praktek pvbp baru

Sugeng Abdullah, “Praktikum PVBP”, 1

SUGENG ABDULLAH

Materi Kuliah

Pemberantasan Vektor danBinatang Pengganggu

AKADEMI KESEHATAN LINGKUNGAN PURWOKERTO


KATA PENGANTAR

Buku ini sesungguhnya merupakan materi kuliah yang disajikan secara garis besar. Penjelasan terhadap isi yang ada dalam buku ini mutlak perlu. Acuan utama berasal dari buku “Pedoman Bidang Studi Pemberantasan Serangga dan Binatang Pengganggu untuk APK-TS.” Disarankan agar para mahasiswa / pembaca tidak terpaku pada materi kuliah ini. Sangat bermanfaat apabila mahasiswa mempelajari buku-buku yang tertulis di daftar kepustakaan. Demikian, semoga dapat membantu.

Purwokerto, 26 Maret 2001

Penyunting


ISI BUKU

PENGANTAR … (i)

ISI BUKU … (ii)

1. PENGERTIAN VEKTOR … (1)

2. MEKANISME PENULARAN PENYAKIT … (3)

3. SIFAT DAN PERILAKU VEKTOR… (7)

4. SURVEY VEKTOR … (14)

5. METODE PENGENDALIAN … (25)

6. NYAMUK / MALARIA … (29)

7. LALAT …(31)

8. PINJAL …(37)

9. PENGENDALIAN TIKUS … (38)

10. PESTISIDA … (46)

11. PERACIKAN PESTISIDA … (54)

12. KARANTINA … (59)

13. SANITASI PELABUHAN … (62)

14. KEPUSTAKAAN


1

Abatisasi

1. TEORI Kegiatan abatisasi bertujuan untuk menekan serendah mungkin populasi nyamuk/vektor DHF pada kurun waktu terbatas. Kegiatan ini untuk mendukung pelaksanaan fogging. Dalam pelaksanaan abatisasi lazimnya satu orang mampu menyelesaikan 25-30 rumah, dan setiap 5-6 oramg diperlukan seorang koordinator (ketua regu). Pinsip kerja dari abate adalah : abate akan larut dalam air, kemudian menempel/meresap pada dinding kontainer. secara kontinyu selama periode tertentu racun abate dilepas dan akan membunuh larva nyamuk. Abate adalah racun yang termasuk dalam golongan Organo phosphorus ester, dengan toksisitas rendah (LD50 dermal 4000, dan oral 13000 pada tikus). Dosis abate untuk membunuh larva nyamuk adalah 1 ppm. 2. PROSEDUR 2.1. Alat - Tas lapangan - sendok penakar/timbangan - mistar - kalkulator - bejana, kontainer 2.2. Bahan - Larvasida (abate 1 sg) 2.3. Cara kerja - ukur volume bejana yang diduga akan terisi air secara penuh / optimal,

sesuai dengan rumus volume masing- masing bejana. - hitung kebutuhan larvasida sesuai dengan dosis yang telah ditentukan. ( Untuk dosis Abate 1 SG = 1 ppm


atau 1 gram Abate dalam 10 liter air). Rumus aplika si Larvasida adalah sbb. : * Rumus (umum) : V x D B = -------- C B : Berat Larvasida yang dipakai V : Volume optimal bejana D : Dosis Larvasida C : Persen technical grade * Rumus (Abate 1 SG) V (liter) B (gram) = --------- 10 - Masukan larvasida pada bejana dimaksud 3. HASIL Jumlah bejana/kontainer = ............ Total volume bejana/kontainer = ........... Jumlah abate yang digunakan = ............


2

Trapping

1. TEORI Insect dan rodent, baik disadari atau tidak, kenyataanya telah menjadi saingan bagi manusia. Lebih dari itu, insect dan rodent, pada dasarnya dapat mempengaruhi bahkan mengganggu kehidupan manusia dengan berbagai cara. Dalam hal jumlah kehidup yang terlibat dalam gangguan tersebut, erat kaitannya dengan kejadian/penularan penyakit. Hal demikian dapat dilihat dari pola penularan penyakit pest yang melibatkan empat faktor kehidupan, yakni Manusia, pinjal, kuman dan Tikus. Beranjak dari pola tersebut, upaya untuk mempelajari kehidupan tikus menjadi sangat relevan. Salah satunya adalah mengetahui jenis atau spesies tikus yang ada, melalui identifikasi maupun deskripsi. Untuk keperluan ini dibutuhkan kunci identikasi tikus atau tabel deskripsi tikus, yang memuat ciri-ciri morfologi masing-masing jenis tikus. Ciri-ciri morfologi tikus yang lazim dipakai untuk keperluan tersebut diantaranya adalah : berat badan (BB), panjang kepala ditambah badan (H&B), ekor (T), cakar (HF), telinga (E), tengkorak (SK) dan susunan susu (M) (periksa gambar 1.1.). Disamping itu, lazim pula untuk diketahui bentk moncong, warna bulu, macam bulu ekor, kulit ekor, gigi dll. Insect atau ektoparasit yang menginfestasi tikus penting untuk diketahui, berkaitan dengan penentuan jenis vektor yang berperan dalam penularan penyakit yang tergolong rat borne diseases. 2. PROSEDUR 2.1. Bahan : - Insektisida aerosol - Chloroform - Umpan tikus - Tikus hidup 2.2. Alat : - Kunci Identifikasi tikus (genera rattus) - Tabel deskripsi tikus (Famili muridae)


- Spuit (suntikan) - Rat trap / cage trap (perangkap tikus hidup) - Mistar 50 Cm dan 30 Cm. - Timbangan - Kantong plastik volume 50 kg. - Sisir tikus / sikat sepatu 2.3. Cara kerja : 2.3.1. Pre Biting - Pasanglah berbagai makanan ditempat-tempat yang akan dipasang perangkap tikus (sesuai dengan kaidah sampling). Hindarkan kemungkinan termakan oleh binatang piaraan. - Biarkan selama sehari semalam, kemudian amati jenis makanan yang paling banyak dimakan oleh tikus. - Ulangi cara diatas, hingga diperoleh data yang cukup meyakinkan. - Interpretasi data diatas ialah : makanan yang paling banyak dimakan tikus, berarti paling disukai. 2.3.2. Trapping - Semua perangkap yang akan dipakai, dicuci terle bih dahulu dengan memasukkannya pada air panas, untuk menghilangkan lemak/bau khas tikus. Gunakan perangkap tikus hidup (cage trap). - Pasanglah perangkap di beberapa tempat (sesuai dengan kaidah sampling), dengan menggunakan umpan berdasarkan data dari Pre Biting. Waktu pemasangan dilakukan sore hari. - Pada pagi hari berikutnya, semua perangkap diambil. Pisahkan antara perangkap yang kosong dan perangkap yang ada tikusnya. - Perangkap yang ada tikusnya dibawa ke Laborato rium untuk diidentifikasi tikusnya dan ektoparasit lainnya. 2.3.3. Identificating - Perangkap yang ada tikusnya dimasukkan pada kantong plastik, kemudian kantong diikat rapat. - Ambil chloroform dengan spuit, kemudian suntik kan kedalam kantong tersebut. - Diamkan beberapa saat hingga tikus mati, kemudi an kantong dibuka, dengan mulut kantong tidak berhadapan dengan kita. - Bila perlu, semprotkan insektisida aerosol kedalam kantong untuk membunuh ektoparasit yang tidak mati oleh chloroform. - Perangkap dikeluarkan dari kantong, dan tikus yang mati juga dikeluarkan dari perangkap. - Lakukan penyisiran (dengan sikat sepatu) terhadap tikus tersebut, untuk mendapatkan ektoparasit.


- Ektoparasit yang diperoleh, dimasukkan pada botol yang diberi bahan pengawet (misal : alkohol), untuk diidentifikasi pada waktu yang lain. - Selanjutnya, lakukan pemeriksaan dan pengukuran terhadap tikus tersebut sesuai dengan kunci Identifikasi. Dapat pula hanya dilakukan pengukuran terutama terhadap berat badan (BB), pan jang kepala ditambah badan (H&B), ekor (T), cakar (HF), telinga (E), tengkorak (SK) dan susunan susu (M). - Interpretasi data diatas, sesuai dengan kunci identifikasi, atau mencocokkan pada tabel deskripsi tikus. 3. HASIL 3.1. Pre biting DAFTAR : Jenis umpan yang terbanyak dimakan pada tiap lokasi Tanggal : ............ , Lokasi : ................

Lokasi Umpan No.

Jenis Umpan 1 2 3 dst

Jumlah V

1 2 Dst Keterangan : - Beri tanda V untuk jenis umpan yang paling banyak dimakan. - Jumlah jenis umpan yang terbanyak dimakan berarti jenis umpan yang paling disukai. 3.2. Trapping DAFTAR : Hasil penangkapan tikus Tanggal : ............................. Lokasi : .............................


Umpan : .............................

Ada tikus No. Lokasi Perangkap Ya Tidak

Ket.

1 2 3 Dst Jumlah Prosentase

Beri tanda V pada kolom yang sesuaai 3.3. Identificating DAFTAR : Hasil identifikasi tikus dan ektoparasit Tanggal : ……………………. Lokasi : ……………………. No.

Lokasi

SEX

BB

H&B

T

E

HF

SK

M . +.

