tata tertib praktikum 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen,...

25
Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih Semester Genap 2019/2020 TATA TERTIB PRAKTIKUM 1. Mahasiswa hadir tepat waktu di lokasi praktikum sesuai dengan jadwal yang telah ditentukan. Keterlambatan 15 menit tidak diijinkan mengikuti praktikum. 2. Menggunakan jas lab pada saat praktikum 3 Mahasiswa dapat mengikuti praktikum susulan dengan mengurus surat ijin mengikuti praktikum yang diterbitkan oleh Fakultas/departemen dan lapor diri ke koordinator praktikum. Koordinator praktikum akan memberikan surat pengantar praktikum susulan tersebut ke pembimbing praktikum pada hari yang telah ditentukan 4 Membersihkan tempat kerja, dan mengembalikan peralatan yang digunakan kepada pembimbing setelah praktikum selesai. Kerusakan alat yang disebabkan oleh kecerobohan praktikan, maka praktikan harus mengganti alat tersebut 5 Mengumpulkan rencana kerja sesuai dengan topik yang akan dilakukan dan laporan tepat waktu sesuai dengan waktu yang telah ditentukan 6 Mengikuti praktikum dengan disiplin dan tertib

Upload: others

Post on 17-Feb-2020

8 views

Category:

Documents


0 download

TRANSCRIPT

Page 1: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

TATA TERTIB PRAKTIKUM

1. Mahasiswa hadir tepat waktu di lokasi praktikum sesuai dengan jadwal yang telah

ditentukan. Keterlambatan 15 menit tidak diijinkan mengikuti praktikum.

2. Menggunakan jas lab pada saat praktikum

3 Mahasiswa dapat mengikuti praktikum susulan dengan mengurus surat ijin

mengikuti praktikum yang diterbitkan oleh Fakultas/departemen dan lapor diri ke

koordinator praktikum. Koordinator praktikum akan memberikan surat pengantar

praktikum susulan tersebut ke pembimbing praktikum pada hari yang telah

ditentukan

4 Membersihkan tempat kerja, dan mengembalikan peralatan yang digunakan

kepada pembimbing setelah praktikum selesai. Kerusakan alat yang disebabkan

oleh kecerobohan praktikan, maka praktikan harus mengganti alat tersebut

5 Mengumpulkan rencana kerja sesuai dengan topik yang akan dilakukan dan

laporan tepat waktu sesuai dengan waktu yang telah ditentukan

6 Mengikuti praktikum dengan disiplin dan tertib

Page 2: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN I

STRUKTUR BENIH

Pendahuluan

Latar Belakang :

Benih terdiri atas tiga komponen, yaitu kulit benih, embrio dan cadangan makanan.

Kulit benih,yang merupakan lapisan terluar benih, dapat terdiri atas testa atau testa dan

lapisan lain. Testa adalah lapisan yang berasal dari integumen, misalnya pada benih

kedelai, kacang tanah dll.Pada kariopsis (misalnya padi dan jagung) testa bersatu dengan

perikarp.Kulit benih sangat bervariasi dalam warna, tekstur serta ada atau tidaknya struktur

tambahan seperti sayap, karunkula dll.

Embrio adalah struktur yang terbentuk dari fertilisasi (bersatunya antara sel telur

dan sperma).Struktur utama embrio (poros embrio) terdiri atas radikula (bakal akar),

plumula (bakal daun) dan hipokotil (bakal batang).Pada benih dikotil, umumnya embrio

mempunyai kotiledon.

Cadangan makanan dalam benih sangat penting untuk proses perkecambahan. Pada

monokotil (misalnya familia Gramineae)cadangan makanan dalam benih berupa

endosperma yang terbentuk dari bersatunya sperma dan inti polar, disebut sebagai benih

endospermik.Pada benih demikian endosperma merupakan bagian terbesar dari struktur

benih.Pada dikotil (misalnya familia Leguminosae dan Cucurbitaceae)umumnya benih

tidak mengandung endosperma (benih non-endospermik), dan cadangan makanan untuk

perkecambahannyaadalah kotiledon, yang merupakan bagian dari embrio, dan kotiledon

merupakan bagian terbesar dari struktur benih.Akan tetapi ada juga dikotil yang

mempunyai endosperma (misalnya familia Euphorbiaceae).Pada benih demikian

endosperma yang merupakan bagian terbesar struktur benih berfungsi sebagai cadangan

makanan untuk perkecambahan, bukan kotiledon yang merupakan jaringan tipis.

Tujuan :

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari variasi struktur benih tanaman beberapa

familia.

Page 3: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Bahan dan Metode :

Benih dari beberapa familia tanaman: Gramineae (jagung, padi), Leguminosae (kacang

tanah, kedele, kacang merah, lamtoro), Solanaceae (tomat, cabe, terong), Eophorbiacea

(jarak kepyar, jarak pagar, karet) dan lainnya yang tersedia.

