laporan praktikum patologi klinik 2013
TRANSCRIPT
LAPORAN PRAKTIKUM PATOLOGI KLINIK
BLOK HEMATOIMMUNOLOGI
MATERI PRAKTIKUM I
Oleh :
Kelompok A.3
1. Diptyo Ajeng Santoso G1A012060
2. Ahmad Fauzi G1A012066
3. Aida Ainul Chikmah G1A012074
4. Hanifia Ulfa Fawzia G1A012077
5. Kartika Kencana Putri G1A012079
6. Tania Paramacitra G1A012081
7. Normalisa Novrita G1A012106
Asisten :
Yefta
G1A011066
KEMENTRIAN PENDIDIKAN NASIONAL
UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN
FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU-ILMU KESEHATAN
JURUSAN KEDOKTERAN
PURWOKERTO
2014
LEMBAR PENGESAHAN
PRAKTIKUM MATERI I
Oleh :
Kelompok A.3
1. Diptyo Ajeng Santoso G1A012060
2. Ahmad Fauzi G1A012066
3. Aida Ainul Chikmah G1A012074
4. Hanifia Ulfa Fawzia G1A012077
5. Kartika Kencana Putri G1A012079
6. Tania Paramacitra G1A012081
7. Normalisa Novrita G1A012106
Disusun untuk memenuhi persyaratan mengikuti ujian praktikum Patologi Klinik
blok Hematoimmunologi pada Fakultas Kedokteran dan Ilmu-Ilmu Kesehatan
Jurusan Kedokteran Universitas Jenderal Soedirman Purwokerto
Diterima dan disahkan
Purwokerto, September 2014
Asisten
Yefta
G1A011066
BAB I
DASAR TEORI
A. Pemeriksaan Kadar Hemoglobin
Hemoglobin ditemukan hanya di sel darah merah. Molekul
hemoglobin memiliki dua bagian yaitu bagian globin dan gugus hem. Globin
merupakan suatu protein yang terbentuk dari empat rantai polipeptida yang
masing-masing berikatan dengan empat gugus nonprotein yang mengandung
besi. Setiap atom besi dapat berikatan secara reversibel dengan O2.
Hemoglobin adalah suatu pigmen yang berwarna secara alami, sehingga
berfungsi memberi warna merah pada darah dan keunguan jika mengalami
deoksigenasi. Adanya ikatan antara besi dengan O2 mengakibatkan
hemoglobin tampak kemerahan. Hemoglobin juga berfungsi untuk
mengangkut O2 dalam darah dari paru ke jaringan tubuh dan membantu
mengangkut gas CO2 dari sel jaringan kembali ke paru (Sherwood, 2011).
Menurut Murray (2009), sebuah hemoglobin mengikat satu molekul
O2 untuk tiap hem, jadi satu molekul hemoglobin dapat mengikat empat
molekul O2, tetapi hanya satu molekul CO2 yang terikat pada rantai
polipeptida globin sebagai karbamat hemoglobin (kadarnya 15% dari CO2
darah vena). Walaupun begitu, tidak terjadi kompetisi antar kedua gas
tersebut. Hemoglobin juga dapat mengembalikan karbondioksida (CO2) dan
proton dari jaringan di seluruh tubuh ke paru-paru. Selain itu, hemoglobin
bertugas menyangga ion hidrogen asam sehingga asam ini tidak banyak
menyebabkan perubahan pH darah (Sherwood, 2011).
Nilai rujukan hemoglobin menurut Dacie:
1. Dewasa laki-laki : 12,5-18,0 gr %
2. Dewasa wanita : 11,5-16,5 gr %
3. Umur 10-12 tahun : 11,5-14,5 gr %
4. Umur 3-6 tahun : 12,0-14,0 gr %
5. Umur 1 tahun : 10,5-13,5 gr %
6. Bayi >3 bulan : 9,5-13,5 gr %
7. Bayi <3 bulan : 13,5-19,5 gr %
Sedangkan, nilai normal hemoglobin menurut Hoffbrand (2013), yaitu pada
pria dewasa 13,5-17,5 g/dL dan wanita dewasa 11,5-15,5 g/dL.
B. Jumlah Leukosit
Leukosit atau sel darah putih sangat berperan penting dalam hal
perlindungan tubuh dari infeksi. Dalam bekerja sel ini bekerja sama dengan
protein respon imun, imunoglobulin, dan komplemen (Mehta and Hoffbrand,
2006).
Pemeriksaan hitung jumlah leukosit menyatakan jumlah berapa ribu
sel leukosit per-mm3 darah. Pemeriksaan dilakukan dengan menghitung sel
leukosit di dalam darah yang telah diberi suatu larutan yaitu larutan turk, yang
dapat merusak sel-sel lain selain sel leukosit. Penghitungan dilakukan dengan
menggunakan bilik hitung Neubauer Improved (NI) (Mehta and Hoffbrand,
2006).