HB : T

Ektopar

Spesies

1 2 3 4 dst


3

Suceptibility Test

1. TEORI Suceptibility test atau uji kerentanan adalah suatu test untuk mengetahui tingkat kerentanan atau kekebalan serangga, terhadap suatu racun/insektisida. Uji ini bertujuan untuk menyelidiki apakah ada kekebalan atau tidak, dan kalau ada, kapan timbulnya. Oleh karena itu uji ini tidak cukup hanya dilakukan sekali saja, melainkan berulang-ulang sejak sebelum ada penyemprotan sampai sesudahnya. Uji ini untuk menyelidiki kekebalan fisiologis, bukan untuk mengetahui kekuatan racun/insektisida. Jadi pada dasarnya, uji ini untuk mengetahui basic LD50 beserta perubahan-perubahan yang terjadi. Perubahan LD50 ini bisa jadi tambah besar, yang berarti nyamuknya tambah kebal; atau tetap, atau bahkan kadangkala malah sebaliknya yakni LD50 bertambah kecil. Hal demikian terjadi karena adanya index absorbsi yang berlainan, ada tidaknya jaringan tubuh yang dapat menyimpan racun (misal: lemak), organ ekskresi yang berlainan, kemampuan regenerasi dan detoksikasi yang dimiliki, dan karena perilaku yang berubah/berbeda (misal: mampu menghindari racun). 2. PROSEDUR 2.1. Bahan - nyamuk hasil tangkapan di lapangan (minimal 200 ekor), yang telah mengandung darah dengan kondisi sehat, utuh dan sejenis. - kertas beracun (impregnated paper) dengan kadar berlainan - larutan gula - kapas - kertas stensil/duplikator 2.2. Alat - Holding tube dan exposure tube (minimal 20 set) - sucking tube


- cage - paper cup dan kain kasa 2.3. Cara kerja 2.3.1. Pretest (seleksi) - Siapkan holding tube, berilah nomor 1a, 2a s/d 10a,- 9a dan 10a untuk kontrol. Selanjutnya masukan kertas setensil kedalam holding tube, pasang klemnya. Pada kertas stensil tersebut tulislah besar konsentrasi insektesida sesuai dengan holding tube ( misal: 0,25%, 0,5 %, 0,75 %, dst). - Ambil nyamuk dengan sucking tube, kemudian dimasukan pada holding tube melalui filling hole (lubang). Tiap holding tube diisi 20-25 ekor nyamuk. - Letakkan holding tube berdiri tegak dengan kawat gaas (kain kasa) berada diatas. Berilah makanan dengan kapas yang dibasahi larutan gula, diletakan diatas kawat gaas. - Biarkan selama 1 jam. Bila ada yang mati dikeluarkan melalui filling hole. Nyamuk yang tidak mati (kuat) inilah, yang akan dipakai untuk test berikutnya. 2.3.2. Prelimanary test - Siapkan Exposure tube, berilah nomor 1, 2 s/d 10,- Selanjutnya masukan kertas beracun kedalam exposure tube, pasang klemnya. Kertas beracun tersebut mempun yai besar konsentrasi insektesida yang berbeda ( misal: 0,25%, 0,5 %, 0,75 %, dst). dan dipasang secara berurutan dari yang terendah pada no.1 dan yang tertinggi pada no.8. Pada no.9 dan 10 dipasang kertas tak beracun untuk kontrol. - Holding tube yang telah berisi nyamuk dengan jumlah tertentu (dari pretest) tsb. disambungkan dengan exposur tube. Pindahkan semua nyamuknya melalui filling hole ke ruang exposure. - Tutup kembali filling hole, dan biarkan nyamuk supaya kontak selama 1 jam. Jangan diberi makan/larutan gula. - Bila ada yang mati dikeluarkan dan dicatat pada tiap tube. Selanjutnya nyamuk dipindahkan kembali ke holding tube, dan simpan selama 24 jam di tempat yang gelap dan lembab, dengan suhu < 30 øC. Jangan lupa diberi makan larutan gula. - Catat jumlah total nyamuk yang mati pada setiap tube. Catat pula kondisi suhu min-max, kelembaban (Rh). Hitung prosentasi kematian pada setiap tabung. Sisa nyamuk yang masih hidup dibunuh. - Bila prosentasi kematian kontrol > 20%, test harus diulang. Bila 5-20% dapat dikoreksi dengan rumus Abbot sbb. :


% kematian yang ditest - % kematian kontrol ------------------------------------------ x 100 = 100 - % kematian kontrol - Interpretasi hasil : 98% - 100% = suceptible (renta) 80% - 98% = meragukan < 80% = resisten (kebal) 2.3.3. Test Lanjutan - Untuk menetapkan LD50 yang sesungguhnya, dilakukan tes lanjutan, dengan cara kerja seperti pada preli manary test. - Pada test lanjut ini, digunakan kertas beracun dengan konsentrasi yang memberi kematian 100%, berdasarkan hasil seperti pada prelimanary test. - Agar hasilnya meyakinkan, dalam test lanjut ini perlu dibuat rangkap ( 2, 3, atau 4 replicate). 2.3.4. Test ulangan - Dalam waktu tertentu, status kerentanan nyamuk dapat saja berubah, oleh karena itu perlu diadakan test ulangan. Cara kerjanya sama dengan prelimanary test dan test lanjutan. 3. HASIL

No Tube

Konst. (%)

Jumlah Nyamuk

Jumlh. mati

% mati

Ket.

1 2 3 … 9 kontrol 10 kontrol


4

Spraying

1. TEORI Penyemprotan (spraying) yang dimaksud, bertujuan untuk menempelkan pestida/racun pada permukaan dinding. Tujuan selanjutnya adalah untuk membunuh nyamuk agar polpulasinya menurun, sehingga tidak menggangu kesehatan manusia. Penyemprotan dalam rangka pengendalian nyamuk, lazimnya digunakan tangki semprot ( spraycan) dengan spesifikasi dan persyaratan tertentu. Tangki semprot yang dipakai adalah Spraycan Hudson expert, dan beberapa hal yang harus dipenuhi adalah antara lain : - Konsentrasi larutan, dalam hal ini perlu diperhatikan tentang dosis akhir, berat kemasan pestisida, penimbangan, pembungkusan, dan pembuatan larutan. - Nozzle yang dipakai adalah Nozletip HSS 8002, yang keluarannya berbentuk pelat kipas (flat fan), dengan sudut pancar 80ø dan debit keluaran 0.2 gallon (757 cc) per menit. lebar semprotan (swat) 75 Cm, lebar efektip 70 Cm. - Jarak nozle dengan dinding 46 Cm. - Tekanan dalam tangki 40 - 55 psi - kecepatan menyemprot 19 M2 per menit, dan iramanya (langkah dan goyang) yang benar. Disamping hal tersebut diatas, perlu diperhatikan pula tentang waktu, cakupan dan keteraturan dalam penyemprotan. (Lebih lanjut baca PSBP tentang pengendalian nyamuk malaria, dan Fisika hydrostatik hususnya masalah tekanan). 2. PROSEDUR KERJA 2.1. Alat - Spraycan HUDSON dan kelengkapannya - Nozzletip HSS 8002 - Gelas ukur - stop watch - Timbangan - Ember saringan - Pengaduk


- Bidang semprot (3x6,33 M) - Alat pelindung diri 2.2. Bahan - Pestisida bentuk WDP (DDT tiruan) - Pelarut (air) - Kantong plastik - Tali/karet gelang 2.3. Cara Kerja 2.3.1. Kalibrasi - Isilah tangki spraycan dengan air sebanyak 8,5 liter. - Pompa sebanyak 55 kali (periksa manometer, teka nan = 55 psi). - Tempatkan ujung nozle pada mulut gelas kimia, kemudian semprotkan selama 1 menit. Cairan yang tertampung diukur volumenya. Kerjakan sebanyak 3 kali, kemudian pompa sebanyak 25 kali. Kerjakan dengan cara yang sama sampai air dalam tangki habis. Volume cairan yang keluar pada setiap menit, idealnya harus 0,8 gallon ( = 757 ml). - Tangki diisi kembali dengan air sebanyak 8,5 liter, lalu pompa sebanyak 55 kali. - Ujung nozle diarahkan tegak lurus bidang dinding dengan jarak 46 cm. Posisi lubang nozle mendatar. - Semprotkan pada bidang dinding, kemudian ukurlah lebar semprotan (swat) yang mengenai dinding tersebut. Lebar swat idealnya harus 75 Cm. - Interpretasi : Apabila volume keluaran per menit dan lebar swat tidak sesuai, maka spraycan atau nozle tidak layak pakai. 2.3.2. Penentuan berat kemasan - Timbanglah pestisida untuk kemasan satu kali adonan (8,5 L), dengan rumus : 21250 A K = --------- B K : Berat kemasan pestisida (gram) A : Dosis akhir (gr/m2) B : Kadar Pestisida (%) - Masukan pestisida kedalam kantong plastik dan kemudian ikat dengan tali. Kemasan tidak boleh menggelembung. Sebaiknya kemasan dibuat rangkap dua. 2.3.3. Membuat larutan pestisida (suspensi)


- Masukan 1 liter air kedalam ember saringan. Dengan hati-hati masukan pestisida separuh kema san. Tunggu sampai tenggelam (basah) kemudian aduk hingga larut. Tambahkan air hingga 4 liter. - Masukan larutan tersebut kedalam spraycan. - Ulangi dengan cara yang sama terhadap sisa pestisida, dan kemudian tambahkan air kedalam spraycan hingga 8,5 liter. 2.3.4. Pelaksanaan spraying - Setelah semua larutan (8,5 l) dimasukan spray can, spraycan ditutup, kemudian pompa 55 kali (tekanan 55 psi / 3,8 kg/cm2). - Spraycan diangkat, nozle diarahkan pada bidang yang akan disemprot. Semprotkan pada bidang seluas 19 M2 dalam waktu 1 menit. Jarak nozle dengan bidang semprot 46 Cm. ( Untuk keperluan latihan, diperlukan bidang semprot seluas 3 x 6,33 M yang dibagi menjadi 9 kolom, lihat gambar. Perhatikan irama (langkah kaki dan goyang) menyemprot seperti yang ditunjukkan oleh in struktur, agar diperoleh kecepatan dan jarak sesuai dengan ketentuan.). - Pertahankan tekanan dalam tangki ( 55 psi) dengan cara : Setelah dipakai menyemprot 3 menit, pompa 25 kali. Gunakan untuk menyemprot 3 menit, kemudian pompa 25 kali lagi, terus semprotkan sampai habis. 2.3.5. Pemeliharaan. - Apabila telah selesai digunakan untuk menyem prot, spraycan dicuci dan dibilas dengan mengisi air bersih, kemudian semprotkan sampai habis. Gunakan juga bahan pembersih (sabun). Selanjutnya sparaycan dikeringkan dan disimpan. 3. HASIL 3.1. Kalibrasi volume keluaran per menit = ........... lebar swat = ........... 3.2. Berat kemasan dosis ahir (gr/m2) = ........ kadar pestisida yang ada = ........ Berat kemasan = ........ 3.3. Membuat suspensi Nama Pestisida yang digunakan = ......... kadar pestisida yang dipakai = ......... berat pestisida yang dilarutkan = .......... volume larutan = .......


konsentrasi larutan = ....... 3.4. Pelaksanaan spraying Luas yang disemprot = ....... Waktu yang diperlukan = ....... Idle time = ....... Jumlah suspensi dipakai = .......


