SHORT ESSAY TUGAS KELOMPOK

ROTASI KESEHATAN MASYARAKAT VETERINER

yang dilaksanakan di

LAB. KESEHATAN MASYARAKAT VETERINER

Oleh

Ari Purnamasari Putu A., S.KH 130130100111011

Fitri Amalia Riska, S.KH 130130100111030

Galuh Asmoro Putro, S.KH 130130100111024

Jefri Hardyanto, S.KH 130130100111026

Paura Rangga Zobda, S.KH 130130100111022

Prima Santi, S.KH 130130100111020

Rizka Asrini, S.KH 130130100111016

Wakhidatus Inrya M., S.KH 130130100111027

Yosia Arauna, S.KH 130130100111031

Yulinar Risky Karaman, S.KH 130130100111018

PENDIDIKAN PROFESI DOKTER HEWAN

PROGRAM KEDOKTERAN HEWAN

UNIVERSITAS BRAWIJAYA

MALANG

2014

1. Tuliskan cara kerja sterilisasi basah dan sterilisasi kering dengan alat yang

ada di laboratorium kesmavet.

Sterilisasi adalah usaha untuk membebaskan bahan-bahan dari mikrobia yang tidak

diinginkan. Terdapat dua cara yaitu sterilisasi dengan cara basah dan sterilisasi

dengan cara kering.

Sterilisasi Basah

Pada sterilsasi ini menggunakan Autoclave, fungsi dari autoclave adalah alat untuk

mensterilkan alat-alat atau media dengan menggunakan uap air bertekanan tinggi.

Umumnya pada suhu 121C selama 15 menit pada tekanan 1 atm. Uap air panas akan

merusak protein mikroba hingga mengalami koagulasi, pada saat itu protein akan

mengendap (denaturasi) dan menyebabkan kematian pada mikroba.

Cara kerja :

a. Media yang akan disterilisasi tersebut dimasukkan ke dalam Erlenmeyer,

kemudian disumbat dengan kapas dan dibungkus alumunium foil untuk

selanjutnya disterilisasi di dalam autoklaf.

b. Mengisi air (lebih baik menggunakan aquades) ke dalam autoclave, jangan

sampai melebihi batas penyangga tempat penyipanan alat/media.

c. Setelah alat/media dimasukkan, tutup autoclave rapat-rapat dankencangkan

kunci tutupnya. Kemudian nyalakan tombol ON-nya.

d. Setelah air menetes keluar dari klep pengaman, yaitu tempat uap air keluar untuk

menjaga stabilitas tekanan tetap dibuka, tutup klep tersebut.

e. Setelah itu, bila jarum sudah menunjukkan angka 121C/15 lbs, biarkan

kedudukan selama waktu sterilisasi yang diperlukan dengan cara mengukur besar

kecilnya pemanasan.

f. Setelah sterilisasi selesai, matikan listriknya dan biarkan jarum penunjuk

kembali ke angka nol dengan sendirinya.

g. Setelah itu klep dibuka dan tutup digeser, kemudian isi autoclave dikeluarkan.

h. Setelah selesai semua proses matikan powernya.

Sterilisasi Kering

Pada sterilisasi ini menggunakan oven, fungsi dari oven adalah mensterilkan bahan-

bahan atau alat-alat gelas secara kering pada suhu 70 - 80C selama dua jam.

Cara kerja :

a. Bahan yang akan disterilisasi dibungkus dahulu dengan kertas arang.

b. Masukkan ke dalam oven dan setel pada suhu 80C

c. Tunggu dan diamkan selama dua jam. Waktu untuk sterilisasi kering cukup lama

yaitu sekitar dua jam, karena hanya menggunakan udara panas, dimana kontak

dengan media tidak terjadi secara langsung dan intens, tidak seperti menggunakan

uap panas.