Nilai rujukan menurut Dacie :
Leukosit (White Blood Cell)
1. Pria Dewasa : 4 – 11 ribu/mm3
2. Wanita Dewasa : 4 – 11 ribu/mm3
3. Bayi : 10 – 25 ribu/mm3
4. 1 tahun : 6 – 18 ribu/mm3
5. 12 tahun : 4,5 – 13 ribu/mm3
C. Laju Endap Darah
Laju Endap Darah (LED) adalah sebuah pengukuran seberapa cepat
sel-sel darah merah jatuh ke dasar sebuah tabung uji. Ketika pembengkakan
dan peradangan hadir, protein darah mengumpul dan menjadi lebih berat dari
biasanya. Ketika diukur, mereka mengendap dan berkumpul lebih cepat di
bagian bawah dari tabung uji. Umumnya, semakin cepat sel-sel darah turun,
lebih parah peradangan. LED adalah gambaran komposisi plasma dan
perbandingan antara eritrosit dan plasma. Darah dengan antikoagulan yang
dimasukkan ke dalam tabung bervolume kecil dan diletakkan tegak lurus
selama 1 jam akan menunjukkan pengendapan eritrosit dengan kecepatan
yang ditentukan oleh rasio permukaan perbandingan volume eritrosit (Sacher,
2004).
Laju Endap Darah merupakan tes yang sering digunakan tetapi non-
spesifik dan tes ini mengukur laju sedimentasi sel darah merah dalam plasma
selama periode 1 jam. Kecepatan tersebut terutama bergantung pada
konsentrasi protein-protein besar dalam plasma, misalnya fibrinogen dan
imunoglobulin (Hoffbrand, 2013).
Nilai rujukan menurut Dacie:
1. Pria : 0-5 mm/jam
2. Wanita : 0-7 mm/jam
Nilai rujukan menurut Westergreen:
1. Pria : 0-15 mm/jam
2. Wanita : 0-20 mm/jam
Kisaran normal pada pria adalah 1-5 mm/jam dan pada wanita 5-
15mm/jam tetapi terjadi peningkatan progresif pada usia lanjut. LED
meningkat pada berbagai peradangan sistemik dan penyakit neoplastik serta
kehamilan. Nilai yang tinggi (>100 mm/jam) memiliki nilai prediksi 90%
untuk penyakit serius termasuk infeksi, penyakit kolagen vaskular, atau
keganasan (terutama mieloma). Peningkatan LED berkaitan dengan
pembentukan rouleaux yang mencolok sel darah merah dalam apusan darah
tepi. Perubahan pada LED dapat digunakan untuk memantau respons
terhadap pengobatan (Hoffbrand, 2013).
D. Membuat Preparat Darah Hapus
Darah manusia adalah cairan jaringan tubuh. Fungsi utamanya adalah
mengangkut oksigen yang diperlukan oleh sel-sel di seluruh tubuh. Darah
juga menyuplai jaringan tubuh dengan nutrisi, mengangkut zat-zat sisa
metabolisme, dan mengandung berbagai bahan penyusun sistem imun yang
bertujuan mempertahankan tubuh dari berbagai penyakit. Hormon-hormon
dari sistem endokrin juga diedarkan melalui darah. Darah terdiri daripada
beberapa jenis korpuskula yang membentuk 45% bagian dari darah. Bagian
55% yang lain berupa cairan kekuningan yang membentuk medium cairan
darah yang disebut plasma darah. Darah manusia bewarna merah, antara
merah terang apabila kaya oksigen sampai merah tua apabila kekurangan
oksigen. Warna merah pada darah disebabkan oleh hemoglobin, protein
pernapasan (respiratory protein) yang mengandung besi dalam bentuk heme,
yang merupakan tempat terikatnya molekul-molekul oksigen.
Terdapat berbagai cara untuk membuat suatu preparat. Pembuatan
preparat merupakan upaya untuk mempermudah pengamatan suatu bahan.
Sediaan apusan merupakan pembuatan preparat dengan menggunkan bahan
berupa zat cair. Fungsi pembuatan preparat apusan adalah untuk mengamati
sel-sel dalam cairan tubuh, misalnya pada darah.
Sedian apus darah tepi (A peripheral blood smear / peripheral blood
film) merupakan slide untuk mikroskop (kaca objek) yang pada salah satu
sisinya di lapisi dengan lapisan tipis darah vena yang diwarnai dengan
pewarnaan dan diperiksa di bawah/ dengan menggunakan mikroskop.