5

Suspensibility Test

1. TEORI Uji Suspensi bertujuan untuk mengetahui mutu suspensi (tingkat daya kelarutan pestisida) yang akan digunakan untuk menyemprot apakah masih layak atau tidak. Prinsip uji suspensi ini adalah dengan cara pengendapan. Semakin banyak endapan yang terjadi, berarti semakin kecil powder yang larut dalam air menjadi suspensi. Dengan demikian mutu suspensi dan mutu powder pestisida semakin jelek. Dalam uji suspensi pestisida dikenal ada dua macam cara, yakni cara praktis yang biasanya dilakukan di gudang sesaat sebelum pestisida dibagikan ke lapangan. Cara ini di sebut sebagai Visual Suspensibility Test. Cara yang lain adalah dengan cara menyemprotkan. Cara ini biasa digunakan untuk mengetahui keadaan pestisida seperti kondisi sesungguhnya dilapangan. ( Baca Kimia : Masalah Larutan dan Pengendapan ) 2. PROSEDUR 2.1. Alat. - Gelas ukur bertutup vol 100 ml - Gelas ukur vol 250 ml 12 buah - pengaduk kaca - Spraycan berikut kelengkapannya - Timbangan (analit) - pengukur waktu - Ember - Alat pelindung diri 2.2. Bahan - Pestisida bentuk WDP (powder) - Pelarut air 2.3. Cara kerja 2.3.1. Cara pertama


- Timbang 3,3 gram pestisida (powder), dan masukkan kedalam gelas kimia vol 100 ml. Tambahkan air bersih kedalamnya sebanyak < 100 ml. - Biarkan 30 detik, lalu aduk selama 30 detik - Masukkan kedalam gelas ukur bertutup vol 100 ml. Tambahkan air hingga 100 ml - Kocok sebanyak 30 kali, dengan cara membolak-balik kan gelas ukur @ 30 detik - Diamkan 15 menit, amati endapan yang terjadi. Bila endapan kurang dari 5 ml berarti pestisida baik (tingkat kelarutannya baik). Demikian sebaliknya bila endapan lebih dari 5 ml berarti jelek. 2.3.2. Cara kedua - Siapkan gelas ukur volume 250 ml sebanyak 12 buah, dan tempatkan pada wadah/ember besar. - Timbang pestisida sesuai dengan berat kemasan per spraycan (misal : 567 gram DDT 75 WDP). Pestisida dimasukkan kedalam ember dan tambahkan 3 liter air bersih, kemudian aduk hingga larut. - Larutan dimasukkan kedalam spraycan dengan menggu nakan saringan. Spraycan ditutup kemudian pompa sebanyak 55 kali (tekanan 50 psi). - Tangki dikocok 20 kali, dengan cara membolak-balik kan tangki tersebut. - Tempatkan tangki dengan posisi miring sedemikian rupa, agar ujung pipa pengeluaran berada di bagian terendah. Usahakan tangki tidak bergerak. - Semprotkan cairan dalam tangki dan biarkan nozle terbuka selama 30 detik (cairan harap ditampung di wadah), kemudian cairan ditampung dengan gelas ukur hingga volume cairan ó 250 ml pada setiap gelas ukur. Setiap disemprotkan satu menit, tangki dipompa 25 kali. Demikian seterusnya, hingga cairan dalam tangki habis dan kedua belas gelas ukur terisi larutan. - Larutan didiamkan selama 24 jam, kemudian cairan dan endapan diperiksa. - Biasanya isi gelas ukur tidak sama, maka endapan yang terbentuk perlu dikoreksi (didasarkan pada volume 250 ml), dengan rumus corected sedimen : So x 250 S = --------- Vo S : Volume endapan pada 250 ml So : Volume endapan yang terjadi pada gelas ukur Vo :Volume larutan yang tertampung pd gelas ukur 250 : konstanta - Hitung volume endapan rata-rata, dengan rumus : S Sr = ----- N


Sr : Rata-rata volume endapan S : Jumlah volume endapan pada 250 ml N : Jumlah gelas ukur yang digunakan ( 12 buah) - Hitung prosen (%) penyimpangan endapan (S) dari endapan rata-rata (Sr), dengan rumus : S x 100 % penyimpangan = --------- - 100 Sr - Jika % penyimpangan melebihi 33 % pada 3 buah gelas ukur, maka berarti pestisida tidak baik daya larutnya. 3. HASIL DAN PERHITUNGAN

No. Tabun

g

Vo So S % penyim pangan

Ket.

1 2 ..

12 Jumlah Rata-rata (Sr)


6

ULV-afan

1. TEORI ULVafan adalah salah satu bentuk peralatan aplikasi pestisida yang digunakan untuk pengendalian insect (serangga) pada khususnya dan pengenalian pest pada umumnya. Prinsip kerja ULVafan adalah memecah tetes-tetes larutan pestisida dengan cakram yang berputar 12.000 rpm, menjadi titik-titik partikel (droplet) pentisida. Droplet ini kemudian diarahkan dengan tiupan kipas angin (fan) yang berputar cepat. Spraying dengan ULVafan ini dapat dipakai untuk pengendalian terhadap insect yang terbang (misal : lalat), maupun insect yang menetap/menempel dipermukaan (misal : insect yang terdapat pada daun). ULVafan cocok misalnya untuk spraying pada kontainer atau bak sampah, mengingat beratnya yang ringan dan kompak serta mudah pengoperasiannya. Hal ini dapat dilihat dari daftar spesifikasi yang menyertai alat tersebut, sbb : - Berat (siap untuk menyemprot) : 5,00 kg. - Volume botol larutan : 0,50 liter - Power suply (batery) : 12 volt - komsumsi energi (tanpa beban) : 20 watt - Kecepatan putar cakram : 12.000 rpm - Debit larutan (tergantung nozzle): 15 - 60 ml/menit - Ukuran droplet partikel : 50 mikron - Jangkauan sebaran partikel : 4 - 6 meter - Kegunaan : pengendalian serangga, dll. 2. PROSEDUR 2.1. Alat - ULVafan dengan kelengkapannya (botol pestisida, nozzle , bateray) - Gelas ukur - Alat pengukur waktu (stop watch) 2.2. Bahan-bahan - Pestisida (WP, WDP, EC) - Bahan pelarut (air, kerosene) - Bahan pembersih


2.3. Cara kerja 2.3.1. Kalibrasi alat ULVafan - Buka/kembangkan ULVafan, dengan cara menarik bagian kepala cakram hingga terkunci lurus. Penutup cakram dibuka. - Pasang Nozzle sesuai dengan jenis larutan yang akan digunakan. Warna biru untuk larutan yang sangat encer (misal : air) Warna kuning untuk larutan encer Warna oranye untuk larutan pekat Warna merah untuk larutan sangat pekat - Pasang botol larutan (yang telah berisi larutan), dengan cara memutar botol tersebut. Mulut botol mengha dap keatas. - Posisi UlVafan berikut botol larutan, dibalik, hingga mulut botol menghadap kebawah. Tampunglah tetes-tetes larutan pada gelas ukur dan catat volumenya setelah menetes selama satu menit. (Idealnya 30 ml/menit, oleh karena itu sesuaikan nozzlenya). Harap diperhatikan, ULVafan dalam keadaan tidak dihidupkan. 2.3.2. Pelaksanaan spraying - Setelah selesai kalibrasi, botol larutan dilepas dan kemudian diisi kembali dengan larutan pestisida yang akan dipakai. Posisi mulut botol menghadap keatas. - Pasang jack (probe) kabel power suply pada batery/accu. - Atur dan tentukan route serta arah penyemprotan yang akan dilaksanakan. - Bawalah ULVafan ketempat yang telah ditentukan arah dan routenya. Posisi mulut botol larutan tetap menghadap keatas. - Hidupkan ULVafan, dengan cara menekan saklar pada posisi ON. Spraying dapat dimulai, dengan cara memba likkan posisi ULVafan hingga mulut botol menghadap kebawah. Sambil berjalan mundur atau kesamping, Arahkan partikel spray dengan mengarahkan kepala cakram / nozzle. Jangkauan partikle spray berkisar 4 - 6 meter. - Bila target sudah selesai, ULVafan dibalik hingga mulut botol larutan menghadap keatas. Tunggu sampai partikel spray habis/tidak memancar, kemudian ULVafan dimatikan (saklar OFF). 2.3.3. Pemeliharaan. - Bersihkan ULVafan segera setelah selesai digunakan, dengan cara mengisi botol larutan dengan cairan pember sih kemudian semprotkan sampai habis. Jika ULVafan tidak akan digunakan dalam waktu yang lama, perlu dipoles dengan kerosene. - Apabila putaran cakram tidak normal, periksa keadaan batery terlebih dahulu kemudian periksa bagian mekanik yang lain.


3. HASIL 3.1. Kalibrasi - Warna nozle = ..... - bahan pelarut = .... - debit = .... 3.2. Pelaksanaan - Luas area = ...... - waktu yang diperlukan = ......

- jumlah pestisida yang dipakai = ......


