tutup dan amankan kepalanya!

2. Insisi dari kloaka ke ventral mandibula3. Preparir trachea dan esofagus dari dinding

dorsal ke arah kaudal

Nekropsi Ular

Membuka Rongga Badan

Farris et al., 2013

Jacobson, 2007

Topografi Organ Internal Ular

Martinson, 2013

• Airsac, fungsinya?• Lambung• Intestinum• V. fellea (di luar hepar)• Lien (dekat v. fellea)• Pankreas (dekat v. fellea)

• Ren (lobus dexter lebihkranial)

• Intestinum - kloaka• Gonad (kaudal v. fellea)• Adrenal• Hemipenis

• Tiroid• Trakhea• Esofagus• Jantung• Pulmo (lobus dexter lebih besar)• Hepar (terbagi oleh v. cava caudalis)

a. organ masif: inspeksi perubahanwarna & lesi permukaan, palpasikonsistensi, buat irisanmelintang/membujur untukinspeksi parenkim korteks &medulla

b. organ tubuler/ berlumen:inspeksi perubahan warna & lesidi tunika serosa/adventisia, buatirisan 2-5 cm pada organ tubulerdan lihat perubahan padamukosa (sisakan organ tetappada bentuk tubuler untukpemeriksaan histopatologi)

c. Amati jaringan adiposa!

Berlaku untuk semua jenis hewan!

Nekropsi Ular

Pemeriksaan Organ Internal

Jaco

bso

n,2

00

7

Martinson, 2013

Mar

tin

son

,20

13

Jaco

bso

n,2

00

7

Jaco

bso

n,2

00

7

• Prinsip yang samadigunakan untuk nekropsikadal, biawak, iguana, dan sejenisnya.

• Pemeriksaan Eksternal1. Identifikasi jenis buaya.

Caranya???2. Timbang/estimasi berat

dan morfometri tubuhbuaya

3. Inspeksi sisik dan mukosa, palpasisepanjang badan. Parasit? Lesi? Anomali?

Nekropsi Buaya

Environment Canada, 1995

1. Insisi kloaka→ ventral mandibula.

2. Insisi ujung sternum kekanan dan kiri mengikutilengkung costae terakhir.

3. Buka abdomen → insisimuskulus dari costae terakhirke arah caudal.

4. Buka thorax → potong costa kanan dan kiri ke arah cranial pada costochondral junction.

5. Keluarkan pluck (trachea, pulmo, jantung) denganpreparir dari lidah ke arahpulmo.

Nekropsi Buaya

Membuka Rongga Badan 1 2, 3 4

5

WR

CJo

gja,

20

18

Topografi Buaya

PseudodiafragmaCor (4 ruang)HeparIntestinum

Pulmo berada di dorsal heparGastriumIntestinum

Ren dan gonad Fat body

Do

kum

enta

si:

drh

. Rio

Rah

adia

n

Topografi Buaya: Jantung

Inspeksi Jantung (ikuti arah aliran darah)

1. Potong 1/3 apex cordis. Amati ketebalan myocardium VD:VS = 1:3

2. Insisi AD. Potong VD arah vena cava.

Insisi arah vena cava & arteri pulmonalis.

Amati abnormalitas e.g. anomali, radang.

3. Insisi AS. Potong VS arah aorta.

Insisi arah vena pulmonalis & aorta.

Amati abnormalitas e.g. anomali, radang.

Inte

rnat

ion

al V

eter

inar

ian

s in

No

rth

Am

eric

a, 2

01

5

Topografi Buaya: Jantung

Co

cod

ileSp

ecia

list

Gro

up

, 20

20

.

Nekropsi Penyu

Pemeriksaan Eksternal

Flint et al., 2009; Copyright: Environmental Protection Agency,Queensland.

1. Identifikasi jenis kura-kura ataupenyu. Caranya???

2. Timbang berat dan morfometritubuh kura-kura atau penyu. BCS??

3. Inspeksi sisik/schute dan mukosa, palpasi sepanjang badan. Tag, microchip, notches. Parasit? Lesi? Anomali?

4. Kondisi Karkas (sistem kode D)

Nekropsi Penyu

Membuka Plastron Inspeksi Organ Internal

Flin

tet

al.,

20

09

1. Buat insisi dengan pisau tajam pada jaringanlunak sambungan antara sisik marginal dan sisikinframargainal (perbatasan plastron-karapas) hingga seluruh plastron terangkat.

2. Pisahkan otot pectoral, os scapula, dan oscoracoid dengan membuat irisan melingkaripangkal humerus sehingga humerus dapatdipisahkan.

Nekropsi Penyu

Memisahkan Pluck (Trakhea, Pulmo, Jantung)

Flin

tet

al.,

20

09

Inspeksi Organ Visceral

Flin

tet

al.,

20

09

3. Tarik lidah dari ventral mandibula (rhamphotheca) denganmembuat irisan yang memisahkan lidah dengan cavum buccal. Buatirisan ke arah caudal dari dorsal esofagus dan memotong os hyoideushingga mendapatkan pluck. Pisahkan trachea dengan esofagus.