Pemeriksaan yang digunakan pulasan menurut prinsip Romanowsky, yaitu
dengan menggunakan pewarnaan Wright, Giemsa, dan pulasan paduan May
Grunwald & Giemsa.
E. Pemeriksaan Golongan Darah
Tipe darah dikelompokkan berdasarkan ada atau tidaknya antigen
spesifik pada permukaan membran plasma sel darah merah (SDM). Antigen
permukaan ini berupa glikoprotein membran integral atau glikolipid yang
memiliki perbedaan secara genetik. SDM setidaknya memiliki 50 jenis
antigen surface, namun ada tiga antigen surface yang utama yaitu A, B, dan
Rh (atau D). Berdasarkan antigen surface pada SDM, darah dibagi menjadi
empat tipe (Martini, 2012):
1. Tipe A, darah hanya memiliki antigen surface A
2. Tipe B, darah hanya memiliki antigen surface B
3. Tipe AB, memiliki antigen surface A dan B
4. Tipe O, tidak memiliki kedua antigen tersebut
Sedangkan Rh positif (Rh+) mengindikasikan adanya antigen surface
Rh, umumnya disebut faktor Rh. Ketidakadaan antigen ini disebut Rh negatif
(Rh-). Seperti halnya penyebaran antigen surface A dan B, perbedaan tipe Rh
juga umumnya berdasarkan kelompok etnik dan penyebaran wilayah
(Martini, 2012).
Gambar 1. Pada reaksi silang, antibodi bereaksi dengan antigen targetnya
menyebabkan aglutinasi dan hemolisis pada sel darah merah. (Sumber:
Martini. 2012. Fundamentals of anatomy & physiology 9th edition.)
Sistem imun tubuh tidak merespon antigen surface pada darah, namun
plasma mengandung antibodi yang disebut agglutinogen, yang akan
menyerang antigen SDM asing. Saat antibodi tersebut menyerang SDM asing
akan menggumpal (Martini, 2012).
Individu dengan golongan darah A, plasmanya mengandung anti-B
antibodi, yang akan menyerang darah dengan antigen B. Jika golongan darah
adalah B, maka plasma mengandung anti-A antibodi. Pada individu dengan
SDM yang tidak memiliki antigen surface baik A maupun B, plasmanya
mengandung anti-A dan anti-B antibodi. Sedangkan pada individu yang
memiliki antigen surface A dan B, plasmanya tidak mengandung anti-A
maupun anti-B antibodi. Keberadaan antigen – antibodi ini mengakibatkan
tidak boleh adanya transfusi silang antar individu berbeda tipe darah karena
plasma darah dalam tubuh resipien akan menyebabkan SDM asing
mengalami aglutinasi (Martini, 2012).
Sedangkan menurut Bain, golongan darah sistem ABO merupakan
sebuah sistem pengelompokan dengan alel A dan B pada lokus ABO di 9q34
yang mengkode secara spesifik glycosytranferase yang memodifikasi
prekursor disakarida, prekursor ini merupakan bagian dari glikoprotein atau
glikolipid yang saat tidak dimodifikasi akan mengekspresikan antigen H. Alel
O tidak mengkode transferase fungsional, sehingga pada homozigot O
antigen H akan terekspresikan, namun tidak pada antigen A dan B. Antigen
ABO terdapat pada semua sel darah dan banyak sel tubuh lainnya (Bain,
2003).
BAB II
METODE PRAKTIKUM
A. Alat dan Bahan
1. Pemeriksaan Hemoglobin Metode Sahli
Alat:
a. Alat untuk mengambil darah vena atau kapiler.
b. Hemometer Sahli, terdiri dari :
i) Tabung pengencer panjang 12 cm, dinding bergaris mulai angka 2
(bawah) s/d 22 (atas)
ii) Tabung standart Hb.
iii)Pipet Hb dengan pipet karet panjang 12,5 terdapat angka 20 ul.
iv)Pipet HCL.
v) Botol tempat aquadest dan HCL 0,1 N.
vi)Batang pengaduk ( dari kaca )
Bahan :
a. Sample darah (whole blood)
b. HCl 0,1 N
2. Pemeriksaan LED
Alat :
a. Tabung Westergreen.
b. Rak Westergreen.
Bahan :
a. Larutan Natrium Sitrat 3,8 %.
b. Darah EDTA.
3. Hitung Jumlah Leukosit
Alat :
Hemositometer :
a. Pipet Leukosit
- Didalamnya terdapat bola berwarna putih.
- Mempunyai garis 0,5 – 1 – 11.
Gambar :
b. Pipet Eritrosit
c. Bilik Hitung
Bilik hitung terbaik adalah bilik hitung Neubauer Improved karena
mempunyai daerah perhitungan yang luas.