7

Uji Predasi

1. TEORI Prinsip pengendalian vektor dan binatang pengganggu adalah harus menerapkan bermacam-macam cara pengendalian, agar vektor senantisa berada dibawah ambang yang membahayakan kesehatan. Disamping itu juga harus aman bagi mahluk hidup dan lingkungan. Konsekwensi dari prinsip dimaksud perlu diterapkan metode yang tepat, aman dan terarah. Salah satunya adalah dengan pengendalian secara biologi, yakni dengan pemanfaatan predator. Kemampuan predator untuk memangsa vektor perlu untuk diketahui secara pasti dan akurat, melalui uji predasi. Dengan demikian data yang diperoleh dapat dipakai untuk memprediksi besarnya kontribusi predator tertentu dalam hal pengendalian vektor. Predator yang dapat dipakai dalam pengendalian nyamuk, terutama terhadap larva nyamuk, adalah dengan menggunakan berbagai ikan pemakan larva. Ikan pemakan larva umumnya termasuk jenis Omnivora (pemakan semua) dan Carnivora (pemakan daging), misalnya : ikan gendol, kepala timah, ghuppi, mujair, sepat, dll. Kemampuan masing-masing ikan tersebut dalam memangsa larva nyamuk perlu diketahui, yakni dengan uji predasi. 2. PROSEDUR 2.1. Bahan - ikan pemakan larva - larva nyamuk instar III dan IV - air 2.2. Alat - Kontainer (volume minimal : T=20 Cm, d=25 Cm) - nampan (tempat larva) - gayung bersaring - pipet larva / sendok - timbangan analit - mistar - aerator - pengukur waktu (stop watch) - hygrometer


- termometer min-max 2.3. Cara kerja - Masukan air kedalam kontainer. Usahakan kedalaman air dalam kontainer tidak kurang dari 10 Cm. Masukkan pipa aerator kedalam air. - Pilihlah ikan tertentu, kemudian beratnya ditimbang dan diukur panjangnya. Ambil 5 ekor ikan yang berat dan panjangnya relatif sama. - Masukkan 5 ekor ikan tersebut kedalam kontainer, kemud ian aerator dihidupkan. Biarkan selama waktu tertentu (30 menit) tanpa diberi makan. - Masukkan 25 ekor larva nyamuk kedalam kontainer dan catat waktu pemasukan larva. - Amati dan Hitung larva yang tidak dimakan oleh ikan setelah periode 10 menit, 20 menit, 30 menit, 1 jam dan 24 Jam. Apabila larva telah habis dimakan sebelum periode pengamatan / penghitungan, tambahkan lagi larva nyamuk dengan jumlah yang sama (25 ekor). - Ulangi dengan cara yang sama pada hari berikutnya selama 3 (tiga) hari. - Interpretasi : P = (U - M)/5 larva per ekor P : Kemampuan predasi (memangsa) ikan U : Jumlah total larva nyamuk yang diberikan / diumpankan M : Jumlah sisa larva nyamuk yang tidak dimakan. 5 : 5 ekor ikan - Dalam percobaan perlu diukur keadaan suhu air dan kelembaban lingkungan setempat 3. HASIL


DAFTAR : HASIL PENGAMATAN UJI PREDASI Ikan = .................. Berat = ............ gram. Panjang = .............. Cm.

Jumlah larva Ket No. Periode Pengamatan diumpanka

n dimakan

1 0 menit 2 10 menit 3 20 menit 4 30 menit 5 60 menit 6 24 jam Jumlah U= M=


8

Kholinesterase Test

1. TEORI Kholinesterase adalah enzim, suatu bentuk dari katalis biiologik yang didalam jaringan tubuh berperan untuk menjaga otot-otot, kelenjar-kelenjar dan sel-sel syaraf bekerja secara terorganisir dan harmonis. Jika aktifitas jaringan kholinesterase turun secara drastis (cepat) sampai tingkat rendah, dampaknya adalah bergeraknya serat-serat secara sadar sdengan gerakan halus maupun kasar, dan mengeluarkan air mata secara lebih lambat dan lemah. Pestisida golongan orgganophospat dangolongan karbamat adalah golongan pestisida penghambat kholinesterase darah. Karena sifatnya yang demikian, parapenjamah pestisida dari golongan organophospat dan karbamat ini dapat menngalami keracunan yang berjenjang dari keracunan tingkat ringan , sedang sampai berat. Tingkat keracunan ini dapat dipantau dengan menggunakan cara Edson yang menggunakan Tintometer kid . Cara Edson ini menggunakan dasar pada pengukuran enzim Cholinesterase yang dihambat aktifiitasnya oleh pestissida golongaan organopospor dan karbamat ini. Pada prinsipnya pengukuran efektifitas cholinesterase (ChE) adalah sebagai berikut : Cholineesterase + Acetilcholine ----------> Choline + CH3COOH (enzim dalam darah) Asam asetat ini mengubah pH. Perubahan pH yang sekaligus merubah warna larutan ini dapat dilihat dengan inddikator yang dalam hal ini digunakan larutan BTB. Pada prakteknya, darah diambil dari ujung jari yang kemudian dicampur dengan Acetil cholin perchlorate sebagai pereaksi dan BTB sebagai indikator. Setelah reaksi berlangsung selama waktu tertentu, perubahan warna larutan dilihat dengan Comparator Disc. Lama berlangsungnya reaksi tersebut sangat tergantung dari suhu setempat dan keadaan reagent. Untuk meminimize kesalahan pemeriksaan, diperlukan data tentang hubungan suhu, reagen dan waktu reaksi, sbb. :


Temperatur ø C Reagen = 0% Reagen 12,5% 10 41' 36' 15 33' 29' 20 27' 24' 25 24' 21' 26 23'30" 20'30" 27 23' 20' 28 22'30" 19'30" 29 22' 19' 30 21' 18'30" 35 18' 16' 40 16'30" 14'30" 45 16' 14' Kreteria aktifitas enzim chilineesterase, dinyatakan dalam % dari normal, sbb. : 75% - 100% dari normal : Tidak ada tindakan tapi perlu diuji ulang waktu dekat. Kelompok ini termasuk dalam kategori normal. 50% - 75% dari normal : Mungkin over exposure, perlu diuji ulang. Jika responden ini lemah agar disarankan untuk istirahat (tidak kontak) dengan Organophospat selama 2 minggu, kemudian uji ulang sampai mencapai kesembuhan. Kelompok ini termasuk dalam kategori keracunan ringan. 25% - 50% dari normal : Over exsposure serius, ulangi penggujian. Jika benar istirahat dari semua pekerjaan yang berkenaan dengan pestisida (insektisida). Jika yang bersangkutan sakit rujuklah pada pemeriksaan medis. Kelompok ini termasuk kategori keracunan sedang. 0% - 25% dari normal : over exspposure yang sangat serius dan berbahaya. Perlu diuji ulang dan yang bersangkutan harus diistirahatkan dari semua pekerjaan dan perlu segera dirujuk pada pemeriksaan medis. Kelompok ini termasuk kategori keracunan berat. 2. PROSEDURE 2.1. Bahan - Darah kontrol (bebas pestisida) - Darah tercemar (diduga) - Aquabides (Aquades bebas CO2) - Indikator BTB - Achetilcoline perchlorat - Alkohol - Kapas


2.2. Alat Tintometer Kit, terdiri dari - Komparator lovibond 2000 - disk (cakram) Cholinesterase - cuvet - pengaduk kaca - botol reagen - gelas ukur - labu ukur - tabung reaksi pendek - rak tabung reaksi - beaker glas - pemanas spirtus - Autoclik (lanchet) - Pipet mikro - Termometer - Stop watch 2.3. Cara Kerja 2.3.1. Menyiapkan aquades bebas CO2 - Aquades dididihkan sampai keluar gelembung-gelembung besar (10 menit tetap diatas hot plate). - Erlenmeyer tempat aquades ditutup dengan kapas. Terus didinginkan, setelah dingin------pH=6. - Aquades bebas CO2 dapat diganti dengan menggunakan Aquabidest 2.3.2. Membersihkan alat-alat (Kalibrasi) - Menggodok prop/sumbat karet (2 kali) sampai air pembilas tetap pH 6. - Membersihkan alat-alat gelas maupun alat lainnya, dengan membilas 2 kali atau direndam memakai aqua bides. tabung reaksi yang telah dibilas ditutup prop/sumbat karet dengan pinset 2.3.3. Membuat reagen - Larutkan 0,5 gram acetyl choline perchlorat dalam 100 ml aqubides. (ACPP) - Larutkan 0,25 gram BTB dalam 560 ml aquabides (BTB) 2.3.4. Test reagen - Siapkann 20 tabung rreaksi dalam sebuah rak. tabung ke 1 diisi dengan aquadest sebanyak 1cc.


tabung ke 2 s/d 19 diisi dengan larutan BTB 0,5 cc. tabung ke 20 diisi aguadest untuk meredam pippet. - Catat temperatur kamar, lihat tabel time out Approximetely time yang dibutuhkan. - Tabung ke 1 yang telah beerisi aguadest 1cc ditambah darah dari kontrol person sebanyak 0,01 cc. Kocok- kocok, masukkan kedalam kuvet, tempatkan dalam com parator sebelah kiri. - Tabung ke 2 yang berisi BTB 0,5 cc ditambahkan 0,01 cc darah dari kontrol person , kocok kedalam tambah kan 0,5 cc ACPP, kocok-kocok lagi, segera masukkan kedalam kuvet, tempatkan kedalam komparator di sebe lah kanan. - Komparator dimainkan / dibaca hasilnya harus antara 0-12,5 % , jika hasilnya lebih besar dari 12,5% berarti reagen terlalu asam, larutan tidak dapat dipakai, (harus dipanaskan lagi) - Jika terjadi demikian Test reagen harus diulang lagi, sehingga didapat hasil antara 0 s/d 12,5%. Lihat lagi approximately time yang diperlukan dari tabel. 2.3.5. Pemeriksaan aktifitas cholinesterase - Pemeriksaan Aktifitas Cholinesterase yang sebenarnya dimulai dengan tabung ke 3. - Tabung ke 3 yang telah berisi 0,5cc larutan BTB ditambahkan 0,01 cc darah kontrol person, kocok-kocok terus, tambahkan 0,05 cc ACP dan kocok lagi. Pada saat ACP dimasukkan ke dalam tabung, tombol stop wacth dipencet. Ini adalah time in = 0 0" . - Tabung ke 4 dst, dikerjakan demikian sampai waktu tertentu mendekati time out yang diperlukan, seri dihentikan. - Secepatnya isi tabung ke 3 dimasukkan ke dalam kuvet, terus ditempatkan pada komparator sebelah kanan. - Baca komperator (dimainkan disknya), sampai dicapai harga normal dari control person (tercapai warna yang sama antara disc dengan campuran dalam kuvet). Kemudian waktu yang diperlukan tersebut dicacat. - Tabung ke 4 dikerjakan seperti tabung ke 3 ( darah masih dari kontrol person). Pada waktu memasukkan ACP lihat stop wacth, catat waktunya (sebaiknya kelipatan dari waktu tertentu misalnya 5 detik. selanjutnya tabung ke 5 dst dikerjakan secara berurutan seperti tabung ke 3 dan 4. Pembacaan dilakukan pada saat ap proximetely time yang diperlukan dicapai, yaitu : Time in + waktu dibaca ( dikerjakan persis seperti tabung 3 & 4 ). - Dengan membandingkan terhadap harga normal dari control person, akan didapat harga-harga aktifitas cholinesterase dari para petani penyemprot/pasien.


