TUGAS

TEKNOLOGI DAN MANAJEMEN HATCHERY ABALONE

(Haliotis discus hannai)

OLEH:

ISRAWATI

I1A311019

PROGRAM STUDI BUDIDAYA PERAIRAN KONSENTRASI ABALONE

FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN

UNIVERSITAS HALU OLEO

KENDARI

2013

A. PENDAHULUAN

Abalone merupakan binatang laut yang digolongkan dalam kekerangan dan

termasuk dalam kelas Gastropoda, famili haliotidae. Jenis abalone diperkirakan lebih

dari 100 spesies namun yang berhasil dibudidaya hanya beberapa spesies saja.

Abalone juga merupakan shellfish yang memiliki nilai yang sangat tinggi dimana

harganya mencapai 70€/kg.

Abalone adalah moluska laut dan dianggap di antara kelompok paling primitif

dalam phyllum ini. Abalone cukup mirip dan terkait erat dengan keong yang umum di

daerah intertidal. Namun abalone adalah, untuk yang paling bagian subblittoral, yang

ditemukan di bawah zona intertidal.

Klasifikasi abalone (Haliotis diskus hannai) yang dikutip dalam Pacquiao et

al., 2011 yaitu sebagai berikut:

Phylum : Mollusca

Class : Gastropoda

Ordo : Archaeogastropodida

Family : Haliotidae

Genus : Haliotis

Species : discus hannai

Gambar 1. Haliotis discus hannai

Karakteristik gastropoda ini adalah kerang lonjong atau berlubang di yang

sepasang insang ditemukan. Seperti pada semua moluska ada mantel yang berongga,

itu terletak langsung di bawah pori-pori kulit. Insang silia menghasilkan arus air di

mana produk limbah dari usus dan ginjal melalui ujung atau celah. Abalone memiliki

sepasang insang namun karena asimetri shell insang yang tepat adalah jauh lebih

kecil dari kiri. Dalam shell abalone umumnya diratakan dan ada serangkaian pori-pori

kulit, biasanya 5-10, yang jumlah bervariasi dengan usia dan spesies. Pori-pori

berkembang sebagai kerang tumbuh dan masing-masing muncul sebagai takik di

margin depan shell dan menjadi penutup di bagian belakang. Secara umum shell

diratakan, memiliki spiral asimetris dan whorl tubuh sangat diperbesar membuat

diafragma yang sangat besar, yang memungkinkan untuk benar-benar melindungi

otot kaki. Kaki adalah bagian berharga dari abalone dan digunakan dalam penggerak

dan makan. Ini adalah datar merayap diadaptasi untuk penggerak melalui berbagai

substrat. Hal ini bersilia dan memiliki padatnya konsentrasi kelenjar lendir. Kaki

sangat berotot dan mampu gerakan yang kompleks. Ini kompleksitas otot gerakan dan

lendir sekresi memungkinkan abalone untuk meluncur di substrat.

Pada bagian anterior kaki adalah kepala yang biasanya sangat bekicot suka.

Mulut adalah di dasar kepala dan telah menjadi scrapping organ atau radula yang

digunakan untuk makan. Antara shell dan kaki di bagian posterior dari hewan adalah

gonad yang menyelubungi kelenjar pencernaan atau hati dan bersama-sama mereka

membentuk kerucut besar berbentuk embel yang sering disebut sebagai kerucut

embel.

Gambar 2. Tampak bawah dari Haliotis tanpa cangkang dan tanpa membuka mantle

lubang

Abalone dioecious, organ reproduksi memiliki baik jantan atau betina. Warna

gonad tergantung spesies tetapi secara umum, jantan cenderung dari putih menjadi

krem beige dalam warna sementara betina cenderung lebih gelap, dari hijau gelap ke

abu-abu hijau hampir hitam. Tidak ada dimorfisme seksual struktur shell

memungkinkan diferensiasi eksternal. Seperti abalone moluska lain memiliki siklus

perkembangan larva mirip dengan abalone moluska akrab menghasilkan pada tempat

penetasan komersial. Namun telur memiliki pasokan makanan internal yang

disediakan oleh kantung kuning telur. Akibatnya larva tidak perlu memakan

mikroalga dan sebagai memiliki siklus hidup lebih pendek daripada mengatakan

tiram, kerang atau kerang. Sebagai hasil dari telur menjadi kuning sarat mereka juga

cenderung relatif besar. Biasanya ovum abalone bisa 180μm atau lebih dibandingkan

dengan 60-90μm bagi larva kerang yang khas. Selain itu, ada lapisan gelatin tebal

yang mengelilingi teluryang tidak dibuahi sehingga diameter keseluruhan 300-

400μm.

Setelah pembuahan larva menetas trochophore keluar dari kantung telur.

Tahap ini ditandai oleh sekelompok silia disebut sebagai protrochal korset. Hal ini

kemudian berkembang menjadi veliger yang ditandai oleh sekelompok berenang yang

bersilia disebut velum. Selama tahap ini larva menjalani tahap pertama dan lebih

cepat torsi dimana mereka memutar melalui 90 °. Tahap kedua berikut pada tingkat

lebih lambat selama beberapa jam ke depan. Sebuah spiral shell dan operculum telah

dikembangkan pada tahap ini. Pada akhir hari ketiga larva mulai mengembangkan

silia pada telapak kaki dan tanda-tanda perilaku pertama penyelesaian mungkin

diamati. Setelah 4-5 hari (meskipun lebih pada beberapa spesies) tahap veliger bentik

tampak dan larva dapat dilihat membuat eksplorasi gerakan merayap terkait dengan

penyelesaian.

Siklus hidup abalone

B. TEKNOLOGI PEMBENIHAN ABALONE

1. Induk

Di banyak negara yang terlibat dalam produksi abalone induk dapat diperoleh

dengan mudah dari alam. Mereka dapat menyelam selama dan membawa ke unit

pendingin dalam berbagai tahap kematangan. Periode penyejuk setelah itu akan

bervariasi tergantung pada keadaan gonad pada pengenalan ke unit pendingin dan

juga parameter air dalam unit. Tidak seperti negara-negara seperti Jepang, Amerika

Serikat, Australia dan lain-lain. Irlandia tidak menggunakan indukan dari alam.

Sebaliknya induk harus dipilih dari saham yang pertumbuhannya di pertanian

atau dari abalone yang telah dipilih secara khusus untuk tujuan. Hal ini umumnya

dianggap bahwa suhu adalah faktor utama yang mempengaruhi perkembangan gonad

pada sebagian besar spesies abalone. Ketersediaan makanan juga sangat penting,

sementara pengaruh penyinaran ini terbatas.

a. Indeks Gonad

Cara termudah untuk menilai perkembangan gonad di abalone adalah dengan

pengamatan langsung. Hal ini dilakukan dengan menggunakan spatula untuk melihat

kembali tepi mantel di bagian belakang kanan cangkang ketika abalone terbalik. Hal

ini dapat dilihat sebuah gonad visual atau eksternal Indeks seperti yang dijelaskan di

bawah ini.

Visual atau eksternal indeks gonad yaitu sebagai berikut:

a) 0 - belum tampak, tidak jelas jenis kelaminnya, kelenjar pencernaan terlihat

abu-abu massa coklat.

b) 1 - Seks ditentukan, gonad kecil, pewarnaan, tip menunjuk.

c) 2 - Gonad besar, ujung bulat tapi tidak bengkak.

d) 3 -Gonad sangat besar, ujung yang membulat dan bengkak, menggembung ditepi

cangkang.

Telah ada banyak penelitian tentang pengkondisian Haliotis diskus hannai,

khususnya, selama bertahun-tahun. Karya ini mendirikan Biologi Titik Nol (BZP)

dari 7,6 ° C untuk spesies ini. Ini adalah Suhu minimum teoritis di mana pertumbuhan

dan pembangunan gonad dimulai. Perbedaan antara keadaan biologis dan suhu air

efektif, sedangkan jumlah nilai selama pematangan lengkap disebut sebagai

Accumulative Efektif Suhu (EAT). Hal ini dianggap bahwa Haliotis diskus hannai

sepenuhnya matang pada 1.500° C atau lebih. Ini berarti bahwa pendingin Haliotis

diskus hannai pada 18° C akan mengambil minimal 144 hari. Namun beberapa

abalone bisa bertahan dalam kondisi sebelum periode waktu, sementara

pengkondisian untuk periode yang lebih lama akan memberikan hasil pemijahan yang

lebih baik. Demikian pula menggunakan suhu udara 15° C akan memerlukan abalone

melekat diunit selama 203 hari saat menggunakan 21°C yang akan melibatkan

pengkondisian selama 112 hari atau sekitar tiga setengah bulan.