2. Tuliskan langkah kerja uji MPN pada sampel susu

Uji Cemaran Koliform dengan Metode MPN (SNI 2897: 2008)

Alat dan bahan :

Tabung reaksi, tabung durham, inkubator, timbangan, botol media, gunting, pinset, jarum

inokulasi, pembakar bunsen, stomacher, pH meter, timbangan, magnetic stirer, pengocok

tabung (vortex), inkubator, penangas air, autoklaf, lemari steril (clean bench), lemari

pendingin, freezer, larutan buffer pepton water (BPW) 0,1%, media Lactose Broth (LB),

media Briliant Green Lactose Bile Broth .

Prosedur Pengujian

Penyiapan sampel

1. Masukkan susu cair sebanyak 25 ml secara aseptik, selanjutnya masukkan dalam wadah

steril

2. Tambahkan 225 ml larutan BPW 0,1 % steril ke dalam kantong steril yang berisi sampel

lalu homogenkan selama 1-2 menit

Cara pengujian menggunakan seri 3 tabung, seperti pada cara berikut :

a. Uji Pendugaan

1. Pindahkan 1 ml larutan engenceran 10-1

tersebut dengan pipet steril ke dalam larutan 9 ml

BPW 0,1% untuk mendapatkan pengenceran 10-2

. Dengan cara yang sama seperti di atas

dibuat pengenceran 10-3

2. Pipet masing-masing 1 ml dari setiap pengenceran ke dalam 3 seri tabung tabung

Durham.

3. Inkubasi pada temperatur 35oC selama 24 jam sampai dengan 48 jam.

4. Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan

positif apabila terbentuk gas.

b. Uji Konfirmasi (Peneguhan)

1. Pengujian selalu disertai dengan kontrol positif

2. Pindahkan biakan positif dari uji pendugaan dengan menggunakan jarum inokulasi dari

setiap tabung LSTB ke dalam tabung bglbb yang berisi tabung Durham.

3. Inkubasikan pada temperatur 35oC selama 48 jam

4. Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan

positif apabila terdapat terbentuk tabung gas.

5. Selanjutnya gunakan tabel Most Probable Number (MPN) untuk menentukan nilai MPN

berdasarkan jumlah tabung BGLBB yang positif sebagai julah koliform per milimeter

atau per gram.

Interpretasi Hasil

Banyaknya koliform yang terdapat dalam contoh uji diinterpretasikan dengan mencocokkan

kombinasi jumlah tabung yang memperlihatkan hasil positif, berdasarkan tabel nilai MPN .

Kombinasi yang diambil, dimulai dari pengenceran tertinggi yang masih menghasilkan

semua tabung positif, sedangkan pada pengenceran berikutnya terdapat tabung yang negatif.

Kombinasi yang diambil terdiri dari tiga pengenceran. Nilai MPN contoh dihitung sebagai

berikut :

MPN contoh (MPN/ml atau MPN/g) = nilai MPN tabel x faktor pengenceran yang di tengah

100

3. Tuliskan langkahnya uji TPC pada sampel susu metode pour plate dan spread

plate, jelaskan kelebihan dan kekurangan masing-masing metode?

a. Langkah pengujian TPC

Persiapan Pengenceran Sampel

1. 1 gram sampel sebanyak 25 gram kemudian dimasukkan dalam wadah steril

dan ditambahkan 9 ml larutan BPW 0.1% steril ke dalam kantong steril lalu

dihomogenkan dengan stomacher selama 1-2 menit (larutan 10-1

).

2. 1 ml suspensi pengenceran 10-1 dipindahkan ke dalam larutan 9 ml BPW

0.1% menggunakan pipet steril (larutan10-2

).

3. 1 ml suspensi pengenceran 10-2 dipindahkan ke dalam larutan 9 ml BPW

0.1% menggunakan pipet steril (larutan10-3

).

4. Langkah selanjutnya yaitu membuat pengenceran 10-4,10-5 dan seterusnya

dengan cara yang sama seperti pada prosedur sebelumnya sesuai kebutuhan.