- Interprestasi hasil pembacaan 75% - 100% dari normal : kategori normal. 50% - 75% dari normal : kategori keracunan ringan. 25% - 50% dari normal : kategori keracunan sedang. 0% - 25% dari normal : kategori keracunan berat. - Agar didapatkan kesimpulan yang valid, diperlukan adanya wawancara terhadap petani/pasien berkenaan dengan penanganan pestisida 3. HASIL DAFTAR : Hasil pemeriksaan aktifitas enzim cholinesterase dalam darah Tgl. .......... di ............. Test reagent : .............. Normal : ........ Suhu : .............. Keracunan ringan : ....... Waktu tunggu : ............ Keracunan sedang : ....... Interval : .............. Keracunan berat : ........

No. Tab

Nama T.in T.out %act Ket

1 2 3 ..

20


9

Kepadatan Lalat

1. TEORI Kepadatan lalat disuatu tempat perlu diketahui untuk menentukan apakah daerah tersebut potensial untuk terjadinya fly borne diseases atau tidak. metode pengukuran kepadatan lalat yang populer dan sederhana adalah dengan menggunakan alat flygrill. Prinsip kerja dari alat ini didasarkan pada sifat lalat yang menyukai hinggap pada permukaan benda yang bersudut tajam vertikal. Lokasi yang perlu dilakukan pengukuran kepadatan lalat, utamanya adalah perumahan, rumah makan dan tempat pembuangan sampah. ......... Keuntungan penggunaan flygrill diantaranya adalah mudah, cepat dan murah. Dengan demikian dapat dengan cepat menentukan kriteria suatu daerah potensial atau tidak. Adapun kriteria tersebut adalah ...... Kendati demikian, flygrill mempunyai beberapa kelemahan. Utamanya adalah bahwa flygrill sangat tidak cocok untuk menghitung kepadatan lalat, dimana populasinya sangat banyak atau sangat sedikit. Dalam kondisi seperti itu, penghitungan kepadatan lalat dengan flygrill, hasilnya tidak dapat mewakili keadaan yang sesungguhnya. 2. PROSEDUR 2.1. Alat - Fly grill ukuran standar - Stop wach - Formulir pencatatan - Denah lokasi - Tally counter 2.2. Bahan - lalat bebas/liar 2.3. Cara kerja - Letakan flygril pada tempat dan jarak yang telah diten tukan


- Biarkan beberapa saat (untuk penyesuaian bagi lalat) - hitung jumlah lalat yang hinggap pada flygrill selama 30 detik, sebanyak 10 kali. - Ambil sebanyak 5 hasil perhitungan kepadatan lalat yang tertinggi, kemudian dirata-ratakan. - Hasil rata-rata adalah angka kepadatan lalat dengan satuan ekor per block grill. - Untuk kelengkapan informasi, perlu juga diadakan pengu kuran suhu, kelembaban dan keadaan cuaca secara umum. 3. HASIL Daftar : Hasil perhitungan kepadatan lalat Hari/tgl. : .................... Waktu : .................... Lokasi : .................... Radius : .................... No. 30 detik

ke … Jumlah lalat

hinggap Ket.

1 I 2 II … Dst. 10 X Jml 5 tertinggi Rata - rata


10

Fogging

1. TEORI Pengasapan atau fogging yang dimaksud, bertujuan untuk Menyebarkan pestisida ke udara/lingkungan melalui asap, yang diharapkan dapat membunuh nyamuk dewasa (yang infektif), sehingga rantai penularan DHF bisa diputuskan dan populasinya secara keseluruhan akan menurun. Pengasapan dalam rangka pengendalian nyamuk vektor DHF, lazimnya digunakan fog machine atau fog generator dengan spesifikasi dan persyaratan tertentu. Ada dua jenis fog generator, yakni sistem panas (misalnya Pulsfog, swingfog) dan sistem dingin ( yaitu : ULV ground sprayer). Untuk memperoleh hasil yang optimum, beberapa hal yang perlu diperhatikan sbb. : - Konsentrasi larutan/solusi, dalam hal ini perlu diperhatikan tentang dosis akhir (misal : konsentari solusi untuk Mala thion = 4-5% dan dosis = 438 gr/ha) dan cara pembuatan larutan. - Nozzle yang dipakai harus sesuai dengan bahan pelarut yang digunakan dan debit keluaran yang diinginkan - Jarak moncong mesin dengan obyek/target (max. 100 m, efektif 50 m). - kecepatan dan posisi berjalan ketika mem-fog. Untuk swingfog ñ 2-3 menit setiap 500 mý atau 2-3 menit untuk satu rumah berikut halamannya, sedangkan untuk ulv 6-8 km/jam. - waktu fogging disesuaikan dengan kepadatan/aktifitas puncak dari vektor yang bersangkutan. Biasanya untuk AE jam 09.00 sampai 11.00 - ulangan (cycle), biasanya dengan interval seminggu. - tenaga/operator, untuk sitem panas 2 orang per mesin. untuk sistem dingin 3 orang per mesin. (Baca : PSBP tentang pengendalian DHF, Kimia/Fisika tentang perubahan sifat fisik/kimia materi dan koloid) 2. PROSEDUR KERJA 2.1. Alat : - Fog mechine / Fog generator dan kelengkapannya - jerican plastik vol 20 liter - jerican plastik vol 5 liter - alat penakar satu liter


- ember plastik - corong bersaring - alat pelindung diri - alat tulis - mikroskop - meteran - hygrometer - anemometer 2.2. Bahan : - Pestisida cair (Malathion 96 %) - Bahan pelarut (solar) - Bahan bakar (bensin) - Batu bateray (4 buah) - serbet/tissue - sabun cuci - Pewarna minyak - kertas saring wathman 2.3. Cara Kerja: 2.3.1. Kalibrasi - Tangki bahan bakar diisi dengan bensin sebanyak volume tertentu, demikian juga tangki solusi diisi dengan solar yang telah diberi pewarna dengan volume tertentu. - Pasang nozle sesuai nomor/seri yang telah diten tukan. Demikian juga bateraynya. - Tempatkan fog machine pada lokasi yang telah ditentukan (sedapat mungkin hindarkan dari pengaruh angin). - Tempatkan kertas saring wathman didepan moncong fog machine dengan jarak yang berbeda-beda ( ± 5- 100 m). Jangan lupa tuliskan jarak dimaksud pada masing-masing kertas saring. - Hidupkan mesin dan buka kran solusi. Catat waktu mulai mesin hidup dan waktu membuka kran solusi. Biarkan mesin hidup dan kran solusi membuka selama 30 menit. - Amati dan catat : kecepatan angin, suhu, kelemba ban, tinggi asap, jarak jangkauan asap. - Setelah 30 menit mesin dimatikan, kemudian hitung jumlah bahan bakar dan solusi/solar yang digunakan dengan rumus : Volume dipakai = Volume awal - Volume sisa - Kertas saring wathman diambil, kemudian masing- masing dihitung noda-nona partikel fog dengan menggunakan mikroskop atau magnifier lens. Tentukan partikel fog per Cmý.


- Kerjakan dengan cara yang sama untuk nozle yang lain. 2.3.2. Membuat solusi (larutan pestisida) - Takar pestisida dan pelarutnya, sesuai dengan konsentrasi dan volume larutan yang diinginkan, dengan rumus : SA Q = ---- dan P = A - Q C Q : volume pestisida murni (konsentrasi tinggi) S : konsentrasi larutan A : volume larutan C : konsentrasi pestisida P : volume pelarut Ket. BJ diabaikan - Campurkan pestisida dan bahan pelarutnya pada jerican dan kocok hingga larut merata. 2.3.3. Pelaksanaan fogging - Siapkan semua peralatan yang diperlukan dan periksa lokasi yang akan di fog. - masukan larutan pestisida, bensin dan bateray sesuai dengan tempatnya pada fog machine. - Pasanglah nozzle yang sesuai. - Hidupkan fog machine dengan cara : * Jika menggunakan mesin Puls Fog Buka kran bensin secukupnya, kemudian tekan bulb (dipompa) beberapa kali hingga mesin hidup. * Jika menggunakan mesin Swing Fog SN11 Tutup kran bensin dan pompa 5 kali. Kran bensin dibuka, kemudian tekan tombol starter bersama-sama dengan dipompa beberapa kali hingga mesin hidup. - Atur kran bensin dan katup udara hingga bunyi mesin terdengar normal dan stabil. - Angkat (gendong) fog machine, Arahkan moncong mesin ketempat-tempat yang akan di fog, dan moncong mesin dengan lantai diusahakan memben tuk sudut lancip. Kemudian kran larutan dibuka, asap akan menyembur keluar dari moncong mesin. - Jika target sudah selesai, kran larutan ditutup kembali, hingga asap tidak lagi menyembur keluar dari moncong mesin. Matikan mesin dengan cara menutup kran bahan bakar.