1. Benih yang kering dilembabkan dahulu selama 24 jam supaya lunak,

mempermudah diiris atau dikupas

2. Iris benih dengan arah vertikal sehingga seluruh bagian internal dapat diamati

3. Amati warna, tekstur kulit benih serta adanya struktur tambahan

4. Gambar benih utuk dan struktur internalnya, beri keterangan masing masing

bagian benih

Page 4: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN II

Penetapan Kadar Air Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Kadar air benih merupakan salah satu faktor penting yang harus diperhatikan pada

kegiatan pemanenan, pengolahan, penyimpanan dan pemasaran benih. Kadar air benih

sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan,

kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya selama penyimpanan sehingga

pengukuran kadar air benih harus dilakukan. Pengujian kadar air benih termasuk pengujian

rutin, dimana data kadar air benih harus tertera pada label sertifikasi.

Menurut ISTA (2014) pengukuran kadar air yang dapat dilakukan menggunakan

suhu 105 oC atau 130 oC. Pada prinsipnya kadar air benih dihitung berdasarkan

berkurangnya berat benih akibat hilangnya air dari dalam benih. Metode uji dirancang

sehingga memungkinkan penguapan air dari benih sebanyak mungkin namun menekan

terjadinya oksidasi, dekomposisi maupun hilangnya zat-zat yg mudah menguap

Tujuan

Percobaan ini bertujuan untuk mengetahui kadar air benih padi menggunakan

metoda langsung dengan oven suhu tinggi (1300C)

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Bahan yang diperlukan adalah benih padi. Alat yang digunakan adalah oven,

timbangan, cawan porselen, grinder, desikator.

Metode

1. Ambil benih padi kurang lebih 5 g, kemudian dihancurkan dengan menggunakan

grinder selama 1 menit.

2. Timbang cawan dan tutup (M1), kemudian masukkan benih yang sudah

dihancurkan ke dalam cawan dan timbang kembali (M2).

3. Masukan cawan tersebut kedalam oven dengan suhu 1300C, selama 2 jam dengan

kondisi cawan terbuka.

4. Setelah periode waktu yang ditentukan cawan kemudian dikeluarkan dari oven,

kemudian dimasukkan kedalam desikator selama 20 menit hingga dingin.

5. Timbang benih, cawan dan tutup yang telah di oven (M3).

6. Hitunglah kadar air benih dengan menggunakan rumus sebagai berikut :

Page 5: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

(M2 – M3)

KA= -------------- X 100%

(M2-M1)

Keterangan :

KA = Kadar air benih

M1 = Berat cawan + tutup kosong

M2 = Berat cawan + tutup + benih sebelum dipanaskan

M3 = Berat cawan + tutup + benih setelah dipanaskan

7. Lakukan pengukuran kadar air sebanyak 3 ulangan.

Tabel. Penentuan kadar air benih

ulangan Data penimbangan

M1 M2 M3 % Kadar air

1

2

3

4

5

Page 6: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN III

Analisis Kemurnian Benih

Latar belakang

Kemurnian benih sangat penting dalam menentukan mutu benih. Komponen benih

murni diperlukan dalam pengujian daya berkecambah, yang menunjukkan bahwa analisis

kemurnian dan daya berkecambah berkaitan satu sama lain dalam menentukan mutu benih.

Kemurnian suatu lot benih dapat dilihat dari kemurniannya secara genetik dan secara fisik.

Kemurniannya secara genetik mencerminkan kebenaran varietas sebagaimana yang

dinyatakan dalam identitasnya (true to type), sedangkan kemurnian fisik mencerminkan

komposisi lot benih. Kemurnian genetik harus dipertahankan sejak di lapang produksi

dengan jalan menghilangkan sumber-sumber kontaminasi di lapang dan selama

penanganan benih agar tidak terjadi pencampuran dengan varietas lain. Kemurnian fisik

harus dijaga selama penanganan benih dengan membersihkannya dari kotoran benih dan

benih tanaman lain.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk menentukan kemurnian benih padi berdasarkan komposisi

lot benih tersebut

Metode

1. Contoh kerja analisis kemurnian diambil dari contoh kirim untuk benih padi

sebanyak 700 g. Pengambilan contoh kerja analisis kemurnian untuk benih padi

minimum 70 g dilakukan dengan menggunakan alat pembagi mekanik dilakukan

dengan cara pengurangan contoh kirim sebagai berikut

700 g Contoh kerja analisis kemurnian padi: a + b + d = 71,2 g

350 g 350 g

175 g 175 g

87,5 g 87,5 g

(a) 43.8 g 43,8 g

(b) 21,9 g 21,9 g

(c) 10,9 g 10,9 g

(d) 5,5 g 5,5 g

Page 7: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

2. Analisis kemurnian dilakukan dengan memisahkan contoh kerja dalam komponen

benih murni, benih tanaman lain dan kotoran benih dengan cara sbb.:

a. Contoh kerja ditebarkan di meja kerja

b. Setiap benih diidentifikasi satu per satu secara visual berdasarkan

penampakan morfologi (bentuk, ukuran, warna, kilap, tekstur luar).

c. Semua benih tanaman lain dan kotoran benih dipisahkan dari benih murni.

d. Setiap komponen ditimbang dalam satuan gram dengan tingkat ketelitian

sama dengan contoh kerja.