Prosedur inokulasi dengan metode tuang (pour plate)

1 ml suspensi dituang ke dalam cawan petri kemudian ditambahkan 15-20

ml PCA bersuhu 45C1C, kemudian dihomogenkan dihomogenkan dengan

cara membentuk angka delapan dan diamkan sampai menjadi padat.

Prosedur inokulasi dengan metode sebar (spread plate)

Trigalski diletakkan di dalam cawan petri berisi media agar padat ,

kemudian 1 ml suspensi dituang ditengah-tengah trigalski lalu trigalski diputar

agar suspensi menyebar merata ke seluruh permukaaan agar .

b. Kelebihan dan kekurangan

Prosedur inokulasi dengan metode tuang (pour plate)

Kelebihan Kelemahan

Dapat memisahkan bakteri

sehingga terbentuk koloni tunggal

dan murni.

Dapat digunakan untuk

menentukan jenis bakteri (aerobik,

anaerob fakultatif, anaerob

obligat) berdasarkan letak

pertumbuhan bakteri (dasar,

tengah, permukaan).

Tidak memerlukan keterampilan

tinggi

Suhu media yang terlalu tinggi

dapat membunuh mikroba dalam

suspense

Sulit menemukan adanya

kontaminan

Sulit menghitung koloni karena

jarak antar koloni terlalu rapat.

membutuhkan waktu dan bahan

yang lama dan banyak

Prosedur inokulasi dengan metode sebar (spread plate)

Kelebihan Kelemahan

Dapat mengetahui bentuk koloni

alami mikroba

Bakteri terpisah secara individual

menjadi koloni tunggal

Mudah menghitung kerapatan

mikrobia

Sulit mengetahui kontaminasi

Memerlukan keterampilan tinggi

4. Tuliskan cara kerja penggunaan pH meter yang ada di lab kesmavet

Cara kerja pH meter Digital :

1. Tekan tombol ON pada alat pH meter, tunggu beberapa saat sampai pada layar

display pH meter muncul tanda CAL

2. Tusukan ujung alat pH meter pada sampel daging, baca dan catat nilai pH yang

tertera pada layar display alat pH meter.

3. Lakukan beberapa kali pengukuran untuk memperoleh hasil nilai pH yang akurat.

4. Jika melakukan pengukuran pH dengan sampel yang berbeda, maka sebelum alat

pH meter digunakan, ujung alat pH meter dibasuh terlebih dahulu dengan

menggunakan aquades, kemudian keringkan dengan tissue. Setelah itu lakukan

pengukuran terhadap sampel yang lain.

5. Apabila alat sudah dimatikan atau mati, maka proses kalibrasi harus dilakukan

kembali apabila pH meter akan digunakan kembali.

6. Apabila selesai digunakan, ujung alat pH meter dibasuh dengan aquades sampai

bersih, kemudian keringkan dengan tissue dan simpan kembali alat pH meter pada

tempatnya

5. Tuliskan prinsip kerja laktodensimeter dan cara kerja pengukuran BJ susu

Prinsip Kerja Laktodensimeter

Berat jenis susu biasanya ditentukan dengan menggunakan laktodensimeter.

Laktodensimeter adalah hidrometer yang skalanya sudah disesuaikan dengan berat

jenis susu. Prinsip kerja alat ini mengikuti hukum Archimides, yaitu jika suatu benda

dicelupkan ke dalam suatu cairan, maka benda tersebut akan mendapat tekanan ke

atas sesuai dengan berat volume cairan yang dipindahkan atau diisi.

Cara Kerja Pengukuran BJ Susu

1. Susu 250 ml diaduk dengan cara menuangkan dari gelas ukur satu ke gelas ukur

lainnya secara hati-hati tanpa menimbulkan buih supaya lemaknya merata.

2. Dimasukkan susu homogen tersebut 2/3 gelas ukur.

3. Laktodensimeter dimasukkan ke dalam gelas ukur.

4. Tunggu sampai goyangan berhenti.

5. Kemudian BJ (pada skala yang ditunjukkan oleh laktodensimeter) dan suhu

dibaca (termometer dicelupkan ke dalam susu). Angka pada laktodensimeter yang

dibaca menunjukkan angka kedua dan ketiga di belakang koma.