2.3.4. Pemeliharaan fog machine - Bilas tangki solusi dengan solar, kemudian hidupkan mesin dan kran larutan dibuka hingga semua solar habis. Bersihkan mesin dengan serbet yang dibasahi solar. - Ambil sisa bahan bakar dan batu bateray. Simpan lah mesin di tempat yang aman. 3. HASIL 3.1. Kalibrasi - Suhu = ....... - Kelembaban = ....... - Kecepatan angin = ....... - Jarak Jangkauan asap = ....... - Tinggi asap = ....... - No Nozle yang dipakai = ....... - Pemakaian bensin = ....... - Debit solusi = ....... - Jumlah partikel per Cm2 pada masing – masing jarak = .... 3.2. Pembuatan solusi - BJ Pestisida dan pelarut = ..... - Kadar Tenchnical grade = ..... - Volume pestisida = ..... - Volume pelarut = ..... - Volume solusi = ..... - Kadar solusi = ..... 3.3. Pelaksanaan fogging - Luas lahan yang di fog = ..... - Jumlah solusi yang dipakai = ..... - Jumlah Pestisida yang dipakai = ..... - Jumlah solar yang dipakai = ..... - Waktu yang digunakan = ..... - Ketepatan Dosis = .....


11

Ovitrap

1. TEORI Kepadatan Ae. aegypty yang sekarang dipakai sebagai dasar berpikir adalah kepadatan jentik yang digambarkan dengan HI (House Index), CI (Container Index) dan BI (Breteu Index). Padahal indek tersebut tidak dapat dihubungkan dengan kejadian penyakit DHF (Santiyo Kirnowardoyo, 1993). Oleh karena itu perlu dicari tolok ukur lain yang sekiranya dapat dipakai sebagai indikator kepadatan A. aegyti yang dapat dihubungkan dengan DHF. Misalnya adalah ovitrap index (OI). Dasar pertimbangan pemakaian OI adalah bahwa jumlah telur yang tertangkap akan berbanding lurus dengan jumlah nyamuk betina. Jadi banyaknya telur yang didapat akan menggambarkan kepadatan nyamuk dewasa. Lain halnya dengan Indek jentik, dimana jentik dalam pertumbuhannya tergantung dari beberapa faktor diantaranya ketersediaan air, makanan, predator. Dengan demikian tidak semua jentik akan tumbuh menjadi nyamuk, sehingga kepadatan jentik tidak/kurang dapat mengambarkan kepadatan nyamuk. Disamping itu, Indek jentik yang memakai sistem single larva method, tidak bisa membedakan antara wadah yang berisi ribuan jentik dengan wadah yan berisi satu jentik. Pembuatan ovitrap didasarkan pada kenyataan bahwa Aedes suka bertelur pada wadah buatan, dimana telur tersebut diletakkan pada dinding wadah yang agak kasar dan lembab dekat muka air. Ada kecenderungan warna wadah semakin gelap semakin disukai nyamuk Aedes untuk bertelur. 2. PROSEDUR 2.1. Bahan - Kaleng susu (bekas) atau Gelas - Cat hitam - kertas wathman atau kain - Karet gelang - air 2.2. Alat - gunting pembuka kaleng - kuas - Mikroskop


3.2. Cara kerja 3.2.1. Pembuatan ovitrap - Buatlah bejana dari kaleng susu (bekas) dengan cara membuka salah satu tutupnya dengan gunt ing. Galeng susu dapat diganti dengan gelas. - Kaleng/gelas, kemudian di cat dengan warna hitam (gelap). tunggu hingga kering, - Potonglah kain/kertas wathman dengan ukuran ñ 14 x 3,5 Cm. - Masukkan kain/kertas tersebut kedalam kaleng /gelas hingga satu ujungnya hampir menyentuh dasar kaleng. Ujung kain/kertas yang lain dijepit atau diikat pada sisi atas kaleng, dengan menggunakan karet gelang. - Kaleng diisi dengan air bersih sebanyak ñ 1/3 volume kaleng. 3.2.2. Pemasangan ovitrap - Pasanglah ovitrap pada tempat-tempat yang disu kai nyamuk (misal: dibawah pot bunga, disela-sela mebelair / perabot, dekat kontainer / wadah air, kamar mandi, dsb.). Sebaiknya ovitrap dipasang pada bagian dalam dan luar bangunan atau rumah. Hindarkan dari kemungkinan terjadinya tumpah, karena binatang piaraan atau anak-anak. - Biarkan ovitrap selama seminggu, kemudian kain kertas diambil dan diganti dengan yang baru. Demikian juga airnya, perlu diganti atau ditambah sehingga volume tetap ñ 1/3 isi kaleng. - Lakukan hal yang sama pada minggu berikutnya. Demikian seterusnya hingga waktu penelitian selesai. - Kertas/kain yang telah diambil, kemudian diperiksa dibawah mikroskop dan dihitung jumlah telurnya 3. HASIL 3.1. Pembuatan Ovitrap


3.2. Pemasangan ovitrap DAFTAR : Hasil pemasangan ovitrap dan pemeriksaan /perhitungan telur nyamuk Tgl......…… Lokasi ..........(L/D)

Jml telur minggu ke..

No. Lokasi

1 2 3 4 ..

Jml X

1 2 3

Jml positif Prosen positif Keterangan : - L/D = Lokasi pemasangan pada bagian Luar/dalam - jumlah positip = jumlah ovitrap yang ada telurnya - Prosen positip = Prosentasi ovitrap yang ada telurnya


12

Kadar Garam

1. TEORI Salah satu vektor malaria adalah nyamuk Anopheles sundaicus. Nyamuk ini dalam berkembang biaknya menyukai pada air payau dengan kadar garam 1,2 - 1,8 % dan tidak suka pada air dengan kadar garam lebih dari 4 %. Namun demikian pada air dengan kadar garam 0,4 % masih dijumpai adanya larva nyamuk jenis ini. Untuk tujuan control dan monitoring populasi nyamuk Anopheles sundaicus ini, terutama untuk pengendalian dengan cara manipulasi kadar garam dalam air, maka perlu diadakan pengukuran-pengukuran secara kontinyu. Pengukuran kadar garam, umumnya digunakan cara titrasi, atau dengan salinometer atau dengan refraktometer. 2. PROSEDUR 2.1. Alat - gelas ukur 250 ml - buret dan statip - erlenmyer - corong - beaker glass - pipet ukur & tetes - refraktometer range 1-50 per mil - salinometer/hydrometer range 1-50 per mil 2.2. Bahan - AgNO3 2,96 % - K2Cr2O4 10 % - aquades - air contoh (sampel) 2.3. Cara kerja 2.3.1. Pemeriksaan dengan salinometer


- air sampel dimasukan pada gelas ukur sebanyak 250 ml - celupkan/masukan pangkal salinometer pada air tersebut hingga mengapung - baca skala kadar garamnya tepat pada garis muka air (batas basah yang tertinggi). - untuk pemeriksaan dilapangan, salinometer dapat langsung dicelupkan pada badan air hingga terapung, kemudian baca skalanya 2.3.2. Pemeriksaan dengan refraktometer - Teteskan 1 ml air sampel pada refraktometer, secara merata dan jangan ada gelembung. - arahkan lensa refraktometer ke sumber cahaya, dan okuler didepan mata - periksa skala yang berhimpit dengan garis batas (warna biru) - baca kadar garamnya, pada skala yang berimpit tersebut 2.3.3. Pemeriksaan dengan cara Titrasi - ambil 1 ml air sampel dan masukan pada erlenmeyer. - tambahkan 1 tetes K2Cr2O4 - Titrasi dengan AgNO3 sampai terjadi perubahan warna menjadi merah jambu. - catat volume AgNO3 yang digunakan (Volume AgNO3 = per mil). 3. HASIL 3.1. Pemeriksaan dengan salinometer Kadar garam = .......... 3.2. Pemeriksaan dengan refaktometer Kadar garam = .......... 3.3. Pemeriksaan dengan cara Titrasi Volume AgNO3 = ......... Kadar garam = .........


13

Bio assay Jentik

1. TEORI Dasar kerja dari uji ini adalah : Memasukkan jentik dari spesies tertentu yang berasal dari koloni laboratorium, dalam jangka waktu tertentu kedalam sarang nyamuk atau container yang telah diberi larvasida. Maksud dan tujuannya adalah mengadakan Penilaian langsung dengan segera terhadap efek daya racun pada sarang nyamuk atau container yang telah diberi racun jentik. 2. PROSEDUR 2.1. Bahan - Jentik stadium III dan IV yang sehat dari jenis tertentu. - pellete - air - larvasida 2.2. Alat - container - Silinder dengan ukuran panjang 20cm garis tengah 10cm, terbuat dari

kawat kecil dibatasi dinding kain kasa halus. Silinder diberi pelampung / gantungan.

- Pipet kecil untuk jentik. - Cidukan atau saringan jentik terbuat dari kain kasa halus. - Termometer air. 2.3. Cara kerja - Masukkan larvasida dengan dosis tertentu pada sarang nyamuk atau container. Diamkan supaya larut sempurna. - Masukkan silinder kedalam air sarang nyamuk atau container dengan posisi 13-15cm terendam dan sisanya diatas permukaan air.


- Masukkan sejumlah jentik kedalam silinder. Amati terha dap akibat-akibat yang ditimbulkan oleh larvasida selama 24 jam. - Catat dan hitung kematian jentik pada akhir pengamatan. - Sebaiknya dilakukan pengukuran temperatur air. - Interpretasi data : bila kematian kontrol > 20% test gagal, dan bila kematian jentik 100% , larvasida baik. - Kontrol menggunakan container berair tanpa larvasida. 3. HASIL

No. cage

Jumlah jentik

Jentik mati

% mati Ket.

1 2 3 …

% kematian rata-rata


14

Bio assay Kontak

1. TEORI Uji bio assay adalah : Suatu uji untuk mengetahui kekuatan atau daya bunuh insektisida baik terhadap nyamuk dewasa maupun jentik. Uji bio assay untuk nyamuk dewasa, salah satunya adalah dengan Uji bio assay kontak (bio assay sentuhan) : untuk insektisida efek residu : DDT, Malathion, fenitrothion. 2. PROSEDUR KERJA 2.1. Bahan - Nyamuk dari species tertentu. - Beberapa jenis permukaan dinding yang sudah di semprot dengan racun serangga yang bersifat residual. - Larutan air gula dan kapas. 2.2. Alat - Aspirator bengkok/sucking tube. - Kerucut bio assay/bio assay cone/conical. - Alat untuk melekatkan pada permukaan dinding. - Gelas kertas/paper cup. - Kotak nyamuk untuk nyamuk hidup. - Pengukur waktu/timer. - Hygrometer dan termometer max-min. 2.3. Cara kerja: - Tempelkan bio assay cone pada permukaan dinding yang telah disemprot. - Masukkan nyamuk-nyamuk yang sehat kedalam kerucut bio assay dengan

menggunakan aspirator sebanyak 5 ekor - Biarkan kontak sampai periode waktu yang diperlukan (standar 1 jam). - Pindahkan nyamuk-nyamuk yang masih hidup untuk masing- masing kerucut ke gelas kertas. - Simpan selama 24 jam dalam kotak nyamuk. jangan lupa diberi makan larutan air gula.