Perhitungan

1. Berat ketiga komponen (benih murni, benih tanaman lain dan kotoran benih)

dijumlahkan dan kemudian dibandingkan dengan berat contoh kerja awal. Jika

terdapat kehilangan berat >5% berat awal contoh kerja maka harus dilakukan

analisis ulang.

2. Masing-masing komponen dihitung persentasenya dalam satu decimal.

3. Persentase ketiga komponen dijumlah, dengan total harus 100,0%. Jika jumlah

persentase tidak 100,0% (99,9% atau 100,1%) maka dilakukan penambahan atau

pengurang 0,1% pada persentase tertinggi (biasanya pada fraksi benih murni).

Apabila lebih dari 0,1% maka perlu dilakukan pemeriksaan terhadap kesalahan.

4. Rumus perhitungan persentase:

BM BM = ---------------------- x 100% BM: benih murni (BM + BTL + KB)

BTL BTL = ---------------------- x 100% BTL: benih tanaman lain (BM + BTL + KB)

KB KB = ---------------------- x 100% KB: kotoran benih (BM + BTL + KB)

Faktor kehilangan yang diperbolehkan maksimal 5%, dihitung dengan rumus:

CK – (BM + BTL + KB) ------------------------------ x 100% ≤ 5% CK: contoh kerja CK

Semua penimbangan dinyatakan dalam satuan gram

Page 8: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Definisi/Batasan:

1. Benih murni adalah benih murni yang sesuai dengan pernyataan pengirim atau

secara dominan ditemukan dalam contoh benih termasuk semua benih varietas

tanaman dan kultivar dari spesies tersebut, seperti:

a. Benih utuh, benih muda, benih berukuran kecil, benih mengkerut, dan benih

sedikit rusak.

b. Benih terserang penyakit atau benih yang mulai berkecambah, tetapi benih

tersebut masih bisa dikenali sebagai benih yang dimaksud. Jika sudah berubah

karena adanya sclerotia, smut balls atau galls maka termasuk sebagai kotoran

benih.

c. Pecahan benih dengan ukuran lebih besar dari setengah ukuran benih aslinya.

Untuk caryopsis (Poaceae/Graminae: jagung, padi): bagian dari caryopsis yang

berukuran lebih besar dari setengah ukuran aslinya. Untuk Fabaceae

(Leguminosae) yang terkelupas seluruh benihnya termasuk kriteria kotoran

benih. Pada Leguminosae jika kotiledon terpisah termasuk kotoran benih.

2. Benih tanaman lain adalah benih tanaman selain yang dimaksud oleh pengirim.

Penentuan benih tanaman lain sebagai kotoran benih sama seperti penentuan benih

murni.

3. Kotoran benih meliputi benih yang tidak termasuk dalam kategori benih murni

dan bagian dari benih serta bahan-bahan lain yang bukan bagian dari benih, sebagai

berikut:

a. Benih dan bagian benih:

Benih Fabaceae (Leguminosae) dengan kulit benih yang sudah

terkelupas semua (tanpa kulit benih).

Pecahan benih dengan ukuran setengah atau kurang dari setengah

ukuran aslinya.

Benih rusak tanpa lembaga/kotiledon (rusak berat).

Gabah hampa.

Sekam, cangkang benih, kulit benih dan lain-lain.

b. Bahan lain yang bukan merupakan bagian dari benih seperti tanah, pasir, batu,

batang jerami, daun, tangkai bunga, galls, sklerotia, smut balls, lemma, palea

dan jamur.

Catatan:

Sklerotium (plural: sklerotia) adalah gumpalan miselium yang memadat dan umumnya dorman.

Smut balls adalah bulatan/tonjolan putih dan halus yang berisi spora fungi, umumnya terdapat pada bagian meristematik (tassel/bunga jantan, tongkol/bunga betina). Bila cuaca panas dan kering bulatan dapat pecah dan mengeluarkan spora berwarna hitam yang dapat menginfeksi tanaman lain.

Galls adalah pertumbuhan jaringan yang abnormal, dapat disebabkan oleh berbagai parasit misalnya fungi,

bakteri, serangga, nematoda dll. Galls merupakan struktur yang spesifik sehingga penyebabnya dapat

diidentifikasi tanpa harus melihat penyebabnya secara langsung.

Page 9: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN IV

Metode Pematahan Dormansi Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Dormasi benih merupakan suatu kondisi dimana benih tidak berkecambah

walaupun ditanam dalam kondisi yang optimum.Salah satu keuntungan sifat dormansi

pada benih yaitu untuk melestarikan spesies tersebut. Namun dormansi dapat menjadi

masalah karena saat konsumen benih akan menanam benih yang masih dorman tidak

tumbuh dengan seragam, selain itu juga mengacaukan interpretasi dalam pengujian benih.

