55

BAB IV

PEMBAHASAN

Pada bab ini dijelaskan tentang hasil-hasil penelitian dan pembahasan

meliputi, preparasi sampel, analisa kadar air, analisa total keasaman, ekstraksi

senyawa aktif dengan corong pisah, uji antibakteri, uji fitokimia senyawa yang

aktif dengan uji reagen.

4.1 Preparasi Sampel

Sampel yang digunakan pada penelitian ini adalah madu Sumbawa.

Sebanyak 150 ml sampel, disaring dengan menggunakan penyaring teh. Fungsi

dari penyaringan madu ini sendiri adalah untuk membersikan madu dari ampas

kotoran atau koloni madu.

4.2 Karakteristik Madu Sumbawa

4.2.1 Analisis Kadar Air

Faktor yang mempengaruhi mutu madu salah satunya adalah kadar air,

kadar air dalam madu secara tidak langsung biasanya diukur dari berat jenisnya.

Jika kadar air dalam madu tinggi, maka madu akan mengalami fermentasi

(Winarno 1982). Terjadinya fermentasi terutama karena aktivitas mikroorganisme

atau ragi yang memang secara normal terdapat dalam madu, dan bila kadar air

madu tersebut meningkat, ragi menjadi aktif dan berkembang biak, sehingga

56

terbentuk alkohol yaitu perubahan gula sederhana menjadi etanol (Winarno,

1982). Akibatnya, madu akan mengalami perubahan rasa, sedangkan madu

dengan kadar air yang rendah, madu tersebut aman terhadap serangan ragi dan

fermentasi.

Jumlah kadar air berbanding terbalik dengan kadar gula reduksi, apabila

kadar air madu rendah maka kadar gula reduksi akan tinggi. Madu yang telah

matang mengandung air yang rendah yaitu 17% dan mempunyai kadar gulah buah

(fruktosa) yang tinggi. Kadar air yang rendah akan menjaga madu dari kerusakan

untuk jangka waktu yang relatif lama tetapi keadaannya masih baik. Secara umum

madu mengandung berbagai gula reduksi bila disimpan terlalu lama akan

mengalami perubahanm(Sihombing, 1997).

Penetapan kandungan air pada penelitian ini dilakukan dengan cara

pengovenan. Umumnya penentuan kadar air dilakukan dengan mengeringkan

bahan dalam oven pada suhu 105-110 oC selama 3 jam atau sampai diperoleh

berat konstan (Winarno,2002: 10). Sebagaimana dalam penelitian ini untuk

mendapatkan berat konstan dilakukan dengan pengeringan sampel dalam oven

pada suhu 100-105 0C selama 5 jam. Setiap 30 menit dilanjutkan dengan

pendinginan di dalam desikator selama 10 menit sampai diperoleh berat konstan

yang menunjukkan kandungan air di dalam bahan sudah teruapkan secara

maksimal.

Data perhitungan sampel air madu dapat dilihat pada lampiran 3. Hasil

perhitungan kadar air madu Sumbawa adalah 14,92 %. Bila dilihat dari standar

57

mutu madu menurut SNI-0156-77 untuk kadar air maksimal madu 22 %, maka

madu Sumbawa sudah memenuhi standar kualitas madu yang ditetapkan.

Kadar air madu sumbawa yang rendah ini, ini bisa juga disebabkan oleh

kondisi nektar tanaman di wilayah tersebut, faktor geografis sumbawa yang kering

dan panas membuat kandungan air di dalam madu menjadi rendah. Kadar air yang

rendah pada madu sangat penting karena menurut Suliyanto (1996) jika madu

mempunyai kadar air lebih dari 20 % maka madu mudah rusak dan timbul jamur.

Jika kadar air lebih dari 25 % madu mudah terfermentasi hingga terbentuk gas

CO2 dan alkohol, sehingga madu terasa asam.

Kondisi penyimpanan berpengaruh terhadap kadar air madu, hal ini

disebabkan karena madu merupakan produk yang sangat higroskopsi, sehingga

apabila madu disimpan dalam kondisi lingkungan yang lembab akan

mengakibatkan kenaikan kadar air yang selanjutnya akan mendukung

perkembangan mikroba (Sanz et. al. 1994).