Gonad pematangan dapat dibagi menjadi tiga tahap yang berhubungan dengan

EAT untuk Haliotis diskus hannai :

Tahap Belum Menghasilkan (0-500° C - hari) - Indeks visual atau eksternal

Gonad berkisar 0-3 sebagai volume gonad meningkat tetapi pemijahan tidak dapat

diinduksi.

Tahap dewasa (500-1,500°C - hari) - indeks gonad mencapai 3. Tingkat

pemijahan dan kuantitas gamet dirilis naik dengan meningkatnya EAT. Hewan

dengan EAT antara 1.000 sampai 1.500°C - hari yang cukup matang untuk

produksi benih.

Tahap Sepenuhnya dewasa ( > 1.500 ° C - hari ) - perkembangan gonad

mencapai tingkat maksimum dan ada tingkat tinggi yang dapat diandalkan

pemijahan.

b. Pemilihan indukan

Jumlah induk yang dipilih dan diproyeksikan oleh keluaran benih budidaya.

Jika pembudidayaan termasuk dalam syarat individu maka jumlah yang diperlukan

mungkin sangat kecil sedangkan jika pertanian bertindak sebagai unit produksi benih

bagi pribadi dan unit lainnya, maka lebih besar kemungkinan ratusan induk akan

diperlukan. Sejumlah faktor harus dipertimbangkan ketika memilih indukan yaitu

harus relatif besar dan cepat tumbuh hewan. Cara terbaik adalah untuk pilih abalone

muda antara 50mm - 70mm. Secara khusus, lebih muda perempuan cenderung

menghasilkan telur berkualitas sehat. Hewan-hewan ini memiliki cangkang relatif

tipis bebas dari pencemaran. Namun, untuk menjaga stok di budidaya harus

menunjukkan abalone yang terbaik. Ini juga dianjurkan untuk memilih Ratio betina

dibanding jantan 3 atau 4:1. Ini sudah dipraktekkan pada kebanyakan pembudidaya

abalone karena respon pemijahan rendah dari betina membuat faktor pembatas pada

telur. Kerang harus bebas dari pencemaran berat dan khususnya mereka harus bebas

dari infestasi Polydora. Polydora adalah mudworm yang membosankan ke dalam

cangkang abalone. Ini menyebabkan pitting dan terik pada yang dalam dari

permukaan kulit. Infestasi berat menekankan abalone, mempengaruhi hasil

reproduksi mereka dan sering membunuh mereka. Ada juga risiko menginfeksi

abalone tanpa infeksi cacing pada pengkondisian Unit.

Gambar 3. Pakan induk. Ulva lactuca, Laminaria saccharina, Palmaria palmate,

Laminaria digitata

Dalam pemilihan induk ada beberapa hal yang harus dilakukan yaitu adanya

unit pendingin. Tujuan spesifik conditioner adalah untuk memberikan abalone

sepenuhnya gravid untuk tujuan pemijahan pada waktu tertentu sepanjang tahun.

Untuk mencapai hal ini, abalone harus diberikan dengan suhu tertentu rezim dan

berlimpahnya makanan berkualitas tinggi. Unit pendingin dirancang untuk

melakukan hal ini dan juga untuk menjaga kualitas air tinggi selama proses. Berbagai

macam desain yang digunakan dalam unit budaya yang berbeda di seluruh dunia.

Kebanyakan peternakan cenderung menggunakan aliran-melalui desain sementara

lebih baru-baru ini telah terjadi kecenderungan resirkulasi kompleks sistem

pendingin.

Sebuah unit pendingin Dasar

Sebuah sistem yang sangat sederhana yang berhasil digunakan untuk kondisi

abalone di Kerang Research Laboratory di Carna terdiri dari bah besar ca. 3.000 liter.

Sejumlah keranjang ditangguhkan langsung ke sump. Ini tempat penampungan yang

terkandung di mana abalone terpasang. Sebuah submersible Otter jenis pompa

menyediakan airsirkulasi melalui bar semprotan melalui keranjang ini. Atau seri lift

udara bisa memberikan sirkulasi air yang sama turun melalui basket. Sistem ini

memiliki pemanas perendaman 1.5/2kW digunakan untuk menjaga suhu di ca. 18 ° C.

Ambient air laut memasuki Unit sekitar satu liter per menit sementara itu

meninggalkan sistem melalui pipa berdiri pada tingkat yang sama. Ini aliran kecil

melalui tingkat memastikan bahwa kualitas air dipertahankan pada standar yang

tinggi. Sistem ini induk bisa nyaman pada kondisi 50-60 dari salah satu atau kedua

spesies secara bersamaan.

Mengalir melalui unit pendingin

Jenis yang paling umum dari kondisioner yang sedang digunakan adalah

sebuah flowthrough. Unit dimana air ambient dipanaskan sampai yang diperlukan

temperatur di reservoir / bah ( atau in-line ) sebelum dikirim ke kontainer pendingin

dengan pria atau wanita indukan hadir. Itu kontainer pendingin umumnya 20-35 liter

plastik food grade box. Masing-masing kotak-kotak ini memegang 2-6 abalone ini

tergantung pada ukuran hewan. Jumlah kotak dalam sistem akan tergantung pada

jumlah abalone harus dikondisikan. Jika 200 indukan yang dikondisikan maka

setidaknya 30-40 kotak akan diperlukan. satu atau dua reservoir dengan kapasitas

total volume sistem 30-50 % akan diperlukan. Air akan dipompa dari individu ke sini

box atau alternatif itu bisa gravitasi makan jika diposisikan di atas mereka.

Pemanasan akan disediakan oleh pemanas perendaman dalam reservoir atau

menggunakan titanium in-line pemanas. Harus ada pertukaran 200ml - 500ml per

menit untuk setiap kotak. Jika ada 50 kotak ini akan memerlukan asupan 25 liter per

menit air laut ambien baku ke dalam sistem. Beberapa penetasan akan memiliki

skimmer protein atau busa fractionator terhubung ke reservoir pendingin. Hal ini

untuk menghilangkan sedimen atau puing baik sebelum mencapai abalone di

kondisioner ini sangat opsional, tergantung lokasi dan juga terkait dengan lainnya

filtrasi digunakan di pertanian.

Gambar 4. Unit condisi aliran pembuangan induk abalone

Gambar 5. Dasar resirkulasi pendingin abalone induk

Sirkulasi unit pendingin

Sirkulasi unit pendingin sering digunakan da diperhatikan. Dimana ini

memiliki banyak keuntungan yang berbeda atas aliran yang melalui unit. Ini juga

lebih murah untuk mempertahankan dari aliran yang melalui sistem. Hal ini terutama

karena fakta bahwa harus ada air laut yang harus dipanaskan. Suhu dapat

dipertahankan pada tingkat yang konstan dengan akurat. Hal ini memungkinkan

prediksi yang akurat dari abalone mencapai gonad penuh saat jatuh tempo.

2. Pemijahan

Ada beberapa metode berbeda yang telah digunakan untuk pemijahan induk di

abalone. Ini termasuk stripping gamet, pengeringan, kejut suhu, air laut yang disinari

sinar ultraviolet dan induksi kimia dengan menggunakan hidrogen peroksida.

Stripping gamet tidak digunakan karena melibatkan pengorbanan yang dewasa

sementara pengeringan dan metode kejut suhu yang sangat bisa diandalkan. Namun

kedua metode kadang-kadang digunakan dalam hubungannya dengan metode

pemijahan UV untuk meningkatkan kehandalan. Di Irlandia induksi kimia dengan

hidrogen peroksida telah hampir seluruhnya digunakan meskipun satu

penetasan sekarang telah beralih menggunakan metode UV. Ini mungkin karena yang

digunakan pada awalnya saat hewan yang diimpor dan metode ini diulang setelahnya.

Selain itu banyak penetasan akan tidak memiliki fasilitas sinar UV yang bisa

dimanfaatkan dalam pemijahan.