Beberapa jenis benih tidak dapat berkecambah karena adanya hambatan dari kulit

benih yang impermeabel terhadap air dan gas, kulit benih yang tebal dan keras. Sebagian

jenis benih yang lain tidak mampu berkecambah ketika baru dipanen dan baru dapat

berkecambah setelah melampaui periode penyimpanan kering. Kasus tersebut disebut

after-fipening.

Beberapa metode pematahan dormansi telah dikembangkan berdasarkan kasus

penyebab dormansi benihnya, karena metode yang efektif untuk suatu kasus belum tentu

efektif untuk kasus dormansi lainnya.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari teknik pematahan dormansi yang tepat pada

kasus dormansi fisiologi (salah satunya after-ripening) dan dormansi fisik.

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Bahan yang diperlukan adalah benih padi yang baru dipanen, benih saga pohon, 0.2 %

KNO3, aquades, kertas merang, plastik, label dan pasir.

Alat yang digunakan adalah glassjar, box perkecambahan benih serta alat pengecambah

benih tipe IPB 73-2A/B dan gunting kuku

Metode

Teknik pematahan dormansi benih padi yaitu : kontrol (P0); perendaman KNO3 0.2 %

selama 24 jam (P1); perendaman dengan air selama 24 jam (P2).

Page 10: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

1. Teknik pematahan dormansi benih padi

Masing-masing 4x100 butir benih dimasukkan ke dalam glassjar yang berisi larutan

0.2 % KNO3 dan aquades, biarkan selama 24 jam.

Tiriskan dan tanam pada substrat kertas merang dengan metode UKDdp, demikian

juga untuk perlakuan kontrol (tanpa perlakuan).

Amati kecambah normal, abnormal dan mati

2. Teknik pematahan dormansi benih saga. Untuk benih saga : kontrol (P0); perendaman

KNO3 0.2 % selama 24 jam (P1) dan Skarifikasi fisik dengan menggunting pada sisi

yang berlawanan dengan poros embrio

Tabel 1. Pengamatan daya berkecambah benih saga pohon

Ulangan Perlakuan

Kontrol Skarifikasi KNO3 0.2 %

1

2

3

4

Tabel 2. Pengamatan potensi tumbuh maksimum benih saga pohon

Ulangan Perlakuan

Kontrol Skarifikasi KNO3 0.2 %

1

2

3

4

Page 11: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Tabel 3. Pengamatan persentase kecambah normal benih padi

Periode

simpan

(minggu)

Ulangan Perlakuan

Kontrol KNO3 Air

0 1

2

3

1 1

2

3

2 1

2

3

3 1

2

3

4 1

2

3

5 1

2

3

6 1

2

3

7 1

2

3

8 1

2

3

9 1

2

3

Catatan : Laporan praktikum lengkap (Pendahuluan, Bahan dan Metoda secara rinci,

Hasil pembahasan dan kesimpulan) oleh setiap grup.

Catatan : Laporan praktikum lengkap disusun oleh setiap grup.Laporan meliputi

Pendahuluan, Bahan dan Metoda secara rinci, Hasil pembahasan dan kesimpulan

Page 12: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN V

Pengujian Daya Berkecambah Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Viabilitas benih dapat diketahui dengan melakukan pengujian benih.Berbagai macam

metode pengujian benih dibuat untuk mendeteksi parameter viabilitas benih.Pengujian

daya berkecambah benih digunakan untuk mendeteksi parameter viabilitas potensial

benih.Daya berkecambah atau daya tumbuh benih adalah tolok ukur bagi kemampuan

benih untuk tumbuh normal dan berproduksi normal pada kondisi lingkungan yang

optimum.

Sesuai dengan tujuan pengujian yaitu untuk mendeteksi viabilitas benih dalam kondisi

optimum, kondisi pengujian daya berkecambah benih dibuat serba optimum dan standar.

Media untuk menumbuhkan benih digunakan : kertas merang dan pasir, kertas saring atau

kertas koran bila benih dikecambahkan dalam alat pengecambah benih. Media pasir, serbuk

gergaji atau arang sekam digunakan bila benih ditumbuhkan diruang persemaian (lath

house). Ukuran media kertas atau boks plastik yang digunakan harus standar untuk

menanam sejumlah benih tertentu , pelembaban media harus optimum karena media terlalu

kering atau terlalu basah akan menyebabkan kondisi menjadi tidak optimum.

Metode penanaman benih dalam uji daya berkecambah yang menggunakan media kertas:

benih ditanam diatas media kertas (UDK), diantara media kertas (UAK), diantara media

kertas kemudian digulung (UKD) , bila dilapisi plastik dibagian luarnya adalah UKDdp.

Ciri lain dan khas dari pengujian daya berkecambah benih adalah pengamatan terhadap

benih yang tumbuh normal dilakukan dua kali. Pengamatan pertama biasa disebut hitungan

pertama, dilakukan pada hari ketiga setelah tanam untuk benih jagung, kedelai; kacang

tanah; benih padi pada hari kelima dan untuk benih cabe, tomat dan terong pada 7 hari

setelah benih ditanam.Pengamatan pertama ditujukan untuk optimalisasi media, benih

yang telah tumbuh menjadi kecambah normal dihitung, dicatat jumlahnya, setelah itu

dikeluarkan dari media.Benih yang busuk, bercendawan juga disingkirkan.Bila media

kering ditambah kelembabannya.Benih yang belum berkecambah atau kecambah belum

tumbuh normal dibiarkan dalam media tanam hingga akhir pengujian.