4.2.2. Total Keasaman

Kualitas madu dapat juga dilihat dari keasamannya. Pada umunya madu

memiliki yang rasa sedikit asam. Data perhitungan total keasaman madu dapat

dilihat di lampiran 3. Total keasaman madu sumbawa adalah 46 mek/ kg,

sedangkan pH madu sumbawa 5. Jika dikaitkan dengan SNI yang menetapkan

total keasaman madu maksimal 50 ekivalen maka madu sumbawa memenuhi

standar SNI, sedangkan standar SNI untuk pH madu maksimal 3-5 jadi total

keasaman pada madu Sumbawa dan pH madu Sumbawa normal. Selain itu

58

keasaman madu juga dapat berasal dari asam-asam yang terdapat dalam tepung

sari. Menurut ( Winarno (1981) komposisi kimia tepung sari dari berbagai jenis

bunga mengandung asam nikotin, asam formiat, dan asam malat. Handiwiyanto

(1982) menambahkan bahwa mikroorganisme seperti khamir atau yeast akan

mengubah madu menjadi asam.

Nilai pH madu sumbawa sebesar 5, menurut Tarboush et al., (1993), nilai

pH madu bervariasi antara 3,2 samapai dengan 6,1. Livie (1960) melaporkan

sebagai mana yang dikutip oleh Sanz et al. (1994), bahwa pH yang rendah akan

menghasilkan unsur antimikroba dari aktivitas enzim sehingga menyebabkan

kestabilan madu terhadap pertumbuhan bakteri.

Menurut Koot (1980) dalam Budiwijono (2002) asam di dalam madu yang

paling utama adalah asam glukoma, piroglutamat, piruvat asam alfa ketoglutarat.

Kandungan asam dalam madu sangat berperan dalam pembentukan citra rasa

asam dan kestabilan jumlah mikroorganisme. Kandungan asam yang tinggi akan

meningkatkan rasa asam madu dan merangsang terjadinya fermentasi oleh bakteri

maupun mikroba lain.

Menurut Koot (1980) kadar asam yang meningkat pada madu diduga

disebabkan oleh fermentasi dan aktivitas enzym. Madu dengan kandungan gula

yang rendah sangat mudah sekali mengalami fermentasi. Pada proses fermentasi

ini glukosa dipecah menjadi etanol dan karbondioksida, kemudian alkohol

mengalami reaksi lagi dan berubah menjadi asam asetat. Peningkatan asam dalam

madu juga terjadi akibat aktivitas enzym glukosa oksidase yang akan

meningkatkan kandungan asam glukonat yang diubah dari glukosa.

59

4.3 Ekstraksi Madu dengan menggunakan Ekstraksi Cair-Cair

Ekstraksi madu menggunakan ekstraksi cair-cair merupakan peristiwa

pemindahan massa zat aktif yang semula berada di dalam sel ditarik oleh pelarut

sehingga terjadi larutan zat aktif dalam pelarut. Pada saat pencampuran terjadi

perpindahan massa, yaitu ekstrak meninggalkan pelarut yang pertama (media

pembawa) dan masuk kedalam pelarut kedua (media ekstraksi). Dalam penelitian

ini digunakan dua pelarut yang berbeda kepolarannya yaitu pelarut potreleum eter

dan aseton, tujuan dari menggunakan dua pelarut yang memiliki kepolaran

berbeda agar semua senyawa aktif yang terdapat pada madu yang bersifat non

polar maupun polar dapat ditarik semua oleh pelarut tergantung tingkat

kepolaranya. Senyawa aktif yang non polar dapat ditarik oleh pelarut petroleum

eter, sedangkan pelarut aseton dapat menarik senyawa aktif yang terdapat pada

madu yang bersifat polar. Hasil ekstraksi dari madu Sumbawa dapat dilihat pada

tabel 4.3

Tabel 4.3 Hasil Ekstraksi Cair-Cair Madu Sumbawa

Jenis pelarut Fasa organik Fasa air/ residu Petroleum eter Krem agak

mengental Cairan berwarna

orange Aseton Krem keputihan dan

agak mengental Cairan berwarna

orange

Pada ekstrak madu dengan pelarut petroleum eter terjadi pemisahan dan

terbentuk 2 fasa dan terdapat sedikit busa, warna pelarut berubah menjadi agak

60

keruh dan warna madu tetap orange keemasan. Pelarut petroleum eter sudah

menarik zat aktif yang terdapat di dalam madu, yaitu dapat dilihat dengan adanya

perubahan warna pelarut yang semula bening, berubah menjadi keruh. Sedangkan

pada proses pemisahan dengan menggunakan pelarut aseton terjadi dua fasa,

dimana warna pelarut bening dan memiliki banyak busa atau buih sedangkan

warna madu tetap orange keemasan.