Metode pemijahan hidrogen peroksida. Ketika Hidrogen Peroksida atau H2O2

ditambahkan ke dalam air (H2O) yang hydroperoxy radikal bebas, HOO- atau peroksi

diradical, - OO -, adalah yang diproduksi. Keberadaan radikal bebas di dalam air

diyakini bertanggung jawab atas induksi pemijahan. Metode induksi pemijahan

adalah murah dan dapat diandalkan, asumsi pengkondisian yang tepat telah

dilakukan. Kelas reagen (30 %) direkomendasikan sebagai solusi lemah yang tidak

stabil dan memberikan hasil tidak dapat diandalkan. Abalone harus menghasilkan

yang bergender dan ditempatkan di wadah pemijahan. PH air yang pertama

meningkat menjadi 9,1 dengan menggunakan tris- (hydroxymethylamino) metana. Ini

memiliki berat molekul 121,14 dan ditambahkan dalam larutan 2M di 6.6ml per liter

air laut di pembuluh pemijahan. Sebuah solusi kerja tris dibuat dengan menambahkan

24.22g bahan kimia untuk sekitar 75ml air suling dan topping ini hingga 100ml bila

sepenuhnya dilarutkan. Jika misalnya dua belas ember 10 liter digunakan untuk

pemijahan dengan setiap kotak mengandung 8 liter air kemudian 8 x 12 x 6.6ml =

633.6ml larutan diperlukan. Hal ini akan mengharuskan 169.54g dari tris yang

terlarut dalam air suling untuk membuat 700ml larutan. Setelah itu 52.8ml dari solusi

akan ditambahkan ke setiap wadah pemijahan. Tris umumnya diletakkan dengan

abalone dalam pembuluh pemijahan selama 15 menit. Kelas reagen hidrogen

peroksida diencerkan kurang dari 6%. Untuk melakukan hal ini 20ml dari hidrogen

peroksida ditambahkan ke 80ml air suling. 3ml larutan ini ditambahkan per liter air

dalam wadah pemijahan. Air dalam wadah ini kemudian dicampur. Biasanya abalone

yang tersisa dalam campuran larutan ini untuk 2,5 jam meskipun kali ini mungkin

berbeda dengan spesies, pertanian, negara dan lain-lain.

Hal ini juga dianjurkan untuk melakukan prosedur ini sampai 30 menit antara

jantan dan betina kemudian secara umum pembentukan telur lebih awal dan lebih

mudah dari yang kedua. Setelah 2,5 jam tersebut solusi dialirkan dari wadah dan

abalone dicuci dalam air isotermal untuk menghilangkan jejak bahan kimia. Hal ini

penting karena bahan kimia akan menghancurkan gamet. Wadah tersebut kemudian

diisi ulang dengan isotermal air dan setelah 30 menit sampai satu jam setengah

kemudian abalone harus memulai menumpahkan gamet mereka.

Metode pemijahan Sinar ultraviolet. Meskipun sedikit digunakan di Irlandia

metode ini umumnya dianggap yang terbaik dan paling dapat diandalkan dalam

metode induksi pemijahan di sebagian besar fasilitas budaya abalone di seluruh

dunia. Kadang-kadang sekarang digunakan dalam hubungannya dengan pengeringan

abalone dan juga kejut suhu. Tekanan rendah merkuri jenis lampu UV paling sering

digunakan dan ini menghasilkan panjang spektrum gelombang 254 nanometer yang

sangat dekat dengan puncak diakui efektivitas kuman dari 265nm. Lampu tersebut

cocok untuk digunakan dalam induksi pemijahan tapi semua lampu yang memiliki

watt terkecil bisa digunakan. Disarankan bahwa ada aliran 3-5 liter/jam melalui

wadah dengan induk untuk pemijahan. Sebuah keuntungan dari menggunakan UV

untuk induksi pemijahan adalah bahwa hal itu benar-benar tidak berbahaya ke gamet.

Sebagai hasil perubahan air selama proses pemijahan tidak diperlukan. Hal ini juga

memungkinkan untuk mengatur lampu pada waktu tertentu dengan demikian

membutuhkan proses mengendalikan waktu . Hal ini dianggap bahwa kekuatan UV

ideal untuk pemijahan 800 milliwatt jam per liter untuk Haliotis diskus hannai dan

hal ini menghasilkan gamet jantan setelah 3 jam 15 menit dan gamet betina setelah 3

jam 45 menit.

3. Pengembangan larva dan pemeliharaan larva

Perkembangan larva

Periode ini dianggap waktu antara pemupukan dan inisiasi metamorfosis. Ada

banyak tahap perkembangan selama mencapai periode ini dan beberapa yang utama

adalah diuraikan. Setelah pembuahan badan kutub pertama dilepaskan. Segera setelah

ini badan kutub kedua dibuang dekat dengan yang pertama. Berikutnya tahap

pembelahan pertama dan selanjutnya perpecahan diulang sampai tahap gastrula telah

tercapai. Gastrula yang memiliki bentuk berbeda silia disebut sebagai korset

prototrochal dan rumpun silia disebut pembentukan seberkas apikal. Gastrula secara

sporadis akan berputar dalam membran sel telur. Sebagai rotasi prototrochal korset

mengental dalam membran telur meningkat. Pergerakan ini melemahkan membran

dan dengan bantuan dari seberkas apikal silia embrio istirahat bebas dari atau menetas

dari membran telur. Tahap ini disebut sebagai trochophore. Setelah menetas itu

berenang ke permukaan. Pada waktu ini sekresi shell awal juga dimulai. Dengan

perkembangan kumpulan silia berenang disebut velum yang larva kemudian dianggap

veliger. Pengembangan Shell terus sampai dekat dengan velum. Otot retractor larva

mengembangkan untuk massa visceral ke bagian dalam shell juga membentuk. Otot

retractor tersebut akan memungkinkan veliger untuk menarik ke shell seperti yang

berkembangan shell bertambah besar, seperti pembangunan shell dilanjutkan dengan

pembentukan kaki melalui daerah terbuka dari shell. Pertama rotasi 90° torsi terjadi

berikutnya. Torsi adalah evolusi adaptasi dengan larva moluska untuk memindahkan

posisi kepala/kaki kompleks untuk menawarkan perlindungan lebih dari shell dan

juga untuk meningkatkan pemberian makanan dan sanitasi untuk abalone dewasa.

Kepala/kaki kompleks atau massa cephalo-pedal memutar antara daerah tubuh

tertutup oleh shell larva dan 'pinggang‟. Proses ini akan berlanjut pada torsi tingkat

lebih lambat setelah itu sampai rotasi 180° telah selesai.

Berdasarkan gambar dibawah ini, tahapan 1, 2, 3 dan 4 (A, B dan C)

menunjukkan pemupukan, debit dari dua badan kutub dan pembelahan pertama.

Tahapan 5-10 (D dan E) menunjukkan belahan dada kedua gastrula. Tahapan 11-13

(F dan G) menunjukkan perkembangan silia prototrochal dan prototrochal korset.

Tahap 15 menunjukkan shell larva awal sekresi. Tahapan 16 dan 17 (H dan I)

menunjukkan perkembangan velum dan pembentukan otot retractor masing-masing.

Tahap 18 (J) menunjukkan lampiran integumen ke shell larva. Tahapan 19-22 (K

dan L) menunjukkan tonjolan massa kaki, penyelesaian pengembangan shell, pertama

suhu 90° torsi diikuti oleh massa cephalo-pedal memutar hingga 180°. Tahap 23 (M)

menunjukkan pembentukan duri panjang di metapodium atau kaki sementara. Tahap

24 menunjukkan pembentukan operculum. Tahap 25 (N) menunjukkan

perkembangan silia baik pada kaki sementara Tahap 26 menunjukkan pembentukan

lekukan vertical pada velum. Tahap 27 menunjukkan penampilan eyespot sementara.

Tahap 28 menunjukkan propodium pada daerah depan kaki. Tahap 29 (O)

menunjukkan perkembangan tentakel cephalic yang empat tubulus nantinya akan

berkembang. Tahap 30 dan 31 (P) menunjukkan pengembangan silia pada propodium

dan dalam rongga mantel. Tahap 33 menunjukkan pembentukan cephalic tentakel

pertama sementara Tahap 34 menunjukkan perkembangan otolith. Tahap 35

menunjukkan pengembangan pendek tulang pada cephalic tentakel dan Tahap 36

menunjukkan pertama moncong tonjolan. tahap 37 menunjukkan perkembangan dua

tubulus pada cephalic tentakel dan Tahap 38 menunjukkan pembentukan silia di atas

rongga mantel. Tahap 39 menunjukkan penampilan tubulus ketiga di cephalic

tentakel (mengindikasikan kemampuan untuk menyelesaikan). Tahap 40

menunjukkan retractor tersebut ditarik oleh otot ke dalam rongga mantel sedangkan

Tahap 41 menunjukkan pengembangan tubulus keempat pada cephalic tentakel.