Pengamatan kedua atau hitungan kedua semua kecambah normal, kecambah abnormal,

benih mati dan benih segar tidak tumbuh diamati. Penentuan daya berkecambah benih

adalah jumlah kecambah normal hitungan satu dan dua dibagi jumlah benih yang diuji

dikali 100%.

Kriteria kecambah normal yang digunakan bagi bermacam jenis tanaman juga harus

standar. Untuk tanaman dikotil bagian kecambah yang harus diperhatikan ialah : perakaran

yang terdiri akar primer dan sekunder, hipokotil yaitu calon batang yang terletak di bawah

Page 13: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

kotiledon, kedua kotiledon, epikotil dan plumula. Untuk kecambah monokotil bagian yang

diperhatikan : akar seminal primer dan sekunder, mesokotil, koleoptil, dan plumula.

Tujuan

Setelah mengikuti praktikum Pengujian Daya Berkecambah Benih mahasiswa dapat

melakukan beberapa metode uji daya berkecambah benih serta dapat mendeteksi viabilitas

potensial suatu lot benih dengan tolok ukur daya berkecambah benih

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Benih yang digunakan : jagung, caisin, bawang, Cabe, kangkung dan timun

Media yang digunakan : kertas merang segi empat panjang berukuran 20X30 cm, kertas

merang bentuk bulat diameter 10 cm, media pasir

Alat yang digunakan : alat pengecambah benih tipe : IPB 72-1; IPB 73-2A/B, IPB 73-2A.

Alat pengepres kertas merang IPB 75-1.

Metode Pengujian daya berkecambah benih dengan metode UDK (Uji Diatas Kertas)

Cawan petri diameter 10 cm dilapisi tiga lembar media kertas merang bentuk bulat

Diatas kertas merang ditetesi air hingga merata. Cawan dimiringkan sehingga air yang

berlebih terkumpul di bagian bawah. Air berlebih dibuang.

Benih yang ditanam dengan metode UDK ialah benih yang berukuran kecil : caisin,

bawang, cabe.

Jumlah benih yang ditanam satu cawan petri 25 butir.

Cawan petri ditutup, diletakkan dalam alat pengecambah benih tipe IPB 73-2A.

Setelah benih mulai berkecambah, tutup cawan dibuka.

Pengamatan terhadap jumlah kecambah nornal dilakukan pada :

Pengujian daya berkecambah benih dengan metode UKDdp (Uji Kertas Digulung dalam

Plastik) :

Kertas merang segi empat panjang berukuran 20X30 cm direndan dalam air.

Setelah lembab diangkat dan diriskan airnya menggunakan alat pengepres kertas

merang IPB 75-1

Benih ditanam diatas 3 media kertas merang yang dibawahnya dilapisi plastik,

untuk media ukuran 20X30 ditanam 25 butir benih ukuran sedang-besar (jagung,

timun dan kangkung). Setelah benih ditanam, ditutup dengan 3 lembar media

lembab, kemudian digulung.

Gulungan kertas merang diletakan dalam alat pengecambah benih tipe IPB 72-1.

Pengamatan dilakukan pada hari ke 3 dan ke 5 setelah tanam

Page 14: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Pengujian UKDdp untuk padi digunakan media kertas merang ukuran 20X30 cm

dilipat jadi dua sejajar panjangnya. Diatas media ditanam 25 butir benih padi, media

setengahnya ditutupkan, kemudian media digulung. Alat pengecambah benih yang

digunakan Tipe IPB 73-2A/B.

Tabel 4. Pengamatan Daya Berkecambah Benih

Komoditi Ulangan ∑ Kecambah

Normal

∑ Kecambah

Abnormal

∑ Benih

Mati

% Daya

Berkecambah

Timun 1

2

3

Jagung 1

2

3

Kangkung 1

2

3

Caisin 1

2

3

Bawang 1

2

3

Cabe 1

2

3

Page 15: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN VI

Uji Vigor Benih dengan NaCl

Pendahuluan

Latar Belakang

Vigor benih adalah kemampuan tumbuh benih menjadi tanaman berproduksi normal

dalam kondisi subobtimum. Beberapa kondisi suboptimum di lapang misalnya ; kondisi

kekeringan, tanah salin, tanah asam, tanah berpenyakit, dsb. Benih yang mampu mengatasi

kondisi tersebut termasuk lot benih bervigor tinggi.

Pengujian ketahanan benih terhadap kekeringan dapat dilakukan secara simulasi di

Laboratorium menggunakan larutan NaCl. Pada konsentrasi tinggi larutan ini tidak hanya

memberikan cekaman akibat tekanan osmotiknya sehingga benih mengalami hambatan

dalam proses imbibisi, tetapi juga memberikan cekaman terhadap kondisi salin. Pada

kondisi tersebut hanya benih vigor yang mampu tumbuh dengan baik.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari uji vigor kekuatan tumbuh benih terhadap

kekeringan (VKTkekeringan).