Untuk memisahkan ekstrak dengan pelarut dilakukan pemisahan dengan

corong pisah, dimana sampel madu pada masing-masing pelarut petroleum eter

dengan aseton dimasukan dalam corong pisah selama 12 jam, agar ekstrak madu

dan pelarut dapat terpisah secara sempurna. Fasa organik dibagian atas, sedangkan

residu madu di bawah. Setelah itu residu dan ekstrak madu dikeluarkan dari

corong pisah dan masing-masing ditampung dengan beker glass,ekstrak dan

residu dimasukan dalam desikator vakum untuk menguapkan larutan yang

terdapat pada residu dan ekstrak, dan selanjutnya digunakan untuk uji aktivitas

antibakteri dan selanjutnya dilakukan untuk uji golongan senyawa aktif alkaloid

dan flavonoid pada ekstrak madu.

4.4. Uji aktivitas Antibakteri

Pengujian aktivitas antibakteri ekstrak madu dilakukan terhadap bakteri S.

aureus (gram positif) dan E. coli (gram negatif) secara in vitro menggunakan

metode difusi cakram. Terbentuknya zona bening di sekitar koloni bakteri

61

menunjukkan adanya penghambatan pertumbuhan bakteri uji. Zona

penghambatan bakteri dinyatakan dalam milimeter (mm) yang diukur dari

diameter zona bening yang terbentuk (diameter sumuran terhitung). Semakin luas

zona bening menunjukkan semakin tinggi aktivitas antibakteri madu.

Diameter zona bening di sekitar cakram yang berisi ekstrak diukur dan

dibandingkan dengan diameter zona bening di sekitar cakram yang berisi kontrol

positif (penisilin dan streptomisin) dan kontrol negatif (aseton dan petroleum

eter). Apabila diameter zona bening ekstrak lebih besar dibandingkan diameter

zona bening kontrol positif, maka ekstrak sangat efektif sebagai antibakteri.

Namun apabila zona bening ekstrak lebih kecil dibandingkan diameter zona

bening kontrol positif, maka ekstrak masih kurang efektif sebagai antibakteri,

sehingga dimungkinkan dengan konsentrasi ekstrak yang lebih tinggi ekstrak akan

seefektif kontrol positif. Penggunaan kontrol negatif bertujuan untuk memastikan

bahwa diameter zona hambat ekstrak yang dihasilkan bukan pengaruh dari

pelarut, tetapi murni dari senyawa aktif dalam ekstrak tersebut. Hasil uji aktivitas

antibakteri pada madu sumbawa dapat dilihat pada tabel 4.4

Tabel 4.4 Hasil Uji Aktifitas Antibakteri Madu Sumbawa

Cakram (perlakuan) Diameter zona hambat (mm)

Stapylococuus aureus (+)

Eschericia Coli (-)

Madu 5% 7,28 7,93 10 % 7,35 7,88 25% 7,77 7,63

62

50 % 7,83 6,70 Residu aseton 5 % 5,73 7,23 10 % 7,32 6,75 25 % 6,90 7,17 50 % 6,86 7,70 Res.Petroleum eter 5 % 6,53 6,70 10 % 7,43 6,78 25 % 7,75 6,42 50 % 8,02 7,05 Fasa Organik Aseton

5% 7,23 7,20 10% 7,26 7,23 25% 7,33 7,32 50% 8,08 7,33 Fasa organik petroleum eter 5 % 7,32 7,17 10 % 6,93 6,70 25 % 6,91 6,75 50 % 6,53 8,22 Aseton 0 0 Petroleum eter 0 0 Penicilin 25 g/ml 7,63 7,58 Streptomisin 6,25 g/ml 36,73 21,83