4. Inspeksi organ visceral dengan membuat insisi dan sisakan segmen organ tubulerutuh untuk histopatologi

Topografi Penyu

Jaco

bso

n,2

00

7

T (trachea), E (esophagus), H (heart), LV (liver), S (stomach), I (intestine), UB (urinary bladder), CL (cloaca)

Jaco

bso

n,2

00

7

Topografi Penyu

LA (left aorta), RA (right aorta), DA (dorsal aorta), L (lung), AG (adrenal gland), O (ovaries), K (kidneys)

Membuka otak penyu

Teknik Sampling dan Preservasi

Pereira et al., 2017

No. Pemeriksaan Metode Penyimpanan

1. SitologiFNA, tissue imprint, tissue smear difiksasi dengan methanol pada kaca obyek

2. HistopatologiJaringan 2x2x3 cm dalam 10% formalin/NBF; jaringan:formalin = 1:10

3. Mikrobiologi Jaringan segar dalam PBS

Swab steril dalam PBS, nutrient broth, media transpor Amies Tusuk peralihan lesi dengan ose steril, ulas di agar NA atau kaldu

4. ToksikologiAdiposa, hepar, ren, darah, cor, otak, ingesta dibungkus plastik atau aluminium foil kondisi beku

5. Parasitologi Simpan parasit dalam ethanol 70-100%

6. GenetikDarah atau jaringan dalam PBS, RNAlater®, ethanol 70-100% kondisi -20oC (DNA) dan -80oC (RNA)

Teknik swab/kultur yang benar??

Farris et al., 2013

Disposal Bangkai dan Sterilisasi

Disposal Bangkai

• PERTIMBANGAN

1. Dampak lingkungan, ekonomi, reaksi publik

2. Karakteristik patogen dan kontrol penyakit

3. Finansial dan logistik

4. Isu kesejahteraan hewan

• METODE

1. Dikubur

2. Dibakar (terbuka/insenerasi)

3. Kimia (alkaline hydrolysis, H2O2, etc.)

4. Dibuang ke laut

5. Pembusukan di atas tanah

Meledakkanbangkai???

Disposal Bangkai dan Sterilisasi

Sterilisasi

• PPE1. Masker, gloves (dibuang)2. Apron, boots, kacamata (sterilisasi) 3. Blade, jarum (tempat khusus)

• METODE1. Bersihkan debris jaringan, darah, dan material

organik lainnya dari meja nekropsi dan peralatanlogam

2. Cuci dengan detergent dan air mengalir3. Bilas dengan bahan kimia

a. Natrium hipoklorit 10% (Bayclin® NaOCl5.25%, Clorox ® 10%, korosif)

b. Formalin 2% (toksik)c. Chlorhexidined. Povidon iodine. Rendam dalam alkohol

4. UV5. autoclave

ReferensiChanhome, Lawan & Sitprija, Visith & Chaiyabutr, Narongsak. (2010). Effects of Bungarus candidus (Malayan krait) venom on general circulation and renal hemodynamics in

experimental animals. Asian biomedicine. 4. 421-428. 10.2478/abm-2010-0051.

Crocodile Specialist Group, 2020. The Crocodilian Body. https://www.iucncsg.org/pages/The-Crocodilian-Body.html. Accessed February 18th, 2020.

Dokumentasi drh. Rio Rahadian. 2020.

Environment Canada (1995). CITES Identification Guide-Crocodilians. http://publications.gc.ca/site/eng/464832/publication.html. Accessed February 18th, 2020.

Earth Touch News (2015). In photos: Anatomy of a black mamba. https://www.earthtouchnews.com/natural-world/how-it-works/in-photos-anatomy-of-a-black-mamba/. Accessed February 18th, 2020.

Farris, Seth & Squires, Michiko & Ridgely, Frank & Lavergne, Emma & Serota, Mitchell & Mazzotti, Frank. (2015). Necropsies of Reptiles: Recommendations and Techniques for Examining Invasive Species. University of Florida Electronic Data Information Source.

Flint, M., Patterson-Kane, J., Mills, P., & Limpus, C. (2009). A veterinarian’s guide for sea turtle postmortem examination and histological investigation. School of Veterinary Science The University of Queensland, Veterinary Marine Animal Research, Teaching and Investigation unit , www.uq.edu.au/vetschool/.

Hifumi, T., Sakai, A., Kondo, Y., Yamamoto, A., Morine, N., Ato, M., Shibayama, K., Umezawa, K., Kiriu, N., Kato, H., Koido, Y., Inoue, J., Kawakita, K., Kuroda, Y., (2015). Venomous snake bites: clinical diagnosis and treatment. Journal of intensive care 3, 16.

International Veterinarians in North America, 2015. Small Animal Necropsy Part II. https://www.youtube.com/watch?v=mELx-kqTlGs. Accessed February 18th, 2020.

HongkongSnakeID (2020). Banded Wolf Snake – Lycodon subcinctus. https://www.hongkongsnakeid.com/banded-wolf-snake#. Accessed February 18th, 2020.

Jacobson, E. R. (Ed.). (2007). Infectious diseases and pathology of reptiles: color atlas and text. CRC Press.

Maxie, G. (2015). Jubb, Kennedy & Palmer's Pathology of Domestic Animals-E-Book (Vol. 2). Elsevier Health Sciences.

Martinson, S. (2013). Reptile pathology - Necropsy technique and common disease. http://people.upei.ca/smartinson/Reptile_pathology_-_necropsy_techniques.pdf. Accessed February 18th, 2020.

Pereira, Heloisa & Gomes, Dayane & Hirano, Liria & Santos, André & Lima, Anna. (2017). Aerobic bacteria in oral cavity of Lancehead snakes (Bothrops atrox) with stomatitis. Acta Scientiarum. Biological Sciences. 39. 331. 10.4025/actascibiolsci.v39i3.34625.

Wildlife Rescue Centre (WRC) Jogja. Arsip nekropsi 2018.