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Bahan yang diperlukan adalah dua lot benih kedelai yang berbeda vigornya, kertas merang,

plastik, label, larutan NaCl 1% dan aquades.Alat yang dibutuhkan adalah alat

pengecambah benih IPB 72-1, gelas ukur, beaker glass, pengaduk gelas, timbangan serta

alat penunjang yang lain.

Metode

Prosedur pelaksanaan

1. Tanam masing-masing lot benih kacang panjang sebanyak 25 butir pada substrat

kertas merang yang sudah dilembabkan dengan larutan NaCl 1%. Untuk kontrol

substrat perkecambahan dilembabkan dengan aquades. Lakukan sebanyak 4

ulangan untuk masing-masing perlakuan pada kedua lot benih.

2. Simpan pada alat pengecambah benih IPB 72-1.

3. Pengamatan dilakukan pada hari ke-5 setelah tanam terhadap kecambah normal,

abnormal dan mati (isikan pada Tabel ). Bandingkan bagaimana pertumbuhan

kecambah pada kedua substrat (kontrol dan perlakuan NaCl) pada kedua lot benih.

4. Bahas dan buat kesimpulannya.

Page 16: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Tabel 5. Hasil pengamatan uji vigor

Lot Perlakuan Ulangan Kecambah

Normal

Kecambah

abnormal

mati

Tinggi Kontrol 1

2

3

4

Rata-rata

NaCl 1

2

3

4

Rata-rata

Rendah Kontrol 1

2

3

4

Rata-rata

NaCl 1

2

3

4

Rata-rata

Catatan.: Laporan oleh masing-masing mahasiswa

Page 17: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN VII

Efisiensi Alat Pembersih dan Pemilah Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Pembersihan benih sangat penting karena benih yang kotor tidak baik bila disimpan

lama, secara tidak langsung akan mempengaruhi viabilitas benih karena tersumbatnya

ruang antara benih yang akan menimbulkan panas dan kelembaban tinggi sehingga menjadi

tempat bersarangnya cendawan maupun hama.

Proses pembersihan benih bertujuan untuk menghilangkan kotoran-kotoran fisik

maupun biji-bijian lain yang mencampuri suatu kelompok benih. Kotoran fisik antara lain

yaitu pecahan-pecahan biji, benih-benih yang berukuran kurang sempurna (keriput,

inferior, membatu akibat kurang masak atau terserang penyakit), pecahan-pecahan batu

maupun ranting-ranting yang terbawa pada waktu proses pemanenan.

Dalam proses pembersihan dapat terjadi kerusakan fisik atau kurang sempurna

proses pembersihannya sehingga diperoleh hasil yang tidak bersih 100%. Prinsip kerja dari

alat pembersih ini adalah, memisahkan benih berdasarkan perbedaan ukuran/bentuk dan

berat benih .

Tujuan

Percobaan ini bertujuan untuk mempelajari efisiensi alat pembersih benih model clipper.

Bahan dan Metode

Benih yang di gunakan sebanyak tiga macam yang berbeda untuk masing-masing

ditimbang 100 g.campur dengan kotoran fisik yang berupa daun kering sebanyak 10 g,

biji lain sebanyak 20 g dan kotoran batu kerikil sebanyak 20 g aduk menggunakan alat

pengaduk IPB 72-3 benih di bersihkan dengan alat clipper.

Pisahkan dengan alat tersebut sehingga kembali menjadi komponen masing-masing

seperti sebelum di campur dan gambar alat tersebut secara skematis.

Laporan Percobaan

Clipper ; pintu pemisah komponen ada…………………..buah.

Masing-masing untuk memisahkan sebagai berikut =

Pintu 1 =

Pintu 2 =

Pintu 3 =

Pintu 4 =

Page 18: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Pintu 5 =

Pintu 6 =

Terdapat 3 set campuran benih yang masing-masing terdiri dari

Set 1 = a)….…;b)…….;c)……..;d)…………

Set 2 = a)….…;b)…….;c)……..;d)…………

Set 3 = a)….…;b)…….;c)……..;d)…………

Dengan screen ukuran……(atas) dan ukuran…….(bawah) maka =

Set no. 1 akan mampu dipisahkan di masing-masing pintu berikut =

Pintu 1 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 2 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 3 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 4 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 5 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 6 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Kotoran fisik jatuh masing-masing =

Daun kering di pintu…….,……..,……,……

Batu kerikil di pintu……..,………,…….,……

Dengan screen ukuran…….(atas) dan ukuran…….(bawah) maka =

Set no. 2 akan mampu dipisahkan di masing-masing pintu berikut =

Pintu 1 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 2 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 3 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 4 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 5 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 6 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Kotoran fisik jatuh masing-masing =