Berdasarkan hasil tabel 4.4 zona hambat paling besar adalah pada ekstrak

petroleum eter dan aseton dimana zona hambat dari ekstrak petroleum eter 50 %

dengan zona hambatan 8,22 mm pada bakteri Eschericia coli sedangkan pada

ekstrak aseton 50 % zona hambatnya 8,08 mm pada bakteri Stapylococus aureus,

pada residu petroleum eter 50 % zona hambatnya 8,02 mm pada bakteri

Stapylococuus aureus, sedangkan pada madu dan residu madu zona hambat

terendah terdapat pada residu aseton 5 % dengan zona hambat 5,73 mm pada

bakteri Stapylococus aureus, sedangkan pada madu zona hambat terendah pada

63

konsentrasi 50 % pada bakteri Eschericia coli. Zona untuk uji antibakteri pada

kontrol negatif dan positif pada kontrol negatif asseton dan petroleum eter zona

hambatnya 0 sedangkan pada penisilin pada bakteri Eschericia coli zona

hambatnya 7,58 mm, streptomisin 36,73 mm pada bakteri Stapylococus aureus.

Apabila hasil (Tabel 4.4) dikaitkan dengan ketentuan kekuatan antibakteri

yang dikemukakan oleh David Stout (2005), maka kekuatan antibakteri yang

terkandung dalam ekstrak aseton, petroleum eter masuk dalam kategori sedang

(masuk dalam kisaran 10 mm). Hal ini diduga karena kandungan senyawa yang

berpotensi sebagai antibakteri pada ekstrak tersebut sudah cukup banyak,

sehingga cukup mampu untuk menghambat pertumbuhan bakteri.

Gambar 4.1.Zona Hambat Madu Sumbawa Pada Bakteri Stapylococuus aureus

64

Gambar 4.2. Zona hambat madu Sumbawa pada bakteri Eschericia coli

Dari hasil tabel 4.4 dan gambar 4.1 dan gambar 4.2 menunjukkan bahwa

zona hambat dari ekstrak aseton dan petroleum eter memiliki zona hambat lebih

baik dibanding madu dan residu madu, karena pada konsentrasi 50 % ekstrak

aseton madu memiliki zona hambat yang paling tinggi. Zona hambat ekstrak

aseton 8,08 mm pada bakteri Stapylococus aureus, sedangkan zona hambat

ekstrak petroleum eter 8,22 mm pada bakteri Eschericia coli, sedangkan pada

residu madu dan madu asli zona hambat paling rendah terendah terdapat pada

residu aseton 5 % dengan zona hambat 5,73 mm pada bakteri Stapylococus

aureus, sedangkan pada madu zona hambat terendah pada konsentrasi 50 % pada

bakteri Eschericia coli. Secara garis besar penelitian ini dapat disimpulkan

semakin tinggi konsentrasi madu Sumbawa maka aktivitas antimikroba madu

sumbawa semakin tinggi dengan melihat menurunnya pertumbuhan bakteri.

65

Pada ekstrak madu dengan aseton dan petroleum eter yang dianalisa

dengan uji fitokimia, ditemukan adanya komponen flavonoid. Mekanisme aksi

dari molekul ini belum diketahui, tetapi banyak bukti menunjukkan bahwa

interaksi antara derivat fenolik dengan protein pada membran sel menyebabkan

rusaknya struktur membrane sel (Davis, 1981 dan Freemen, 1980). Senyawa fenol

masuk ke dalam sel bakteri melewati dinding sel bakteri dan membran sitoplasma,

di dalam sel bakteri, senyawa fenol menyebabkan penggumpalan (denaturasi)

protein penyusun protoplasma sehingga dalam keadaan demikian metabolisme

menjadi inaktif, dan pertumbuhan bakteri menjadi terhambat (Dwidjoseputro,

1989).

Derivat fenol yang mempunyai gugus cincin o pada struktur molekulnya,

mempunyai aktivitas antibakteri lebih tinggi. Gugus pada cincin dapat

meningkatkan polaritas grup fenolik-OH dan juga membuat molekul lebih

hidrifobik. Hal ini diduga menyebapkan molekul lebih berpotensi sebagai

antibakteri (Davis, 1981).

Madu mempunyai potensi antibakteri yang jauh lebih rendah dibandingkan

dengan ekstrak madu karena dalam konsentrasi yang sama kadar substansi

antibakteri pada madu jauh lebih sedikit dari pada yang terkandung dalam ekstrak

madu.

Terhambat dan terbunuhnya Eschericia coli dan Stapylococcus aureus

oleh residu madu disini diduga adalah disebapkan karena pekatnya residu madu.