Gambar 6. Tahap perkembangan larva dari Haliotis diskus hanai

Perkembangan operkulum merupakan tahap selanjutnya. Hal ini memudahkan

menyelesaikan pencabutan dari kaki ke shell larva dengan operkulum menyegel

pembukaan shell. Kira-kira pada waktu yang sama silia mulai untuk mengembangkan

pada telapak kaki. Sebuah alur berkembang di velum, suatu tempat mata

mengembangkan dan podia disebut propodium berkembang. Sepasang tentakel

cephalic berkembang di kepala yang empat tubulus yang akan terbentuk. Silia

berkembang di rongga mantel dan mulai untuk mengalahkan. Sepasang dari epipodial

tentakel di kedua sisi kaki di bawah operkulum dan pada tahap ini larva mampu

merangkak di permukaan. Sebuah otolith terbentuk dan moncong itu mulai menonjol

dari bawah velum. Otot retractor larva melekat pada shell larva menarik rongga

mantel membesar ke arah belakang dari shell. Perkembangan larva dianggap selesai

ketika tuberkulum keempat.

Sinopsis di atas dijelaskan secara lebih terperinci dalam Hahn (1989) dan ini

pada gilirannya sebelumnya dijelaskan oleh Seki dan Kan-no (1977). Deskripsi ini

menjelaskan pengembangan Haliotis discus hanai dan sementara banyak tahap utama

adalah serupa dengan larva spesies abalone yang lain waktu yang tepat dan tahap

yang bervariasi. Pada pemeliharaan yang sama Suhu Seki dan Kan-no (1977)

mengamati bahwa Haliotis discus hanai mengambil 76,2 jam untuk mencapai tahap

ini.

Pembesaran Larva

Bagian ini akan membahas penanganan gamet setelah pemijahan

sampai larva siap untuk melekat pada tank yang dilapisi diatom. Selama proses

pemijahan jantan dan betina akan mengeluarkan gamet mereka ke dalam wadah

pemijahan terpisah. Jika abalone dicuci dengan benar dalam air laut isotermal setelah

penghapusan yang Tris dan solusi hidrogen peroksida kemudian lebih lanjut intensif

sejumlah gelas pyrex.

Gambar 7. Diagram dari tipe aliran flow through cultur larva menunjukkan saringan

“banjo” yang terkait dengan air yang melimpah. Ditampilkan pula

sepasang saluran air untuk atas dan dasar dari wadah air dan katup pusat

didasar wadah ini.

Wadah ini harus memiliki sperma banyak dari jantan. Dianjurkan untuk

membuat sebuah solusi dengan sperma segar pada interval selama proses pemijahan

untuk memastikan sperma segar dan terkuat yang tersedia

seluruhnya. Telur, yang negatif apung, bisa dengan mudah lolos dengan lembut

menggunakan diameter tabung sempit melalui sepasang saringan halus. Ukuran

dari saringan yang lebih besar yang sedemikian rupa sehingga memungkinkan telur

untuk lulus tetapi akan mempertahankan feses atau kotoran lain. Idealnya itu harus

300μm karena hal ini juga akan memungkinkan telur berdiameter 220μm yang

melewati rusak. Saringan pengumpul bagian bawah harus 50-90μm dan direndam

dalam air laut. Saringan ini akan mempertahankan telur. Namun itu dianjurkan untuk

tidak menggunakan saringan yang lebih besar dari ini misalnya 120μm, karena

beberapa telur diameter tidak akan jauh lebih besar dari ini dan akan

melewati mesh lebih kecil ketika diangkat keluar dari air dalam bak pemijahan. Ini

akan merusak dan benar-benar banyak pecah dari telur. Sebelum dipindahkan dari

saringan ini, dicuci dengan lembut menggunakan pasokan air laut yang disaring atau

menggunakan lebih besar mesh size dan membiarkan langsung melewati ke dalam

wadah pemupukan.

Untuk proses pembuahan kuantitas pembenihan ember putih yang sangat

bersih dianjurkan ca. 12-15 liter. Ini seharusnya digunakan untuk tujuan tertentu saja

dan harus lulus oleh operator hatchery untuk memberikan gambaran yang tepat dari

volume air yang digunakan sehingga membuat estimasi angka larva cukup gampang.

Sebagai kumpulan betina tampaknya akan mendekati penyelesaian menyedot

pemijahan telur melalui saringan (s) dan mengumpulkan dalam satu untuk beberapa

ember. Pemupukan sebaiknya dilakukan dengan menggunakan sperma kepadatan

tinggi (sperma 20 - 30ml solusi). Biarkan beberapa menit (maksimal 15) bagi tempat

pembuahan. Kemudian dengan lembut menumpah air dari semua tapi bagian bawah

dari wadah dan isi ulang dengan air laut isotermal untuk menghilangkan kelebihan

sperma. Proses ini dapat diulang. Ketika proses ini menyelesaikan pembilasan

biarkan telur dibuahi tenggelam ke dasar kontainer. Sebelum pemisah antara wadah

lainnya membersihkan/aduk lembut pada saringan 75μm. Sebuah lapisan telur di

bagian bawah setiap ember cukup tapi biasanya sedikit lebih daripada kuantitas ini

yang akan mengembangkan dan menetas. Namun jika beberapa lapisan telur dibuahi

mengendap di bagian bawah ember tersebut ada risiko penipisan oksigen yang

mengakibatkan kematian embrio.

Operator hatchery akan tahu berapa banyak telur yang diperlukan, tetapi

dengan telur relatif besar abalone 500,000-750,000 mungkin cukup. Secara umum

sepenuhnya abalone betina matang akan mengeluarkan antara 100.000 dan 500.000

telur. Namun jumlah ini tergantung ukuran, jenis dan usia. Beberapa induk yang lebih

besar dapat melepaskan jumlah yang lebih besar, ca. 1.000.000+, tetapi ini akan

menjadi tidak biasa. Sebuah sampel dari pipet 1ml harus diambil dari bagian bawah

setiap kotak setelah 1 jam, ditempatkan pada perhitungan geser Sedgewick - Rafter

dan diperiksa di bawah mikroskop. Telur diperiksa untuk terjadi fertilisasi atau tidak

adanya badan polar dan tahap pembelahan pertama dalam embrio berkembang lebih

cepat jika pemupukan diputuskan tidak kurang pada tahap ini (< 50 %) maka sperma

segar dapat ditambahkan. Proses ini diulang sampai semua betina telah

menumpahkan gametnya. Embrio-embrio yang tersisa di hatchery semalam dan

dalam keadaan gelap.

Pada keesokan paginya penetasan larva trochophore harus baik berlangsung.

Sebagian besar dari larva akan berenang di atas lapisan air. Banyak dari mereka akan

berenang di spiral khas whorls yang diperpanjang setengah jalan ke wadah yang

karakteristik menuju tahap trochophore. Jika tidak telah ada masalah dengan gamet,

kualitas air atau suhu dari hatchery mungkin terlalu rendah. Dua puluh empat jam

setelah fertilisasi menetas ini harus lengkap. Dalam teori lebih lambat dan

larva lemah menetas sehingga benar-benar terlambat. Lampu dapat berubah pada saat

operator siap untuk memulai pekerjaan. Sekarang dianjurkan untuk memulai mengisi

bins larva sedini mungkin. Ini diisi dengan 1μm air laut disaring dan diperlakukan

UV. Suhu seharusnya tidak banyak berbeda dari yang di penetasan ember. Ini harus

ditentukan dan suhu udara di hatchery harus dipilih untuk mempertahankan

suhu air pada idealnya 18-20°C. Sementara bins larva sedang diisi atas 70-80 % dari

penetasan larva trochophore harus tersedot baik ke ember yang berisi beberapa air

laut disaring UV, atau atas 70-80 % dari jumlah kotak bisa tersedot lembut ke

saringan yang direndam dalam air dan selanjutnya didistribusikan ke dalam ember.