6. Tuliskan cara kerja kerja titrasi keasaman metode Soxhlet Henkel

Uji derajat asam menggunakan metode SH bertujuan untuk mengetahui kesegaran

sampel, dalam hal ini susu. Batasan dari derajat asam adalah angka yang

menunjukkan jumlah milliliter larutan 0,25 N NaOH yang dibutuhkan untuk

menetralkan 100 ml susu dengan menggunakan phenolphthalein 2% sebagai

indicator. Adapaun cara kerjanya sebagai berikut

1. Siapakan dua tabung Erlenmeyer yang masing masing berisi 50 ml sampel

2. Teteskan + 4 tetes larutan phenolphthalein 2% ke dalam dalam masing masing

tabung Erlenmeyer

3. Pada salah satu tabung Erlenmeyer diteteskan larutan NaOH 0,25 N hingga

mulai terbentuk warna merah muda tetap yang tidak hilang lagi bila dikocok.

Tabung erlenmeyer yang lain digunakan sebagai pembanding.

4. Kalikan jumlah NaOH yang terpakai dengan 2 (sebagai jumlah susu yang

digunakan)

5. Hasilnya adalah derajat asam

Derajat asam 0SH = jumlah NaOH 0,25 N (ml) x 100

volume susu sampel yang digunakan

7. Kegunaan media-media beserta komposisi media dan preparasi.

PCA Composition per liter:

Potatoes..................................................................................... 300.0g

Carrots......................................................................................... 25.0g

Agar ............................................................................................ 15.0g

Preparasi Medium

Kupas kulit kentang, kemudian bersihkan dan potong wortel. Ambil 300 g kentang

dan 25 g wortel masukan kedalam air yang sudah didestilasi sebanyak 1L. Kemudian

di panaskan hingga mendidih selama 20 menit. Saring dengan kertas saring, masukan

agar hingga volume 1 L dengan air yang sudah di destilasi. Aduk hingga rata

dipanaskan sampai mendidih dan dimasukan kedalam wadah. Masukan kedalam

autoclave selama 15 menit pada suhu 121 derajat celcius. Tuangkan didalam cawan

petri.

Kegunaan : penumbuhan : Cochliobolus ravenelii, Humicola fuscoatra, Humicola

grisea, Pyrenophora tritici-repentis, dan Verticillium fungicola.

Violet Red Bile Agar Composition per liter:

Agar ............................................................................................ 15.0g

Lactose ........................................................................................ 10.0g

Glucose ....................................................................................... 10.0g

Pancreatic digest of gelatin ........................................................... 7.0g

NaCl .............................................................................................. 5.0g

Yeast extract.................................................................................. 3.0g

Bile salts........................................................................................ 1.5g

Neutral Red ................................................................................. 0.03g

Crystal Violet ............................................................................. 2.0mg

pH 7.4 0.2 at 25C

Preparasi media :

Penambahan air destilasi sampai dengan ILm kemudian dicampur dan diaduk sampai

rata. Dan dipanaskan hingga mendidih. Masukan kedalam wadah. Dimasukan ke

dalam autoclave selama 15 menit pada suhu 121 derajat celcius dan tuangkan

kedalam cawan petri. Kegunaan untuk penumbuhan dan isolasi eneterobacter dari

produk sayuran.

EMB Agar (Eosin Methylene Blue Agar) Composition per liter:

Agar ............................................................................................ 13.5g

Pancreatic digest of casein.......................................................... 10.0g

Lactose.......................................................................................... 5.0g

Sucrose.......................................................................................... 5.0g

K2HPO4......................................................................................... 2.0g

Eosin Y ......................................................................................... 0.4g

Methylene Blue......................................................................... 0.065g

pH 7.2 0.2 at 25C

Preparasi Medium:

Penambahan komponesn air destilasi sampai 1 L kemudian diratakan dan di panaskan

hingga mendidih. Dituangkan pada gelas ukur 1 L dan diatoclave selama 15 menit

pada suhu 121 derajat celcius dan tuangkan pada cawan petri.