Perbedaan antara residu madu dan ekstrak madu adalah bahwa pada residu madu

tidak terkandung substansi antibakteri yang terlarut kedalam pelarut petroleum

66

eter dan aseton. Tapi tidak berarti substansi antibakteri pada madu yang diuji

terlarut pada pelarut petroleum eter dan aseton. Dalam residu madu itu sendiri bisa

jadi masih mengandung substansi antibakteri lain yang tidak larut dalam

petroleum eter dan aseton, tapi bisa juga daya antibakteri residu madu disebapkan

faktor-faktor selain substansi antibakteri madu. Residu madu juga mempunyai

viskositas yang lebih tinggi karena sebelum diujikan pada bakteri Eschericia coli

dan Stapylococcus aureus dievaporasi dengan desikator vakum untuk

menghilangkan kandungan aseton dan petroleum eter yang masih tersisa di dalam

residu. Proses ini akan menurunkan kandungan airnya sehingga lebih sedikit air

yag tersisa untuk kehidupan mikroorganisme (McCarthy, 1995).

Pada penelitian ini, madu sumbawa bisa menghambat pertumbuhan bakteri

Stapylococcus aureus dan Eschericia coli pada konsentrasi 5 %. Kepekaan

bakteri terhadap madu dihubungkan dengan komposisi lengkap dari madu,

misalnya konsentrassi gula yang tinggi, keasaman dan adanya pollen (Franco,

1954). Menurut Mundo et. al (2004), ada beberapa faktor yang menyebabkan

madu memiliki aktivitas antibakteri, antara lain keasaman, tekanan osmotik, dan

hidrogen peroksida. Komponen tambahan pada madu seperti asam aromatik dan

komponen fenol juga berperan dalam aktivitas antibakteri. Taormina et. al (2001)

juga menjelaskan faktor nonperoksida juga berperan dalam aktivitas antibakteri

madu. Komponen seperti lisozim, asam fenolik dan flavonoid juga terdapat dalam

madu. Komponen fenolik lainnya pada nektar juga memiliki aktivitas antioksidan.

Antioksidan fenolik diketahui dapat untuk menghambat bakteri gram positif dan

gram negatif.

67

Konsentrasi gula yang tinggi pada madu Sumbawa yang menyebabkan

timbulnya daya antimikrobial hal ini berkaitan dengan banyaknya pengunaan

larutan madu untuk penanganan luka. Hal yang berkaitan dengan penanganan luka

ini berhubungan dengan faktor lain di luar madu selain komponen antimikrobial

yang ada di dalam madu dimana kadar gula yang tinggi pada madu menimbulkan

viskositas yang tinggi sehingga bisa merupakan barier infeksi pada luka, selain itu

kadar gula yang tinggi menjamin suplai gula untuk leokosit dan makrofag (Molan,

2001)

Madu telah lama dikenal mampu membunuh bakteri. White dan Subbers

(1963) dalam Jeffrey (1997) melaporkan bahwa hidrogen peroksida yang

dihasilkan oleh glukosa oksidase madu dapat menjadi komponen penghambat

melawan bakteri. Glukosa oksidase dikeluarkan dari kelenjar hipofaring lebah ke

dalam nektar untuk membantu pembentukan madu dari nektar. Tetapi, telah

diketahui bahwa sejumlah bakteri dapat menghasilkan katalase yang akan

mengeliminasi hidrogen peroksida. Meskipun demikian, katalase aktif dengan

konsentrasi hidrogen peroksida yang tinggi. Bakteri dari golongan Pseudomonas

merupakan bakteri yang bersifat katalase positif (Kusnandar dkk., 2003). Oleh

sebab itu, dalam kasus ini penghambatan yang dihasilkan oleh madu terhadap

kedua bakteri uji ini kecil kemungkinan yang disebabkan oleh adanya hidrogen

peroksida. Faktor keasaman, efek osmotik dan senyawa fenol dalam madu lebih

berperan.

4.5. Uji Fitokimia dengan reagen

68

Uji fitokimia merupakan uji kualitatif kandungan golongan senyawa aktif

pada tanaman maupun madu, sehingga dapat diketahui senyawa yang terdapat di

dalamnya. Biasanya uji golongan senyawa aktif dilakukan dalam tabung dengan

dengan jumlah sampel relatif sedikit. Uji fitokimia dalam penelitian ini dilakukan

dengan uji reagen.