Ketika menyedot ember menyemprot sisi dengan isotermal disaring air UV sebagai

trochophores akan terjebak pada sisi ember sebagai level air turun. Sebuah botol

plastik fleksibel yang ideal dicuci untuk tujuan ini. Biasanya porsi air yang tersisa di

ember palka dibuang. Sementara akan ada banyak menetas dan belum menetas larva

dalam ini juga akan berisi embrio mati, kasus telur banyak dan sumber bakteri

lainnya. Namun, jika pemijahan lebih miskin dari diharapkan maka ember ini dapat

diisi ulang dan menetas kedua pada tahap berikutnya pada siang hari. Setelah

pengumpulan larva dihitung untuk menjamin pemerataan antara pembesaran bins dan

juga untuk memantau kelangsungan hidup pada akhir siklus pemeliharaan. Tiga

sampai lima sampel 1ml diambil dan dihitung pada perhitungan geser Sedgewick -

Rafter. Sebagai larva berenang cukup kuat pada tahap ini mungkin perlu untuk

menempatkan setetes 10 % formalin, membunuhnya, ke bagia untuk memudahkan

penghitungan. Ketika jumlah total telah diperkirakan membagi secara merata antara

pembesaran bins. Ini mungkin tidak praktis untuk melakukan hal ini persis seperti

mereka harus dipindahkan segera setelah mereka telah dihitung. Berbeda dengan

tahap larva dari beberapa spesies kerang lainnya stocking kepadatan bukan isu yang

penting. Alasan utama untuk ini adalah larva lecithotrophic. Ini berarti bahwa mereka

memiliki makanan sendiri yaitu kuning telur yang memasok dengan makanan yang

dibutuhkan untuk mencapai tempat hidup dan melalui metamorfosis. Umumnya

kerang larva planktotrophic dan untuk mencapai penyelesaian mereka bergantung

pada fitoplankton sebagai sumber makanan mereka. Akibatnya fase planktonik

bisa bertahan hingga beberapa bulan bagi larva di laut. Lecithotrophic larva abalone

sering siap menetap dalam waktu lima hari. Larva ini tidak memerlukan mikroalga

untuk dibudidayakan atau makannanya. Tidak ada kompetisi untuk makanan di

tempat bins pemeliharaan dan kepadatan tebar seperti ini bukan masalah besar.

Sebuah kepadatan tebar akan nyaman menjadi 5 larva per ml air laut dalam wadah

budaya tetapi mereka bisa dengan mudah ditebar di 10+per ml. Awalnya sistem

kultur larva abalone akan menjadi 'statis'. Ini seperti yang digunakan dalam tiram atau

kerang budaya dimana veligers kerang yang dipelihara dalam wadah budaya besar

dan dalam air dikosongkan atau tersedot keluar secara teratur. Sementara air sedang

berubah, larva dipertahankan pada jala saringan yang direndam dalam air laut.

Kebanyakan fasilitas budaya abalone pada larva yang dibudidayakan hadir dalam

aliran – melalui sistem pemeliharaan.

Memang beberapa fasilitas akan air larva yang berasal dari AC wadah/bah

dengan penambahan radiasi UV sebelum air memasuki budaya pembuluh.

Sebuah bah besar atau bah ganda ca. 1.000 - 2.000 liter diperlukan. Ini membutuhkan

baik pemanas perendaman atau in-line titanium pemanas untuk meningkatkan suhu

air untuk 18-20°C. Air ini disaring untuk 1μm jika mungkin dan UV dicegah sebelum

memasuki pembuluh budaya. Reservoir harus memiliki katup mengambang

untuk menunjukkan kapan air laut segar perlu diperkenalkan. Sebuah pompa

memasok air ke tangki kultur di dalam ruang penetasan. Itu mengalir ke masing-

masing bin diatur oleh serangkaian katup air di dalam hatchery dan kelebihan

dikembalikan ke reservoir melalui balasan katup. Umumnya tangki kultur memiliki

kapasitas 300-500 liter. Hal ini cenderung silinder di atas dengan baik dasar kerucut

atau hemispherical. Di dasar tangki harus ada katup untuk memungkinkan

pengeringan lengkap untuk menghilangkan dan juga membersihkan larva. Aliran

melalui masing-masing tangki tidak dihitung sangat ilmiah, tetapi harus benar-benar

sampai beberapa liter per menit dengan tangki 300-350 liter. Air keluar melalui

lubang tangki ca. - 90 150μm. Sebuah 'banjo' saringan umumnya digunakan dan di

sinilah mesh terpasang pada pipa pvc cincin .

Gambar 8. saringan „banjo‟ ganda pada pembesaran bin

Biasanya cincin ini akan menjadi lebar 25mm dan memiliki diameter 20mm+.

Ini harus sepenuhnya terendam dalam air kultur untuk memastikan luas permukaan

maksimum untuk larva dan kontak mesh. Luas permukaan yng kurang semakin besar

kemungkinan menyumbat akan terjadi dengan risiko meluap dan kehilangan larva

berikutnya. Desain lainnya seperti pipa dengan slot alur besar atau dihapus dan

ditutupi dengan jaring juga dapat digunakan. Ini mungkin sebenarnya menawarkan

luas permukaan lebih besar dari saringan 'banjo'.

Para trochophores didistribusikan secara merata kemungkinan antara

pemeliharaan bins. Pada kenyataannya 4-8 bins harus cukup untuk memenuhi

sebagian pemijahan. Jika larva ditebar pada tingkat rendah 5 per ml air laut dan bins

memiliki volume liter 350 maka ini dapat terus 1,750,000 veligers.

Gambar 9. Pembesaran bin larva digunakan oleh Mara Chleire Teoranta.

Empat dari bins tersebut bisa memegang 7 juta larva, dan enam tempat bins

berpotensi bisa menampung lebih dari 10 juta. Ini harus mewakili kapasitas yang

cukup memegang larva untuk mengakomodasi berbagai ukuran pemijahan (aerasi

dapat terputus selama 24 jam). Jika diaktifkan itu harus sangat lembut. Hal ini

disebabkan fakta bahwa shell pada veliger masih berkembang dan agitasi yang

disebabkan oleh aerasi akan menyebabkan shell kelainan. Khususnya, otot, dan

retractor integumen lampiran ke shell tidak membentuk, sehingga mengarah ke

mortalitas sangat berat nanti dalam siklus larva. Pada hari kedua setelah pengenalan

tangki aerasi dihidupkan lembut.

Gambar 10. Pembesaran larva abalone bins dalam flow through oleh Brandon Bay

Seafoods

Penggunaan aliran-melalui sistem yang ada sedikit tenaga kerja atau

pemantauan yang diperlukan. Larva dapat diperiksa secara mikroskopis di seluruh

siklus untuk memantau perkembangan tapi ini bahkan tidak diperlukan. Ini mungkin

juga perlu untuk mematikan air, menghapus dan membersihkan saringan 'banjo'

sesekali, atau cadangan set saringan dapat digunakan untuk tujuan ini. Jika kondisi

suhu tertentu, adalah normal selama siklus pemeliharaan larva haliotis discus hanai

akan kompeten dan siap untuk penyelesaian pada hari kelima setelah abalone bertelur

atau hari keempat setelah diperkenalkan ke dalam larva pemeliharaan kontainer.

4. Settlement

Settlement adalah proses veligers mencari substrat yang cocok dan

selanjutnya berubah dari larva berenang ke juvenil dan sedang menjalani proses

terkait metamorfosis. Ini dianggap bahwa veligers kompeten untuk menetap bila ada

tonjolan moncong. Sementara mereka mampu Settlement pada tahap ini mereka tidak

benar-benar mampu menjalani metamorfosis sampai beberapa waktu kemudian.

Umumnya dianggap sebagai penampilan tubulus ketiga di cephalic tentakel. untuk

Haliotis diskus hannai ini sesuai dengan sebuah EAT dari 925° C - jam untuk

tonjolan moncong dan 1030°C-jam untuk munculnya tubulus ketiga tentakel cephalic

atau 74,6 dan 85,5 jam setelah pembuahan pada Suhu 20 ° C. Veliger bisa menetap

pada substrat untuk jangka waktu dan berenang jika substrat tidak cocok. Proses

hanya menjadi ireversibel ketika larva gips dari sel silia 24 dari velum dan

metamorfosis dimulai. Selama metamorfosis ada lebih lanjut pengembangan pada

tentakel cephalic, pertumbuhan shell, radula pembentukan, mulut dan pengembangan

saluran pencernaan. Awalnya mulut hanya sekitar 10ìm tapi setelah sekitar dua hari

meningkat menjadi ca. 30μm. Insang tidak berkembang juvenil sampai jauh

kemudian dan 02 berdifusi atas permukaan mantel.