Kegunaan:

Digunakan untuk, deferensasi pada bakteri gram negative, enteric bacteri fermentasi

laktosa. Bakteri fermentasi laktosa terutama

Escherichia coli berwarna hijau metallic. Bakteri yang tidak bisa memfermentasikan

laktosa terlihat transparent atau berwarna ungu terang.

(Saboraud Dextrose Agar) (SabDex, 2%) Composition per liter:

Glucose ....................................................................................... 20.0g

Agar ............................................................................................ 15.0g

Pancreatic digest of casein............................................................ 5.0g

Peptic digest of animal tissue ....................................................... 5.0g

pH 5.6 0.2 at 25C

Preparasi Medium

Penambahan komponen air yang terdestilasi hingga 1 L, kemudian diaduk. Panaskan

hingga mendidih dan dimasukan ke dalam wadah. Dimasukan kedalam autoclave

selama 15 menit pada susu 121 derajat celcius/ Tuangkan pada cawan petri steril.

Kegunaan :

Digunakan untuk penumbuhan yeast dan jamur berfilamen. Penumbuhan jamur

pathogenic dan non pathogenic terutama demathopytes. Medium dapat digunakan

sebagai media media selektif untuk jamur dengan penambahan antibiotic

chloramphenicol. Atau Fluconazole dengan konsentrasi 8-16 ml, dan dapat digunakan

pada test antibiotic sensitivity.

Buffered Peptone WaterComposition per liter:

Pancreatic digest of gelatin......................................................... 10.0g

NaCl.............................................................................................. 5.0g

Na2HPO4....................................................................................... 3.5g

KH2PO4......................................................................................... 1.5g

pH 7.2 0.2 at 25C

Preparasi

Penambahan air yang di destilasi sampau bervolume 1,0 L kemudian dicampur dan

diaduk panaskan hingga mendidih dan di tuangkan di dalam wadah. Masukan

kedalam autoclave selama 15 menit pada suhu 121 derajat celcius masukan ke dalam

cawan petri.

Kegunaan : Untuk preenrichment media, sebagai media isolasi salmonella.

8. Tuliskan prinsip sanitasi pada saat bekerja dengan sampel di laboratorium

pangan.

Sanitasi merupakan usaha pencegahan penyakit yang menitik beratkan kegiatan pada

usaha kesehatan lingkungan hidup manusia. Sanitasi adalah upaya kesehatan dengan

cara memelihara dan melindungi kebersihan lingkungan dari subyeknya. Prinsip

sanitasi pada sampel di laboratorium adalah pengendalian terhadap bahan sampel,

peralatan, ketenagaan dan lingkungan laboratorium. Prinsip ini penting untuk

diketahui karena berperan sebagai faktor kunci keberhasilan dalam pemeriksaan

sampel.

Prinsip 1 : Bahan Sampel

1. Penyimpanan harus dilakukan dalam freezer yang bersih dan memenuhi syarat.

2. Bahan bahan harus diatur dan disusun dengan baik, sehingga mudah untuk

mengambilnya.

3. Setiap bahan sampel mempunyai kartu catatan dari mana, kapan di ambil dan

tanggal kedaluarsa.

Prinsip 2 : Peralatan

1. Tersedia tempat pencucian peralatan, jika memungkinkan terpisah dari tempat

pencucian bahan pangan.

2. Pencucian peralatan harus menggunakan bahan pembersih/deterjen.

3. Peralatan yang telah dibersihkan disimpan dalam tempat yang terlindung dari

pencemaran

Prinsip 3 : Ketenagaan

1. Berbadan sehat yang dibuktikan dengan surat keterangan dokter.

2. Tidak mengidap penyakit menular seperti tipus, kolera, TBC, hepatitis

3. Setiap karyawan harus memiliki buku pemeriksaan kesehatan yang berlaku.

4. Semua kegiatan yang berhubungandengan sampel harus dilakukan dengan cara

terlindung dari kontak langsung dengan tubuh.