Daun kering di pintu…….,……..,……,……

Batu kerikil di pintu……..,………,…….,……

Dengan screen ukuran…….(atas) dan ukuran…….(bawah) maka =

Set no. 3 akan mampu dipisahkan di masing-masing pintu berikut =

Pintu 1 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 2 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 3 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 4 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 5 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 6 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Kotoran fisik jatuh masing-masing =

Daun kering di pintu…….,……..,……,……

Batu kerikil di pintu……..,………,…….,……

Catatan.: Laporan dibuat oleh masing-masing mahasiswa

Page 19: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN VIII

Pengaruh Bentuk Benih terhadap Efisiensi Pemilahan

dengan Spiral Separator

Pendahuluan

Latar Belakang

Pemilahan benih dilakukan untuk mendapatkan mutu fisik benih yang seragam

bentuk maupun ukurannya. Proses pembersihan dan pemilahan dapat dilakukan sekaligus

dengan mesin tertentu. Namun beberapa mesin hanya dapat digunakan untuk pemilahan

saja.

Spiral separator merupakan alat pemilah benih yang prinsip kerjanya berdasarkan

kemampuan menggelinding benih pada alat tersebut. Perbedaan bentuk benih akan

mempengaruhi kecepatan menggelinding, sehingga benih-benih tersebut dapat dipilah.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari pengaruh bentuk benih terhadap

efisiensi pemilahan

Bahan dan Metode

Buat campuran benih dengan komposisi sbb:

1. Komposisi 1: 300 g kedelai dan 10 g biji kedelai yang terbelah

2. Komposisi 2 : 300 g kedelai dan 10 g kacang hijau

Buat campuran dengan komposisi tersebut untuk tiga ulangan.Selanjutnya masukkan

campuran benih tersebut ke dalam alat spiral separator. Amati efisiensi pemilahan dan

berikan pembahasannya.

Tabel 6. Hasil Pengamatan

Campuran benih ulangan Benih yang tidak terpisah Efisiensi pemilahan

Kedelai + biji

terbelah

Rata-rata

1

2

3

Kedelai +

kc.hijau

Rata-rata

1

2

3

Catatan.: Laporan dibuat oleh masing-masing mahasiswa

Page 20: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN IX

Uji Cepat Viabilitas Benih dengan Tetrazolium

Pendahuluan

Latar Belakang

Uji tetrazolium juga disebut uji biokhemis benih atau uji cepat viabilitas. Disebut uji

biokhemis karena uji tetrazolium mendeteksi adanya proses biokimia yang berlangsung di

dalam sel-sel benih khususnya sel-sel embrio. Disebut uji cepat viabilitas karena indiksi

yang diperoleh dari pengujian tetrazolium bukan berupa perwujudan kecambah, melainkan

pola-pola pewarnaan pada embrio, sehingga waktu yang diperlukan untuk pengujian

tetrazolium tidak sepanjang waktu yang diperlukan untuk pengujian yang indikasinya

berupa kecambah.

Pengujian tetrazolium menggunakan senyawa indikator 2.3.5 Trifenil tetrazolium klorida

yang larut dalam air untuk mengindikasi adanya sel-sel yang hidup. Bila indikator

diimbibisi oleh benih kedalam sel-sel benih yang hidup dengan bantuan enzim

dehidrogenase akan terjadi proses reduksi sehingga terbentuk endapan formazan yang

berwarna merah. Pada sel-sel yang mati tidak terjadi reduksi, sehingga warnanya

tetap.Adanya pola-pola warna merah pada bagian-bagian penting pada embrio benih

mengindikasikan benih mampu menumbuhkan embrio menjadi kecambah yang normal.

Kegunaan uji tetrazolium cukup banyak : untuk mengetahui viabilitas benih yang segera

akan ditanam, untuk mengetahui viabilitas benih dorman, untuk mengetahui hidup atau

matinya benih segar tidak tumbuh dalam pengujian daya berkecambah benih. Uji

tetrazolium sebagai uji vigor bila dilakukan, dengan cara membuat penilaian benih lebih

dapat dikembangkan ketat untuk katagori benih vigor diantar benih viabel.

Faktor-faktor yang perlu diperhatikan dalam uji tetrazolium ialah : penyiapan benih yang

akan diuji dengan menghitung jumlahnya, pelembaban benih untuk aktivasi enzim dan

pelunakan jeringan benih, pembukaan jaringan benih untuk pewarnaan ( penusukan,

pemotongan, pengupasan testa, pengeluaran embrio), penyiapan larutan tetrazolium, suhu

dan lama perendaman, penilaian benih viabel dan benih non viabel.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari pengujian viabilitas benih dengan larutan

garam tetrazolium dibandingkan dengan pengujian secara fisiologi

Bahan dan Metode

1. Benih jagung masing-masing 50 butir dilembabkan selama 1 malam.

2. Belah bagian embrio untuk mempercepat masuknya larutan tetrazolium ke dalam

benih. Rendam benih tersebut dengan larutan Tetrazolium secukupnya sampai

Page 21: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

benih terendam seluruhnya. Untuk mempercepat proses pewarnaan bisa dipakai

suhu 400C selama 1 jam

3. Evaluasi/Pengamatan

Setelah proses pewarnaan biji harus segera diamati :

Tuang larutan tetrazolium dengan menggunakan saringan teh, cuci benih

dengan air mengalir sampai bersih (bebas dari larutan tetrazolium).