Induksi Settlement

Ada yang dianggap sejumlah stimulan yang dapat menginduksi pemukiman

dan metamorfosis berikutnya dalam abalone larva. Ini adalah diatom, lendir dan

GABA.

Diatom

Diatom adalah mikroalga laut dan dapat menjadi planktonik dan bentik.

Bentik diatom adalah sumber utama makanan untuk baru menetap abalone remaja.

Sementara juvenil yang baru menetap tampaknya cukup selektif untuk spesies diatom

yang mereka makan saat induksi Settlement tidak muncul untuk menjadi terkait erat

dengan spesies diatom tertentu. Diatom mengeluarkan ekstraseluler lendir dan ini

juga diyakini dapat dimanfaatkan sebagai sumber makanan. Itu sementara diyakini

yang baru menetap juvenil mungkin sebenarnya tidak dapat

mencerna beberapa spesies diatom mereka mampu mencerna lendir mereka.

Lendir

Lendir disekresikan oleh kaki abalone juvenil dan dewasa. itu

tetap melekat pada substrata yang mereka lewati dan diperkirakan relatif tidak larut.

Larva telah diamati menetap di kepadatan tinggi pada jalur mukosa tangki

pembibitan. Hal ini diyakini bahwa larva benar-benar dapat membedakan antara yang

jenis lendir berbeda disekresikan oleh kaki. Mereka tampaknya mendukung lendir

disekresikan bila abalone dewasa atau juvenil telah beralan. Baru saja

juvenil diselesaikan juga diyakini memakan ini sejenis mukosa trail dan tampaknya

menjadi sumber nutrisi yang sangat baik pada tahap ini. Abalone harus dilepaskan

sebelum Settlement agar tidak bersaing untuk pangan dengan juvenil baru. Beberapa

penetasan menggunakan jalan mukosa selain pelapis benthic diatom mendorong

larva abalone meskipun tidak menciptakan tambahan tenaga kerja dalam proses

intensif yang sudah kerja.

GABA

Telah lama diakui bahwa crustose alga merah termasuk Lithophyllum spp.,

dan Lithothamnion spp. berhubungan dengan Settlement abalone juvenil. Morse et al.

(1979) berpendapat bahwa hadirnya substansi makromolekul dalam alga ini

merangsang tempat hidup dan metamorfosis. Hal ini dipercaya bahwa zat ini

terkait erat dengan GABA atau γ-aminobutyric acid. Senyawa ini adalah

neurotransmitter yang ditemukan dalam otak manusia dan juga dalam jaringan

hewan yang lebih tinggi. Sementara sejak saat itu telah membuktikan bahwa GABA

tidak hadir substansi yang sebenarnya di Lithothamnion/Lithophyllum bertanggung

jawab atas induksi metamorfosa itu memang memiliki sejenis mempengaruhi sebagai

senyawa. GABA tidak menginduksi penyelesaian veligers jika digunakan pada waktu

yang benar dan konsentrasi. Namun menggunakan konsentrasi yang terlalu kuat dapat

mematikan.

Metamorphosis

Ini adalah proses dimana veliger larva berenang berkembang

menjadi bentik juvenile yang merangkak. Ada serangkaian tahapan yang berbeda

dalam proses ini dan bervariasi antara spesies, tetapi sekali metamorfosis telah

dimulai proses akan selesai dalam 24 jam. Tidak ada makan selama periode ini dan

sepanjang proses bergantung pada energi kuning telur dari larva. Salah satu tahap

pertama adalah pengecoran dari velum renang. Mantel membran memisahkan dari

shell larva dan bergerak ke shell tepi . Pertumbuhan Juvenile shell dimulai diikuti

oleh bagian mulut awal pengembangan, pembentukan tentakel cephalic, dan

pembentukan radula. Itu saluran pencernaan kemudian mengembangkan dan segera

setelah mulut menjadi penuh dikembangkan. Sistem peredaran darah juga

mengembangkan dan jantung mulai mengalahkan. Mulut sangat kecil pada tahap ini

dan mereka mampu dari menelan hanya diatom sangat kecil ca. 10ìm panjang dan

mereka juga diyakini mencerna bakteri pada tahap ini. Metamorfosis juga melengkapi

abalone juvenil memiliki panjang cangkang ca . 350μm .

Peran diatom bentik di tempat hidup dan makanan juvenil

Bentik diatom sangat penting dalam budaya abalone. Ini merupakan sumber

makanan bagi larva baru bermetamorfosis, dan tanpanya juvenil akan kelaparan.

Cadangan kuning telur membawa larva melalui lingkungan hidup dan metamorfosis

tetapi setelah itu diperlukan mencerna diatom kecil. Budaya ini fase antara

lingkungan hidup dan penyapihan menawarkan potensi untuk meningkatkan atau

menurunkan keberlangsungan hidup. Pentingnya peran diatom bentik dalam hal ini

sering sangat meremehkan. Telah diamati di banyak tempat penetasan kematian di

seluruh dunia yang skala besar dapat terjadi, khususnya antara tiga dan delapan

minggu setelah settlement (Leighton, 1989;Roberts et al, 1999). Pada 5mm panjang

cangkang abalone dianggap sangat kuat dan mudah dapat ditransfer ke unit

penyapihan atau unit tertentu ongrowing lainnya. Settlement umumnya dilakukan di

3.000 liter. Tingkat kelangsungan hidup dalam penetasan Irlandia telah meningkat

pesat pada angka di atas. Perbaikan dapat dikaitkan dengan tiga faktor besar;

o Kemajuan dalam bentik diatom produksi layer danbudaya massa diatom ;

o Penggunaan settlement plate Taiwan dan keranjangsistem;

o Pemahaman yang lebih besar dan penggunaan sistem penyapihan teknologi;

Kawamura et al. (1998) menyarankan sejumlah faktor yang menentukan

efisiensi pencernaan diatom yang regangan untuk posting abalone larva:

a. Kekuatan Lampiran - beberapa sangat erat melekat diatom memerlukan tenaga

yang cukup untuk menghapus radular mereka dan hasilnya biasanya rusak. ini

sangat membantu dalam proses pencernaan berikutnya. Lainnya dengan kekuatan

perekat yang lebih rendah benar-benar dapat lulus melalui usus hidup dan tidak

tercerna.

b. Kekuatan Struktur - dengan kekuatan dinding sel atau frustule juga dapat

menentukan apakah dinding sel rusak selama merumput dan selanjutnya

pencernaan. Ini merupakan keuntungan khusus untuk juvenil lebih 0.6 mm

bahwa dinding sel rusak.

c. Morfologi Seluler - ukuran sel dan/atau tangkai panjang dapat membatasi

kecernaan particularily di juvenile kecil pasca larva.

Persiapan tank penempelan larva

Dalam pembenihan abalon komersial di seluruh tank budidaya dunia biasanya

setidaknya beberapa ribu liter dengan, dan memiliki rak atau keranjang piring

Settlement yang jelas. Desain mungkin berbeda tetapi tujuannya umumnya sama di

seluruh. Plat Settlement digunakan baik dari baru atau benar-benar digosok untuk

menghapus semua debu yang dapat mengganggu pertumbuhan diatom. Dalam

beberapa penetasan belahan bumi selatan tidak ada banyak penekanan pada

pembersihan plat. Lempeng ini adalah digosok di air asin dan kembali segera untuk

memanfaatkan diatom yang ada dan khususnya lapisan lensa Ulvella yang melapisi

pelat sepanjang tahun. Lensa Ulvella bukan bentik diatom tapi hijau makroalga. Hal

ini sangat sulit dan mereproduksi oleh keluaran massal zoospora dari sporofit dewasa.

Hal ini lazim di banyak lebih besar abalone negara produsen seperti AS, Cina,

Jepang, Australia dan Afrika Selatan. Meskipun mungkin hadir di perairan Irlandia

atau setidaknya spesies terkait erat hadir, membentuk lapisan tidak alami pada plat di

penetasan. Sementara ini adalah kerugian kepada produsen abalone Irlandia itu bukan

faktor pembatas. Bahkan di negara-negara penghasil abalone lain ada kecenderungan

untuk mengizinkan atau mendorong spesies diatom untuk melapisi plat di samping

lensa Ulvella. Namun, lensa Ulvella adalah tidak rentan terhadap runtuh seperti

pelapis diatom. Membersihkan plat yang digunakan dalam penetasan Irlandia

memiliki tenaga kerja intensif. Jika lempeng telah dibiarkan kering selama periode

pemindahan reruntuhan alga bisa sangat merepotkan. Hal terbaik adalah

meninggalkan plat dalam air perendaman dan kemudian membersihkan sesegera

mungkin setelah abalone juvenil. Crustose alga juga dapat sulit untuk menghapus.