5. Perlindungan kontak langsung dengan sampel dilakukan dengan menggunakan alat

6. Sarung tangan plastik sekali pakai (disposal), masker, Penjepit sampel, Tutup

rambut, Sepatu kedap air

7. Perilaku selama bekerja/mengelola bahan sampel :

Tidak merokok, tidak makan atau mengunyah, Tidak memakai perhiasan, tidak

menggunakan peralatan dan fasilitas yang bukan untuk keperluannya, selalu

mencuci tangan sebelum bekerja, selalu memakai pakaian kerja dan pakaian

pelindung dengan benar, selalu memakai pakaian kerja yang bersih, tidak banyak

berbicara dan selalu menutup mulut pada saat batuk atau bersin

Prinsip 4 : Laboratorium

1. Lantai harus bersih, dilakukan pembersihan setiap hari dengan menggunakan

desinfektan

2. Tersedia tempat sampah khusus untuk bahan bahan sampel yang tidak digunakan.

9. Tuliskan cara uji kadar lemak susu dengan metode gerber?

Pengujian lemak Metode Gerber

Prinsip Pengujian metode Gerber adalah mereaksikan cairan dengan H2SO4 dan amil

alkohol, kemudain kadar lemak dapat dibaca dari butirometer standar

Alat dan bahan :

Beaker gelas, Pipet Scala, Centrifuge, Butyrometer, Penangas Air, Sumbat karet,

H2SO4 91 % - 92 % , Amyl alkohol, air panas dengan suhu 650C

Metode pengujian :

1. Air susu diaduk hingga sempurna bercampur, dituang dalam beker gelas satu

yang lain

2. Beri tanda sampel pada Butyrometer dengan mulut diatas.

3. Kedalam masing-masing Butyrometer diisi 10 ml H2SO4 dari pipet (mulut pipet

diletakkan ke dinding Butyrometer) dan air susu 11 ml dialirkan pelanpelan.

Sedemikian pula sehingga kedua cairan tersebut tetap terpisah.

4. Isikan masing-masing 1 ml amyl alkohol dari pipet otomat kedalam butyrometer.

5. Butyrometer disumbat dengan penyumbat karet yang diputar sedalam-dalamnya.

6. Butyrometer satu persatu dibungkus dengan lap dan dikocok dengan sempurna

sehingga tidak terdapat bagian-bagian yang padat, warna menjadi keunguan.

7. Masukkan Butyrometer ke dalam penangas air selama 5 menit dengan suhu 65C

(bagian skala harus selalu diatas).

8. Aturlah sumbat sehingga seluruh lemak berada dalam skala.

9. Masukkan butyrometer ke dalam sentrifuge/pemusing (skala dipusat).

10. Pusingkan selama 3 menit dengan kecepatan 1200 rpm.

11. Penyumbat diatur sedemikian rupa sehingga lemak berada di bagian yang

berskala.

12. Masukkan ke dalam alat penangas lagi selama 5 menit pada suhu 56C.

13. Butyrometer di lap dan skala dibaca.

Rata-rata kadar lemak air susu untuk semua kondisi dan jenis sapi perah adalah : 3,9

% lemak.

10. Jelakan cara kerja dan prinsip uji awal pembusukan untuk daging, metode

manakah yang terbaik?

1. Uji eber

Prinsip : Gas 3 yang dihasilkan pada awal proses pembusukan daging akan

bereaksi dengan reagen Eber untuk membentuk senyawa 4Cl yang tampak seperti

awan putih.