Rendam dalam air bersih.

Amati benih satu per satu dengan kaca pembesar, klasifikasikan sesuai dengan

gambar 1 – 10. Gambar dan hitung persentase benih viabel.

Apabila perlu gunakan mikroskop stereo

Gambar 1. Pola pewarnaan Tetrazolium untuk benih /biji jagung yang hidup dan

yang mati

Kriteria dalam interpretasi hasil uji tetrazolium pada biji jagung.Bagian gambar yang

berwarna hitam menunjukkan adanya pewarnaan merah dari jaringan yang hidup; bagian

yang berwarna putih adalah bagian yang tidak berwarna yang berarti jaringannya mati.

No.1 Biji dapat tumbuh (Germinable)

Seluruh embrio berwarna merah cemerlang

No.2-4 Biji dapat tumbuh (Germinable)

Bagian ujung dari skutelum tidak berwarna

No.5-6 Biji dapat tumbuh (Germinable)

Bagian ujung dari skutelum tidak berwarna;dan bagian yang tidak kritis dari radikula

(calon akar) juga tidak berwarna

Page 22: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

No.7-8 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Bagian di mana tempat akar seminal berasal (pada struktur biji) tidak ada pewarnaan

No.9 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Plumula tidak terjadi pewarnaan (kadar jaringannya mati)

No.10 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Bagian tengah dari skutelum dan bagian dari tempat pertumbuhan akar seminal tidak

berwarna

No.11 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Plumula dan radikula tidak berwarna

No.12 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Bagian bawah skutelum dan radikula sampai ke bagian tempat tumbuh akar seminal tidak

berwarna

No.13 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Skutelum seluruhnya tidak berwarna

No.14 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Skutelum dan radikula tidak berwarna

No.15 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Pewarnaan embrio merah muda yang sangat redup

No.16 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Seluruh embrio tidak berwarna

Gambar 2. Benih/biji dan struktur bibit jagung

Page 23: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Keterangan:

A. Penampang luar kariopsis

a. Pericap

b. Embrio

c. Endosperm

B. Penampang membujur dari luar

a. Skutelum

b. Koleoptil

c. Plumula

C. Bibit

a. Akar seminal

b. Radikula

c. Koleoriza

Hasil Pengamatan Uji Cepat Viabilitas Benih dengan Tetrazolium

Tabel 7. Hasil pengamatan uji tetrazolium dan Uji Daya Berkecambah

Jumlah

benih

Ulangan Lot Viable

(%)

Komentar

25 1 TZ

DB

25 2 TZ

DB

25 3 TZ

DB

25 4 TZ

DB

Rata-rata

Page 24: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

PERCOBAAN X

PEMILAHAN BENIH DENGAN LARUTAN GARAM

Pendahuluan

Latar Belakang

Pembentukan dan perkembangan benih dalam satu malai, polong maupun tongkol

tidak seragam. Hal ini menyebabkan benih secara fisik dan kebernasannya tidak seragam.

Jumlah cadangan makanan yang tidak terakumulasi secara maksimal juga akan

berpengaruh pada perkecambahan benih. Oleh karena itu untuk mendapatkan mutu benih

yang tinggi diperlukan proses pemilahan benih.

Pemilahan benih dapat dilakukan dengan beberapa prinsip diantaranya berdasarkan

bentuk benih, kehalusan permukaan kulit benih, ukuran benih, dan bobot jenisnya.

Larutan garam NaCl merupakan larutan yang murah untuk digunakan dalam proses

pemilahan benih.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari konsentrasi larutan garam NaCl yang tepat

untuk pemilahan benih padi.

Bahan dan Metode

1. Buat larutan garam NaCl dengan konsentrasi 2 % dan 4 %

2. Timbang 10 gram benih padi untuk setiap satuan percobaan

3. Rendam benih tersebut dalam air, larutan garam NaCl 2%, 4% (volume 100 ml) kemudian

diaduk-aduk dan didiamkan selama 5 menit. Lakukan pengamatan perbedaan yang terjadi

pada benih tersebut pada ke tiga perlakuan tersebut.

4. Pisahkan benih yang tenggelam dan terapung pada ketiga larutan dan ditimbang

5. Hitung persentase pemilahannya

6. Tanam benih padi yang tenggelam dan terapung secara terpisah dengan metode UKDdp dan

amati daya berkecambah pada hari ke-7

Page 25: TATA TERTIB PRAKTIKUM 3 - dastekben.files.wordpress.com · sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan, kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih

Semester Genap 2019/2020

Tabel. Hasil pemilahan benih dengan larutan NaCl

Pengamatan Perlakuan

Air NaCl 2 % NaCl 4 %

Benih tenggelam (%)

Benih terapung (%)

Daya berkecambah benih

tenggelam (%)

Daya berkecambah benih

terapung (%)