Operator hatchery harus mencoba untuk menyeimbangkan jumlah tenaga kerja yang

diberikan kepada membersihkan palt dengan kondisi permukaan plat di wadah

pemeliharaan. Lebih sering daripada tidak menggosok cepat setiap permukaan plat

dengan sikat lembut atau mencuci dengan kekuatan selang mungkin cukup untuk

membuang kelebihan kotoran dan memungkinkan penyelesaian diatom yang

memadai setelahnya. Sekarang ada mesin pembersih platt komersial tersedia dan ini

mungkin layak dibeli untuk penetasan memproduksi sejumlah besar benih.

Selain menggunakan plat yang bersih atau baru dan keranjang untuk menyediakan

luas permukaan untuk bentik diatom, disarankan untuk menggunakan tank

permukiman yang berwarna putih. Warna putih mencerminkan cahaya dan sangat

meningkatkan pembentukan diatom. Hal ini juga memfasilitasi pengamatan yang

relatif mudah diselesaikan. Desain tangki bervariasi tetapi pada umumnya mereka

memiliki volume di lebih dari 1.000 liter, tetapi dalam beberapa penetasan tank

sekecil 500 liter yang digunakan.

Gambar 11. Tangki pelektan

Plat Taiwan dan sistem keranjang telah menjadi standar untuk pembenihan

Irlandia. Mereka memiliki banyak keunggulan dibandingkan tradisional ditangguhkan

pasang plat yang awalnya digunakan dalam penetasan Irlandia. Mereka

menyediakan sejumlah besar luas permukaan karena ada 20 plat per keranjang.

Mereka kompak dan relatif mudah untuk menangani. Hal ini umumnya

diterima bahwa konsentrasi tertinggi penempelan larva terjadi pada

permukaan atas kurva pada plat. Ada banyak lekukan di setiap lempeng sehingga

meningkatkan area spesifik untuk tempat hidup larva. Sedikit merugikan dari

lempeng-lempeng karena begitu berdekatan di keranjang sehingga cahaya sulit untuk

menembus bawah tangki sehingga mengurangi coating diatom. Rotasi dari keranjang

hingga 180° (jungkir balik) dapat mengurangi ini ke batas . Jika tangki pemukiman

cukup besar maka tidak mungkin diperlukan untuk mengemas keranjang sangat dekat

bersama, khususnya di sepanjang margin tangki sehingga memfasilitasi penetrasi

cahaya yang lebih baik dan pertumbuhan diatom yang dihasilkan.

Gambar 12. Plat dan keranjang pengkulturan bentik untuk settlement

Transfer larva dari hatchery ke tangki pemeliharaan

Secara umum larva veliger kompeten ditransfer pada kelima hari setelah

pembuahan asumsi bahwa suhu pemeliharaan memiliki telah dipertahankan pada 18-

20°C, meskipun hal ini bervariasi dengan abalone spesies. Tank-tank pemeliharaan

harus disiapkan seperti yang dijelaskan atas. Cara terbaik adalah memiliki tipis,

lapisan tunggal, tidak lebih dari debu pada permukaan plat, dan tangki . Pelapis lebih

berat cenderung menjadi 3D dan sangat kusut. Ada risiko yang baru diselesaikan

juvenil tertutupi oleh seperti pertumbuhan berat. Jenis Pertumbuhan juga dapat

meninggalkan area anoxic pada permukaan plate angka kematian juvenil. Namun,

jika tangki telah mencapai kondisi ini kemudian dilanjutkan dengan settlement.

Variasi suhu antara wadah pemeliharaan larva dan tangki penyelesaian harus sama

atau paling bervariasi dengan hanya beberapa derajat. Selama kondisi puncak musim

panas larva akan sangat mirip sedangkan pada periode lain suhu tangki pemeliharaan

mungkin perlu ditingkatkan dengan menggunakan pemanas celup atau air hangat dari

sistem pemanas boiler.

Larva harus diperiksa untuk perilaku merangkak dan meluncur transfer pada

pagi hari. Hal ini diamati di bawah mikroskop sebagai larva menggunakan kakinya

menonjol untuk memindahkan pendek jarak sementara di kontak dengan geser

permukaan. Larva dapat baik dikeringkan atau tersedot saringan ca. 90μm

direndam dalam air. Jika pengeringan melalui katup di bagian bawah tangki

memastikan arus ini tidak cukup kuat untuk merusak veligers ketika datang di kontak

dengan permukaan mesh. Ketika menghilangkan larva penting untuk memiliki tetesan

air laut disaring untuk mencuci mereka turun dari saringan banjo dan dinding wadah

budidaya. Ini bisa melalui selang sempit atau tabung dari pasokan air larva

atau dengan mencuci menggunakan botol plastik. Gagal melakukan hal ini dapat

mengakibatkan kerugian hingga 50 % dari larva ketika mereka siap melekat pada

permukaan bin pemeliharaan pada tahap ini.

Ketika tangki telah dikeringkan maupun tersedot larva harus lembut dicuci ke

dalam ember lulus. Dari dikenal Volume 3 sampai 5 aliquot harus diambil dan

dihitung di bawah mikroskop menggunakan Sedgewick-Rafter atau slide

penghitungan serupa. Ini mungkin perlu menggunakan setetes larutan formalin 10 %

jika mereka sangat aktif. Menghitung diperlukan untuk memperkirakan total

jumlah larva yang akan didistribusikan antara tangki yang tersedia. Jadi jika tangki

pembibitan biasanya menghasilkan antara 15.000 - 25.000 remaja setelah empat

bulan maka lebih baik untuk dimasukkan ke dalam 250.000 larva untuk mencapai ini

sebagai melawan menempatkan dalam 500.000 untuk hasilnya sama. Air dan udara

dimatikan dan tingkat air turun sedikit. Ini di tinggalkan sampai hari itu ketika

settlement telah diamati. Mereka kemudian diaktifkan pada tingkat rendah.

Gambar 13. Plat dalam keranjang yang baru saja juvenile settle tampak pinggir

Banyak orang Jepang kultur penetasan Haliotis diskus hannai

merekomendasikan menambahkan 1,000-4,000 larva per m2. Hal ini kemudian akan

menghasilkan antara 100-700 juvenil per m2 pada rata-rata panjang shell 5mm

(Roberts , 2000). Hal ini sebenarnya tidak berbeda dengan angka 30-60

per plat diamati dalam penetasan Irlandia ketika mereka memiliki panjang shell

antara 3mm-10mm. Untuk angka di atas per plat atau per m2 menjadi diasumsikan

bahwa ada pemeliharaan yang wajar lapisan film diatom selama periode tersebut.

Namun film diatom dapat overgrazed melalui terlalu banyak penambahan larva,

sebagai akibat dari kondisi pertumbuhan yang buruk atau dari copepoda membangun

di dalam tangki. Ini juga sangat sensitif terhadap perubahan lingkungan dalam

tangki. Fluktuasi suhu cepat, kehilangan aerasi atau kehilangan pasokan air dapat

mengakibatkan keruntuhan total dari lapisan. Terlepas dari hal ini sehingga tidak ada

makanan untuk juvenil sehingga merugikan dalam kualitas air dan keduanya dapat

berkontribusi terhadap kematian berat .

Gambar 14. Area settlement

Jika ada diatom penggembalaan maupun runtuhnya diatom maka sisa atau

hidup juvenil akan membutuhkan pakan tambahan diatom kecuali mengeluarkan

dapat segera dipindahkan ke sistem penyapihan dan dapat dilengkapi dengan tiruan

yang cocok atau diet rumput laut. Jika ada berat runtuh yang terbaik untuk menyedot

bawah tangki settlemen segera atau memang jika juvenil adalah beberapa mm

panjang dan suhu udara tidak terlalu tinggi di unit pembibitan kemudian tangki

harus dikuras dan diisi ulang dengan cepat. Budaya diatom bentik dapat digunakan

sebagai sumber makanan alternatif pada tahap ini dan mengatasi stres transfer ke

sistem baru diikuti oleh menyapih ke diet baru. Ada risiko infeksi copepoda berat

dalam tangki jika tidak dibersihkan segera setelah runtuhnya diatom.