Alat dan Bahan

Sampel daging,Reagen eber (1 bagian HCl+3 bagian alkohol 96%+1 bagian eter),

Tabung reaksi, Sumbat karet yang dilengkapi lidi, Gunting dan pinset

Cara kerja

1. Masukkan 3-5 ml reagen eber kedalam tabung reaksi

2. Daging dipotong kira-kira sebesar biji kedelai, tusukkan pada ujung lidi dan ujung

lainnya tusukkan pada penyumbat karet

3. Masukkan kedalam tabung reaksi tersebut di atas dengan hati-hati jangan sampai

menyentuh dinding tabung, dan gabusnya disumbatkan pada tabung reaksi

4. Secepatnya perhatikan terbentuknya warna asap putih di atas reagent eber yang

bergerak ke atas

5. Amati hasil reaksi : Reaksi positif jika terbentuk awan putih disekitar

daging

Reaksi negatif tidak terbentuk awan

2. Uji Postma

Prinsip : Gas 3 yang dihasilkan pada awal proses pembusukan daging biasanya

masih terikat pada beberapa bahan kimia dari dengan prosees pemanasan dan

penambahan MgO maka akan membebaskan 3dari ikatan tersebut. Gas yang

bersifat basa ini kemudian akan ditangkap oleh kertas lakmus dan mengubahnya

menjadi warna biru.

Alat dan bahan : sampel daging, MgO, akuades, kertas saring, ketas lakmus merah,

pinset, gunting, Erlenmeyer, corong, cawan petri, pipet, pengas air

Cara kerja:

1. Buat ekstrak daging : 1 bagian daging dicampur dengan 10 bagian akuades lalu

dihomogenkan. Kemudian saring dan ambil filtrasinya

2. 100 mg MgO dimasukan ke dalam cawan petri. Kemudian tambahkan 10 ml

filtrate ke dalamnya. Pada permukaan tutup bagian dalam cawan petri dengan

isinya dihomogenkan.

3. Letakkan cawan petri pada waterbath pada suhu 50 C selama 5 menit lalu angkat

4. Amati reaksi perubahan warna kertas lakmus :

Reaksi positif kertas lakmus warna biru

Reaksi negatif kertas lakmus warna merah

Reaksi dubius kertas lakmus warna merah-biru

3. Uji

Prinsip : Gas 2 yang dihasilkan pada awal pembusukan akan bereaksi dengan Pb-

asesat dan akan menghasilkan PbS yang berwarna hitam kecoklatan

Alat dan Bahan : Sampel daging, 2, Pb- asesat, Cawan petri, Kertas saring,

Gunting dan pinset,

Cara kerja

1. Potong daging yang akan diperiksa sebesar biji kacang tanah dan letakkan dalam

cawan petri

2. Tutup dengan kertas saring dan tetesi larutan Pb-Asetat di atas kertas saring pada

tempat dimana daging diletakkan

3. Tutup cawan petri dan biarkan sedikit terbuka

4. Tunggu kira-kira 3-5 menit dan perhatikan terbentuknya warna coklat pada kertas

saring bekas tetesan Pb-Asetat.

5. Terbentuknya warna coklat menandakan adanya 2S dari hasil pembusukan

daging

6. Amati reaksi yang terjadi :

Reaksi positif warna hitam kecoklatan disekitar tetesan Pb asesat (ada 2 )

Reaksi negatif tidak terdapat warna hitam kecoklatan ( tidak ada 2 )

Metode terbaik untuk uji awal pembusukan

Metode terbaik dalam uji awal pembusukan daging adalah uji eber karena uji ini lebih

mudah dan pembacaan interpretasi lebih mudah di bandingkan uji awal pembusukan

yang lain. Reaksi yang terjadi pada uji eber ini ketika daging segar belum tedapat

banyak bakteri pembusuk sebagai indikator terjadinya pembusukan tingkat awal.

NH3 itu bisa terbentuk karena aktifitas bakteri yang menguraikan protein menjadi

polipeptida dan asam-asam amimo melalui proses hidrolisis dengan bantuan

eksoenzim, selanjutnya pepton, polipeptida dan asam-asam amino dipecah kembali

melalui proses deaminase protein yang menyebabkan terbentuknya amoiak (NH3).