Tabel 4.5 Hasil Uji Golongan Senyawa Aktif Madu Sumbawa

Senyawa aktif

Aseton Pengamatan (warna)

Petroleum eter

Pengamatan (warna)

Alkaloid ++ Jingga bening

+++ Jingga dan mengental

Flavonoid ++ Kuning sedikit keruh

++ Kuning sedikit keruh

Keterangan tanda +++: terkandung senyawa/ warna keruh tanda + + : terkandung senyawa/ warna bening

Hasil dari uji fitokimia pada madu Sumbawa dapat dilihat pada tabel 4.5.

Uji fitokimia dilakukan terhadap golongan senyawa alkaloid dan flavonoid, kedua

ekstrak aseton dan petroleum eter yang berbeda kepolaran sehingga uji fitokimia

dilakukan terhadap kedua ekstrak ini.

4.5.1. Alkaloid

Bukti kualitatif untuk menunjukkan adanya alkaloid dapat diperoleh

dengan menggunakan pereaksi Dragendorf (Kalium tetraiodobismutat). Alkaloid

akan membentuk warna jingga akibat reaksi dengan HCl dan reagen Dragendorf

(Vogel, 1990 ).

69

Bi(NO3)3.5H2O + 3KI BiI3 + 3KNO3 + 5H2O BiI3 + KI + K+

NH

+ BiI4-

N

N+ 3HI+ KI+K+

NBi3

Kompleks logam dengan alkaloid (endapan jingga)

Gambar 4.3 Reaksi dugaan antara Alkaloid dengan Pereaksi Dragendorff (Sumaryanto, 2009)

Hasil uji alkaloid dari ekstrak madu pada pelarut aseton dan petroleum eter

terdapat endapan yang berwarna jingga ketika direaksikan dengan reagen

Dragendrof dan mayer ini menunjukan bahwa ekstrak madu pada aseton dan

petroleum eter terdapat alkaloid.

4.5.2. Flavonoid

Uji flavonoid dilakukan dengan mengambil sedikit sampel, dilarutkan

dengan metanol 50 % panas kemudian ditambah logam Mg dan HCl pekat.

Penambahan HCl pekat dalam uji flavonoid digunakan untuk menghidrolisis

flavonoid menjadi aglikonnya, yaitu dengan menghidrolisis O-glikosil. Glikosil

akan tergantikan oleh H+ dari asam karena sifatnya yang elektrofilik. Glikosida

berupa gula yang biasa dijumpai yaitu glukosa, galaktosa dan ramnosa. serbuk Mg

menghasilkan senyawa kompleks yang berwarna merah atau jingga.

70

Ekstrak madu yang mengandung golongan senyawa flavonoid pada pelarut

aseton dan petroleum eter menghasilkan warna kuning dan agak keruh. Hal ini

menunjukkan bahwa ekstrak madu pada aseton dan petroleum eter terdapat

flavonoid.

O

O

OH

HO

HO

+ HCl

O glukosil

O

O

O

HO

HO

O

O

O

OH

HO

HO

OH

+ serbuk Mg

Mg

. Merah/ jingga Gambar 4.7 Reaksi dugaan antara flavonoid dengan serbuk Mg dan HCl pekat

(Hidayat, 2004).

Senyawa alkaloid dan flavonoid pada madu yang dapat diekstrak dengan

pelarut petroleum eter dan aseton menunjukkan sifat-sifat antibakteri. Mekanisme

aksi dari molekul ini belum diketahui, tetapi banyak bukti menunjukkan bahwa

interaksi antara derivat fenolik dengan protein pada membran sel menyebabkan

rusaknya struktur membrane sel (Davis, 1981 dan Freemen, 1980). Senyawa fenol

masuk ke dalam sel bakteri melewati dinding sel bakteri dan membran sitoplasma,

71

di dalam sel bakteri, senyawa fenol menyebabkan penggumpalan (denaturasi)

protein penyusun protoplasma sehingga dalam keadaan demikian metabolisme

menjadi inaktif, dan pertumbuhan bakteri menjadi terhambat (Dwidjoseputro,

1989).