5. Budaya bentik diatom

Bentik diatom dapat memainkan peran yang sangat penting dalam

pembenihan/pembibitan abalone jika digunakan bersama dengan dikelola secara

alami terjadi biofilm pada substrat tempat hidup. Hal ini juga sangat masuk akal

bahwa melalui spesies diatom pilihan abalone benar bisa diproduksi sepanjang tahun,

meskipun dalam skala yang lebih kecil, tanpa perlu menggunakan biofilm alami.

Seperti telah disebutkan beberapa spesies diatom merupakan sumber makanan seperti

ekstraseluler lendir bahwa masih rahasia. Diatom lainnya aktif mendorong

penyelesaian sementara sedikit manfaat sebagai sumber makanan. Tujuan khusus

penelitian ini adalah untuk massal menghasilkan diatom bentik dan menilai

keuntungan mereka pada pertumbuhan dan kelangsungan hidup abalone juvenile.

Percobaan juga dilakukan untuk mengevaluasi manfaat gizi dari spesies yang

berbeda. Prosedur untuk budaya, pemeliharaan dan upscaling budaya ini bentik yang

didirikan. Teknik ini mungkin sedikit berbeda dengan yang digunakan di penetasan

lain tetapi mereka menguraikan prinsip-prinsip dasar bentik budaya diatom.

Gambar 15. Tank containing adult seed plates of Ulvella lens dan Basket of

settlement plates heavily coated in Ulvella lens

6. Manajemen abalone juvenile selama fase pembibitan awal

Manajemen selama tahap pembibitan juvenil ditujukan memaksimalkan

bertahan hidup selama ini paling penting dari fase. Ini adalah periode setelah

200,000-800,000 larva yang kompeten telah dipindahkan ke tangki ini untuk

settlement. Hal ini dimungkinkan untuk ganda atau treble output dengan mengadopsi

strategi manajemen yang benar. Teknik manajemen tersebut dapat padat karya

dan memakan waktu dan sangat tergantung pada ketersediaan staf. Namun, sementara

strategi tersebut yang dianjurkan itu tidak berarti penting. Tangki pembibitan hampir

dapat tersentuh untuk waktu yang lama periode menyimpan sesekali menyedot atau

menguras untuk membersihkannya. Umumnya, tangki akan menghasilkan pasokan

rendah tapi stabil dari juvenil. Itu sangat ke atas operator penetasan dan jumlah

tertentu dari pengeluaran yang diperlukan.

Estimasi keberhasilan settlement

Sekitar dua minggu setelah settlement, melaksanakan angka perkiraan pada

jumlah juvenil di setiap tangki. Pilih sebuah keranjang di dalam tangki dan

menetapkan sejumlah mis B7 (Keranjang 7). Pilih 2 sampai 3 plat dalam keranjang.

Sekali lagi, menetapkan nomor misalnya P1, P8, P19. Keluarkan plat, menemukan

sudut yang cocok dengan cahaya untuk melihat juvenil. Ditahap ini kecil (< 1mm)

dan muncul sebagai tidak lebih dari flek putih atau bintik. Menggunakan counter

tangan, menjalankan mata bersama setiap alur dan klik. Menghitung satu sisi plat

kemudian membaliknya dan ulangi. Ulangi untuk plat lain dan ketiga jika diperlukan.

Lakukan sama dengan sejumlah keranjang lain dan mendapatkan jumlah rata-rata

dari remaja per plat dan kalikan dengan jumlah total plat di tangki . Secara umum 3-5

keranjang harus cukup untuk memberikan penilaian yang akurat tentang jumlah plat

di dalam tangki. Proses ini menghitung dapat diulang pada mingguan atau setiap dua

minggu dasar dan memberikan penumbuh ide yang akurat tentang jumlah

percekcocan dalam tangki. Hal ini juga akan memberikan indikasi kematian yang

mungkin terjadi dan menunjukkan waktu sistem berkembang untuk mentransfer

abalone dari tangki yang lain.

Pemantauan film diatom bentik

Jika prosedur di atas sedang dilakukan maka juga akan mengaktifkan petani

untuk menilai jumlah diatom meliputi di plat. Agak sering untuk mencapai

keseimbangan dimana jumlah pengkulturan dan jumlah pengisian diatom adalah

sama. Ini adalah situasi yang diinginkan dan ideal. Namun , secara berlebihan dapat

mengakibatkan film diatom yang benar-benar dihapus dari plat. Jika benih kurang

dibandingkan penanganan 3mm cukup sulit. Setelah benih adalah 5mm atau lebih

mereka cukup kuat. Jika film diatom adalah over- menyerempet dan juvenil adalah

ca. 5mm kemudian mereka cukup besar untuk mentransfer keluar dari tangki. Mereka

dapat disikat dari plat ke dalam sistem penyapihan atau sebaliknya, mereka bisa

disikat ke dalam tangki settlement lain dengan lapisan diatom yang memadai. jika

jelas bahwa film diatom telah dihapus sebagai akibat dari pengkulturan

maka abalone-abalone ini harus dibagi antara dua tangki. Jika Film diatom runtuh

sebagai akibat dari masalah kualitas air atau infeksi copepoda maka prioritas harus

untuk menghapus materi yang membusuk dari dasar tangki dan juga permukaan plat.

Faktor penyebab yang harus diatasi apakah itu pasokan udara atau air dan lain-lain.

Benih lebih dari 5mm dapat pindah ke lain sistem tumbuh. Jika benih dalam

tangki kurang dari 5mm (misalnya 1.5mm- 4 mm) lebih sulit untuk mentransfer

mereka. Dalam situasi seperti itu adalah lebih baik untuk menambahkan diatom

berbudaya ke tangki sampai mereka cukup besar untuk mentransfer. Namun, mereka

dapat menepis jika benar-benar penting dan dipindahkan ke tangki lain wadah yang

dilapisi diatom. Jika benih yang ditinggalkan setelah runtuhnya diatom maka ini akan

kematian tak terelakkan. Namun, tidak mungkin bahwa semua juvenil akan mati.

Setelah periode spesies makroalga akan mulai menjajah dinding tangki dan

permukaan plat dan banyak juvenil yang tersisa akan mampu memanfaatkan ini

sebagai sumber makanan. Bulan kemudian harus ada beberapa ribu juvenil tersedia

untuk transfer ke penyapihan atau sistem growout. Penetasan harus melalui

pengalaman, menyadari kapasitas dari desain tangki pemukiman tertentu dalam

pembibitan. Jumlah plat dalam beberapa minggu settlement akan menunjukkan jika

tangki diisi dengan benar. Jika plat kemudian overstocked bisa dipindahkan ke tangki

lain. Dalam beberapa minggu dari pemukiman mengatasi itu, tangki settlement tanpa

abalone juvenil tetapi dengan plat dan keranjang, yang mekar up. Setiap plat kedua

dari masing-masing keranjang ini kemudian ditukar dari tangki juvenil menjadi

tangki kosong. Pelat dengan benih diganti dengan plat dilapisi sepenuhnya dari

tangki kosong. Setelah beberapa saat, spat akan mulai mendistribusikan secara merata

seluruh kedua tangki. Demikian pula, jika benih adalah ca. 5mm dan tangki mulai

menjadi over- menyerempet dan tidak ada sistem penyapihan atau sistem growout

tersedia, maka juvenil bisa disikat dari plat ke yang baru dilapisi penuh tangki.

Jika kepadatan tebar, intensitas cahaya dan masalah kualitas air memiliki pengelolaan

secara memadai, maka seharusnya tidak ada kebutuhan untuk spat

mentransfer atau makan diatom tambahan selama periode ini. Abalone dapat biarkan

dalam tangki selama enam bulan atau lebih. Ini ditentukan oleh penyapihan atau

ruang growout tersedia. Jika tetap di dalam tangki untuk jangka waktu lama maka

mungkin dialihkan langsung ke sistem growout.

DAFTAR PUSTAKA

Leighton, P. 2008. Abalone Hatchery Manual. Aquaculture Technical Section,

Aquaculture Development. Nomor 25. 95 p.

Pacquiao, J. Salomon, M.A. Songnui,A. Kimyan, K. 2011. Training Course on

Abalone Hatchery and Grow-out. Southeast Asian Fisheries Development

Center Aquaculture Department. Iloilo. Philipphines. 6 p.