- Setelah 24 jam penyimpanan, periksa dan hitung jumlah nyamuk yang mati - Catat Kelembaban dan temperatur ruangan selama perla kuan. - Interpretasi data : Apabila % kematian kontrol > 20%, maka hasil tes

dianggap gagal. Insektisida masih dapat digolongkan baik apabila kematian (daya bunuh) antara 50%-100%.

- Kontrol ditempatkan pada permukaan tak beracun. 3. HASIL

No. cone

Jumlah Nyamuk

Nyamuk mati

% mati Ket.

1 2 3 …



15

Bio assay Tek. Uap

1. TEORI Uji bio assay adalah : Suatu uji untuk mengetahui kekuatan atau daya bunuh insektisida baik terhadap nyamuk dewasa maupun jentik. Uji bio assay untuk nyamuk dewasa, salah satunya adalah dengan Uji bio assay untuk tekanan uap / fumigan: untuk insektisida efek penguapan (fumigasi) : HCN, Fenitrothion, propoxur . 2. PROSEDUR 2.1. Bahan - Nyamuk sejenis dari spesies tertentu. - Larutan air gula dan kapas. - racun serangga /insektisida 2.2. Alat - Kurungan kecil rangka terbuat dari kawat yang di keli lingi kain kasa (cage) - Alat penyemprot dan racun serangga yang dibutuhkan. - Aspirator / Sucking tube. - Sling Hygrometter dan termometer max, min. - Paper cup. - Kotak nyamuk (untuk nyamuk hidup). 2.3. Cara kerja : - Masukkan 20 - 25 ekor nyamuk kedalam kurungan nyamuk. Nyamuk harus dipilih yang utuh dan sehat. - Gantungkan kurungan dengan jarak 50cm dari dinding, dengan tinggi yang

berbeda-beda. Yang tertinggi 30cm dari langit-langit. - Semprotkan/semburkan insektisida pada ruang tersebut - Biarkan kontak selama 6 jam (4-12jam). - Periksa dan hitung nyamuk yang mati. Nyamuk yang masih hidup dipindahkan ke papercup. - Simpan pada kotak nyamuk yang bersih selama 24 jam dengan diberi makan larutan air gula. - Periksa dan hitung jumlah total nyamuk yang mati.


- Catat Kelembaban dan temperatur ruangan selama perla kuan. - Interpretasi data : Insektisida masih digolongkan baik apabila angka kematian (daya bunuh) antara 50%-100%. - Kontrol ditempatkan pada ruangan yang tak beracun. 3. HASIL

No. cage

Jumlah nyamuk

Nyamuk mati

% mati Ket.

1 2 3 …



16

Bio assay Partikel

1. TEORI Uji bio assay adalah : Suatu uji untuk mengetahui kekuatan atau daya bunuh insektisida baik terhadap nyamuk dewasa maupun jentik. Uji bio assay untuk nyamuk dewasa, salah satunya adalah dengan Uji bio assay untuk pengasapan / pengabutan (fooging, ulv). 2. PROSEDUR 2.1. Bahan - Nyamuk sejenis dari spesies tertentu. - Larutan air gula dan kapas. - racun serangga /insektisida 2.2. Alat - Kurungan kecil rangka terbuat dari kawat yang di keli lingi kain kasa. d=10

Cm, p=20 Cm. (cage) - Alat penyemprot / fog machine - Aspirator / Sucking tube. - Sling Hygrometter dan termometer max, min. - Paper cup. - Kotak nyamuk (untuk nyamuk hidup). 2.3. Cara kerja: - Masukkan 20 ekor nyamuk kedalam kurungan nyamuk. Pilihlah nyamuk

yang utuh dan sehat. - Gantungkan kurungan kecil yang telah berisi nyamuk pada ruangan yang

akan difooging. - Semprot/semburkan pada ruangan dimaksud dengan insekti sida, kemudian

tutup semua pintu dan jendela. Biarkan kurungan yang berisi nyamuk selama 1 (satu) jam.

- Hitung nyamuk yang mati. Sedangkan nyamuk yang masih hidup pindahkan dan simpan pada tempat yang bersih selama 24jam. Jangan lupa diberi makan air gula.

- Hitung jumlah total nyamuk yang mati.


- Interpretasi data : Insektisida masih digolongkan baik, apabila angka kematian (daya bunuh) 50%-100%.

- Kontrol ditempatkan pada ruangan yang tak beracun. 3. HASIL

No. cage

Jumlah nyamuk

Nyamuk mati

% mati Ket.

1 2 3 …



17 Termit Control

1. TEORI Rayap merupakan serangga penggangu yang dapat merugikan, utamanya dalam bidang kontruksi. Dari sudut kesehatan lingkungan memang tidak berkaitan secara nyata. Namun perlu diketahui, bahwa salah satu bidang yang merupakan aspek perhatian kesehatan lingkungan adalah perumahan. Dimana salah satu syarat perumahan sehat, adalah terpenuhinya persyaratan konstruksi yang aman dan kuat. Pengendalian rapap dalam bidang perumahan / gedung, bila ditilik dari waktu pengendaliannya, dapat dibedakan menjadi sebelum dibangun (pra konstruksi) dan sesudah dibangun (pasca konstruksi). Ada beberapa teknik pengendalian rayap yang lazim dipakai yakni spraying (penyemprotan), soil injecting (penyuntikan tanah), Brushing (pelaburan), cold bath /dipping (perendaman) dan glue (lem). 2. PROSEDUR KERJA 2.1. Alat - Sprayer / spray can - Power sprayer - Soil injector - Bor listrik - Kuas / roll paint - Ember - Gelas penakar - Cetok 2.2. Bahan - Termitisida - Pelarut / air - Semen warna 2.3. Cara Kerja 2.3.1. Pra konstruksi


- Buat larutan termitisida dengan konsentrasi sesuai aturan dengan jumlah sesuai perhitungan. Misal : bila digunakan dragnet 380ec, pengenceranya adalah 12,5 ml /liter air.

- Larutan dimasukkan ke spraycan atau ember power sprayer. - Pompa atau hidupkan mesin power sprayer. - Semprot semua permukaan lubang galian pondasi, permukaan pondasi,

tanah urugan pondasi, permukaan tanah bawah lantai. - Buatlah parit sepanjang pondasi bagian luar gedung dengan lebar dan

kedalaman 30 Cm. Jarak parit dengan pondasi tidak lebih dari 2 m. Kemudian seluruh permukaan parit disemprot. Selanjutnya ditutup dengan tanah yang sudah disemprot juga.

2.3.2. Pasca konstruksi - Buat larutan termitisida dengan konsentrasi sesuai aturan dengan jumlah

sesuai perhitungan. Misal : bila digunakan dragnet 380ec, pengenceranya adalah 12,5 ml /liter air.

- Larutan dimasukkan ke spraycan atau ember power sprayer. - Pompa atau hidupkan mesin power sprayer. - Buatlah lubang (di bor) dengan diameter 15 mm sepanjang sisi pondasi

bangunan. Jarak lubang dengan dinding / pondasi 15-30 Cm. Kedalaman lungan 50 –60 Cm dengan interval lubang 30 Cm.

- Untuk bagian teras / luar bangunan, buatlah parit sepanjang pondasi dengan lebar dan kedalaman 30 Cm. Jarak parit dengan pondasi 30 Cm. Pada dasar parit dibuat lubang (di bor) dengan kedalaman seperti diatas.

- Lakukan penyuntikan pada masing – masing lubang tersebut dengan larutan pestisida sebanyak 2 liter, menggunakan soil injector. Tutuplah lubang dimaksud dengan adukan semen yang warnanya telah disesuaikan.

- Lakukan penyemprotan pada seluruh permukaan dinding parit, kemudian diurug dengan tanah yang sudah disemprot.

2.3.3. Pelaburan - Buat larutan termitisida dengan konsentrasi sesuai aturan dengan jumlah

sesuai perhitungan. Misal : bila digunakan dragnet 380ec, pengenceranya adalah 12,5 ml /liter solar (air, minyak tanah).

- Lakukan pelaburan menggunakan kuas cat ke seluruh permukaan kayu / bahan yang akan di awetkan / di anti rayap. Sebaiknya bukan kayu yang masih mentah (belum diolah)

2.3.4. Perendaman - Buat larutan termitisida dengan konsentrasi sesuai aturan dengan jumlah

sesuai perhitungan. Misal : bila digunakan dragnet 380ec, pengenceranya adalah 12,5 ml /liter air. Retensi 2,2 kg/m3 kayu


- Rendamlah sejumlah kayu sesuai dengan kapasitas / retensi, selama 2 jam atau sesuai dengan petunjuk masing-masing termitisida.

- Bila menginginkan waktu perendaman yang lebih singkat (minimal 15 menit), konsentrasi larutan dapat ditingkatkan 2 – 5 kali. Berhati –hatilah dengan konsentrasi yang sangat beracun ini.

2.3.5. Glue Termitisida dicampurkan dengan lem yang dipakai untuk pembuatan kayu lapis dengan dosis 12,5 gr / kg perekat. 3. HASIL Luas bangunan : ….. Jumlah lubang : ….. Luas permukaan dinding dan dasar parit : ….. Perkiraan volume tanah galian / urugan : …. Jumlah termitisida yang diperlukan : ….. Jumlah pelarut : …….. Jenis pelarut : …….