4.6 Analisa Hasil Penelitian Dalam Prespektif Islam

Berdasarkan hasil penelitian yang telah dilakukan, diketahui bahwa madu

dapat dimanfaatkan sebagai bahan obat-obatan dikarenakan terdapat senyawa

flavonoid dan alkaloid. Mekanisme aksi dari molekul ini belum diketahui, tetapi

banyak bukti menunjukkan bahwa interaksi antara derivat fenolik dengan protein

pada membran sel menyebabkan rusaknya struktur membrane sel (Davis, 1981

dan Freemen, 1980). Senyawa fenol masuk kedalam sel bakteri melewati dinding

sel bakteri dan membran sitoplasma, di dalam sel bakteri, senyawa fenol

menyebabkan penggumpalan (denaturasi) protein penyusun protoplasma sehingga

dalam keadaan demikian metabolisme menjadi inaktif, dan pertumbuhan bakteri

menjadi terhambat (Dwidjoseputro, 1989). Penelitian ini zona hambat antibakteri

dari ekstrak aseton 50 % dapat menghambat bakteri Stapylococus aureus pada

zona hambat 8,08 mm, sedangkan ekstrak petroleum eter 50 % pada bakteri

Escericia coli dengan zona hambat 8,22 mm.

Didalam tafsir Shihab dijelaskan bahwa didalam perut lebah keluar sejenis

minuman yang sangat lezat yaitu madu, didalamnya yakni pada madu itu terdapat

obat penyembuh bagi manusia walaupun kembang yang dimakanya ada yang

bermanfaat dan ada yang berbahaya bagi manusia. Sesungguhnya pada yang

72

demikian itu benar-benar terdapat tanda kekuasaan dan kebesaran Allah bagi

orang-orang yang berpikir.

Lebah dijadikan sebagai nama surat di dalam Al Quran, yaitu surat ke-16

(An Nahl). Penggunaan nama tersebut menunjukkan bahwa lebah mempunyai

banyak keajaiban, hikmah, manfaat dan rahasia dalam penciptaannya. Selain

menghasilkan madu, lebah juga menghasilkan royal jelli, polen, propolis, lilin

(wax), sengat (venom) dan membantu penyerbukan tanaman (polinator).

Allah telah menciptakan segala sesuatu yang ada pada alam semesta tidak

lain adalah banyak hikmah dan manfaatnya. Terutama kita sebagai salah satu

mahluk yang di berikan akal dan pikiran supaya manusia benar-benar dapat

memanfaatkan dan mengambil hikmah dari ciptaaNya. Kesembuhan penyakit

yang diderita manusia tergantung dari doa dan proses penyembuhannya.

Rasulullah bersabda, sebaik-baik obat adalah Alquran, karena tergantung

manusia bagaimana mendekatkan diri pada Allah melalui Alquran disertai denga

usaha dalam memperoleh obat tersebut.Sebagai mana firman Allah dalam surat

An-Nahl:69

O ?. e . Nt yW9 $# 5 =$$ s 7 7 n/ u W9 4 l s . $ y / ># u #=tF u 9 r& !$ x $ =j9 3 ) y7 9s Z t U 5 s) j9 t 3x tG t

Artinya: Kemudian makanlah dari tiap-tiap (macam) buah-buahan dan tempuhlah jalan Tuhanmu yang telah dimudahkan (bagimu). dari perut lebah itu ke luar minuman (madu) yang bermacam-macam warnanya, di dalamnya terdapat obat yang menyembuhkan bagi manusia. Sesungguhnya pada yang demikian itu benar-benar terdapat tanda (kebesaran Tuhan) bagi orang-orang yang memikirkan. (QS. An-Nahl: 69)

73

Allah menciptakan suatu penyakit, dan Allah telah memberikan obatnya.

Dalam sabda Nabi menyebutkan Allah tidak menurunkan penyakit melainkan dia

menurunkan pula obatnya karena ilmunya dan tidak tahu karena kebodohanya,

sekarang tergantung manusia bagaimana berfikir, bersikap dan bertindak. Akan

tetapi kadang ilmu yang dimiliki manusia tidak dapat menjangkau, kecuali apabila

kita mendapat petunjuk-Nya. Segala sesuatu yang diciptakan oleh Allah tidak ada

yang sia-sia, semua mengadung makna dan manfaat. Allah menciptakan manusia

dan memuliakanya sebagai mahluk yang paling istimewa. Oleh karena itu dengan

akal dan pikiran diharapkan manusia dapat hidup seimbang dunia dan akhirat,

sehat jasmani rohani dengan cara memanfaatkan apa yang ada (bahan alam) dan

mencari rahasia yang terkandung di dalamnya.