18 Uji Efikasi Pada rayap

1. TEORI

Seringkali diperlukan data tentang keunggulan suatu termitisida (pestisida), utamanya tentang daya bunuh, daya cegah dan daya tolak. Untuk keperluan ini dilakukan uji efikasi tentang efek tersebut. Belum terdapat metode yang baku dalam pengujian ini, khususnya terhadap rayap. Akan tetapi metode yang digunakan oleh Sumitomo Chemichal, dipandang cukup bermanfaat. Adapun metode pengujian tersebut, secara rinci akan dijelaskan pada prosedur berikut. 2. PROSEDUR KERJA 2.1 Alat - Pipet tetes - Cawan petri - Gelas kimia - Gelas ukur - Pengaduk kaca - Timbangan analit - Pinset 2.2. Bahan - Kayu - Tanah - Rayap pekerja - Termitisida - Pelarut (air, aceton, solar) - Kertas saring 2.3. Cara Kerja


2.3.1. Daya Cegah (Kerusakan) - Buat larutan termitisida sesuai dengan konsentrasi yang akan diuji. Pelarut menggunakan aceton. - Potonglah kayu / bambu / rotan dengan ukuran 2 x 3 x 0,5 Cm.kemudian keringkan dalam oven. selanjutnya timbang dan catat beratnya (misal : A gram). - Celupkan kedalam larutan termitisida selama 30 detik dan tiriskan 30 detik. - Siapkan 100 gram tanah dan tebarkan merata pada cawan petri. Masukkan 220 ekor rayap pekerja. - Biarkan beberapa saat untuk pengkondisian rayap tersebut. - Masukkan potongan kayu dimaksud kedalam cawan petri yang telah terisi tanah dan rayap. - Inkubasikan selama 2 (dua) minggu pada suhu kamar. - Keringkan dalam oven, Timbang dan catat beratnya (misal : B gram) - Hitung derajat kerusakan (DK) dengan rumus : A - B DK = ------------ x 100 A - Hitung daya cegah kerusakan (DC) dengan rumus : DC = 100 % - DK - Lakukan hal yang sama terhadap kayu yang tidak dicelup (untuk kontrol) 2.3.2. Daya bunuh - Buat larutan termitisida sesuai dengan konsentrasi yang akan diuji. Pelarut menggunakan air. - Ambil 5 ml larutan termitisida tersebut dan campurkan kedalam 100 gram tanah. Masukan dan tebarkan secara merata dalam cawan petri. - Lepaskan 20 ekor rayap kedalan cawan petri. Biarkan selama 5 hari. Amati dan catat jumlah rayap yang mati. Hitung prosentase kematian rayap. - Lakukan hal yang sama pada tanah yang tidak dicampur termitisida (untuk kontrol) 2.3.3. Daya tolak - Buat larutan termitisida sesuai dengan konsentrasi yang akan diuji. Pelarut menggunakan air. - Ambil kertas saring bundar, kemudian di paruh (menjadi 2 buah setengah lingkaran). Celupkan di air bersih. Tiriskan hingga tidak menetes. - Masing – masing kertas diletakan di dasar cawan petri. Buatlah celah diantara kertas tersebut dengan lebar 5 mm.


- Kertas yang satu dilapisi tanah yang dicampur larutan termitisidan sebanyak 5 gram tanah. Kertas yang lain dilapisi tanah yang tidak dicampur termitisida. - Atur sedemikian, agar terdapat celah 5 mm dan ketebalan permukaan tanahnya sama. - Lepaskan 20 ekor rayap pada celah dimaksud. Amati dan catat jumlah rayap yang berada pada tanah yang tidak dicampur termitisida (menghindar dari tanah yang dicampur termitisida). Hitung pula prosentasenya. 4. HASIL 4.1. Daya cegah Konsentrasi termitisida yang diuji = …. % Berat sebelum (A) = …… gram Berat setelah uji (B) = ….. gram DK = ….. DC = ….. 4.2. Daya bunuh Konsentrasi termitisida yang diuji = …. % Jumlah rayap yang mati = …. Ekor Jumlah rayap yang dilepaskan = 20 ekor Prosen tase kematian rayap = …… 4.3. Daya tolak Konsentrasi termitisida yang diuji = …. % Jumlah rayap yang dilepaskan = …… Jumlah rayap yang menghindar = …. Prosentase rayap yang menghindar = ….


19 Sterilisasi Ruangan

1. TEORI Di rumah sakit, ruang operasi, ICU dan ruang rawat inap seringkali memerlukan persyaratan sanitasi yang sangat ketat Hal demikian berkaitan dengan sensitivitas & kerentanan penderita atau tingkat keganasan penularan penyakit. Persyaratan sanitasi yang ketat tersebut antara lain adalah dengan kondisi ruangan yang steril bebas dari jasad renik patogenik. Untuk mencapai kondisi ini tidak cukup hanya dengan disinfeksi dengan bahan-bahan desinfektan biasa, akan tetapi diperlukan germisida yang mempunyai spektrum luas. 2. PROSEDUR KERJA 2.1. Alat - Electric Fog generator (sistem basah) - Gelas penakar - Pengaduk - Corong bersaring - APD (pakaian kerja, masker, dll) 2.2. Bahan - Germisida (formalin, dll) - Parfum - Pelarut (air, alkohol, dll) - Koran bekas 2.3. Cara Kerja - Tutup semua jendela / ventilasi/ pintu dan bagian yang lubang lainnya. Lubang ventilasi dapat ditutup dengan koran bekas. - Kembangkan (buka) kain gordyn yang terlipat. - Hitung volume ruangan dan jumlah larutan germisida yang dibutuhkan. - Buat larutan sesuai dengan konsentrasi dan jumlah yang ditentukan (misal : formalin 5 %). Tambahkan parfum yang sesuai. - Larutan dimasukan pada tangki solusi fog generator, menggunakan corong bersaring.


- Pasang kabel pada jaringan PLN atau sumber listrik. - Arahkan moncong fogger ke tempat sasaran dengan posisi sedikit mendongak. Bila ukuran ruangannya kecil Fog generator ditempatkan diluar ruangan, cukup moncongnya saja yang diarahkan kedalam ruangan melalui pintu yang sedikit dibuka. - Hidupkan mesin (on) sampai dengan ruangan penuh kabut, kemudian matikan (off). - Biarkan selama periode kontak (2 – 4 jam, sesuai dengan jenis germisida yang dipakai). - Pasang label / segel bertuliskan “Ruang steril” pada pintu masuk 3. HASIL Nama dan jenis germisida yang digunakan : ……… Dosis : …. Konsentrasi yang digunakan : …. Volume ruangan : ……. Jumlah larutan yang digunakan : ….. Periode kontak : ……


20 Fumigasi

1. TEORI 2. PROSEDUR KERJA 2.1. Alat - Tin opener / Can opener - Ember / wadah - Gelas penakar. - Pot belerang - Alat komunikasi - Senter - APD (masker, sarung tangan, dll) - Aspiratir pump & detector tube 2.2. Bahan - Fumigan (HCN, Methyl bromide, Phosphin, belerang, dll). - Kapas - Spiritus - Korek api - Koran bekas / kertas penutup - Plester / selotype - Kapur atau vaselin 2.3. Cara Kerja - Buka semua pintu / lubang yang ada dalam ruangan Catat (ingat-ingat) dan tentukan jalur-jalan kerja. - Lapisi benda-benda logam dengan vaselin / kapur (bila fumigasi dengan belerang). - Tentukan titik perletakan fumigan sesuai dengan jumlah yang telah diperhitungkan - Tutup semua lubang yang berhubungan dengan udara luar. - Letakan wadah / pot belerang pada titik/tempat yang telah ditentukan.


- Masukan belerang yang telah dipecah dengan ukuran ± 2 Cm3, pada pot belerang bagian atas atau tengah. Pot bagian bawah atau pinggir diisi air. - Siramlah belerang dengan spirtus, dan kemudian aduk hingga merata. Pasang sumbu dari kapas. - Segera pakai APD, khususnya masker dan pasang canister yang sesuai. - Nyalakan sumbu kapas menggunakan korek api. - Bila menggunakan methyl bromid, tuangkan pada wadah yang telah dipersiapkan sesuai jumlah dan tempat yang ditentukan - Bila menggunakan HCN, segera buka kaleng HCN menggunakan tin / can opener dan tebarkan sesuai jumlah dan tempat yang telah ditentukan. - Diamkan selama waktu kontak (sesuai jenis dan dosis fumigan). - Buka semua tutup lubang yang berhubungan dengan udara luar. Hidupkan mesin blower. Perhatikan arah angin. - Periksa kadar / konsentrasi racun dengan detector test tube. Bila konsentrasi racun sudah NOL, segera kumpulkan bangkai tikus dan bersihkan. 3. HASIL Volume ruang : …. Jenis fumigan : …… Jumlah fumigan : …. Dosis yang dipakai : ….. Waktu kontak : ….. Jumlah wadah yang diperlukan : ….. Jumlah tikus : …..


21 Misting

5. TEORI 6. PROSEDUR KERJA 6.1. Alat 6.2. Bahan 6.3. Cara Kerja 7. HASIL


22 Dusting



23 Peracikan Pestisida



18 Alat AplikasiPestisida



KEPUSTAKAAN

Rentokil, (tt), “Technical hand book, pest control”, Rentokill. Naval, (1967), “Medical entomologi”, Naval medical school, Namru-2. Sastroutomo, SS, (1992), “Pestisida, dasar-dasar dan dampak

penggunaannya”, Gramedia pustaka utama, Jakarta.. Djasio, dkk. (1985), “Pedoman bidang studi pemberantasan serangga dan

binatang pengganggu untuk APK-TS”, Pusdiknakes. Depkes. RI Subdit Pestisida, (1984), “Pengenalan dan penatalaksanaan keracunan

pestisida”, Ditjen. PPM & PLP, Jakarta. Sharey, HH & Kelvey, John J Mc, (1977), “Chemical control insect

behaviour, theory and aplication”, John Willey & son’s. WHO, (1972), “Vector control in international health”, WHO Geneva. Beroza, Morton, (1970), “Chemical controlling insect behaviour”, Academic

press, New York. Kilgore, WW & Doutt, RL. (1969), “Pest control, biological, phisical and

selected chemical methode”, Academic press, New York. Priyambodo, Swastiko, (19..), “Pengendalian tikus”

praktek pvbp baru

Documents