Luas seluruh bilik = 3 x 3 mm2.
Didalam bilik terdapat :
i) Kotak besar : 1 x 1 mm2.
ii) Kotak sedang ada 2 macam :
iii) Ditengah : 1/5 x 1/5 mm2.
iv) Di empat sudut : ¼ x ¼ mm2.
v) Kotak kecil : 1/20 x 1/20 mm2.
vi) Tinggi / dalam : 0,1 mm.
vii) Kotak sedang : W : Leukosit ( 1,3,7,9 ) : 14
x14
mm2.
R : Eritrosit ( 5 ) : 15
x15
mm2.
d. Kaca penutup
e. Mikroskop
Bahan :
a. Larutan Turk terdiri dari :
i) Gentian Violet 1 % : 1 ml.
ii) Asam Acetat Glacial : 1 ml.
iii) Aquadest ad : 100 ml.
b. Darah vena atau darah kapiler.
4. Preparat Darah Apus
Alat :
a. Obyek glass yang bersih.
b. Spreader / penggeser.
c. Pipet darah dan pengaduk.
d. Bak pengecatan.
e. Bak pengeringan.
f. Timer.
g. Gelas ukur.
Bahan :
a. Giemsa.
b. larutan penyangga pH 6,4 atau dengan aquadest pH 6,4.
c. Methanol ( 90 % ) untuk fiksasi
d. Darah vena atau kapiler
5. Golongan Darah
Alat :
a. Objek Glass
b. Pipet
Bahan :
a. Serum Anti A
b. Serum Anti B
c. Serum Anti A dan Anti B
B. Cara Kerja
1. Pemeriksaan Hemoglobin Metode Sahli
a. Mengisi tabung pengencer dengan HCL 0.1 N sampai angka 2
b. Menghisap darah dengan pipet Hb sampai angka 20 mikroliter dan
jangan sampai ada gelembung udara yang ikut terhisap.
c. Menghapus darah pada ujung pipet.
d. Menuangkan darah ke dalamn tabung pengencer lalu membilas dengan
HCL apabila masih ada darah dalam pipet.
e. Mencatat waktu.
f. Menambahkan aquadest tetes demi tetes lalu mengaduk dengan batang
kaca pengaduk.
g. Membandingkan larutan dalam tabung pengencer dengan warna larutan
standart.
h. Bila warnanya sudah sama, penambahan aquadest dihentikan.
i. Membaca kadar Hb pada skala yang ada di tabung pengencer / gr / 100
ml darah.
2. Pemeriksaan Laju Endap Darah
a. Mengisaplah dalam semprit steril 50 ml lar natrium sitrat 3,8 %,
masukan dalam tabung.
b. Mengisap 200 ml darah dengan pipet, masukan tabung, campur dengan
Na sitrat 3,8%, sehingga mendapatkan 200 ml campuran.
c. Mengisap darah tersebut ke dalam pipet Westergreen sampai garis
bertanda 0 mm, kemudian biarkan pipet itu dalam keadaan tegak lurus
dalam rak Westergreen selama 30 menit.
d. Membaca tingginya lapisan plasma dg milimeter dan laporkanlah angka
itu sebagai laju endap darah.
3. Hitung Jumlah Leukosit
a. Mencari bilik hitung dengan mikroskop, cari kotak sedang dipojok
ujung bilik hitung.
b. Menghisap darah dengan pipet leukosit sampai angka 1 ( pengenceran =
10 kali ) atau sampai 0,5 ( pengenceran = 20 kali ).
c. Membersihkan darah yang melekat pada ujung pipet dengan tissue
d. Kemudian dengan ujung pipet yang sama menghisap larutan Turk
sampai garis tanda 11.
e. Memastikn tidak ada gelembung udara
f. Mengangkatlah pipet dari cairan tutup ujung pipet dengan ujung jari
lalu lepaskan karet penghisap.
g. Mengocok dengan arah horizontal selama 15 – 30 detik.
Gambar :
h. Membuang 3 tetesan yang pertama.
i. Menuang pada bilik hitung yang telah ditutup dengan kaca penutup dan
diletakan di mikroskop.
Gambar :
j. Melakukan penghitungan sel leukosit dengan pembesaran obyektif 10x
atau 40x.
Gambar :
Perhitungan :
Jumlah Leukosit = Jumlah leukosit x 16 x 10 (tinggi bilik hitung) x 20
(pengenceran)
Jumlah kotak
4. Preparat Darah Apus
a. Mengambil obyek glass yang bersih, letakan 1 tetes darah (tidak
melebihi 2 mm) disisi kanan.
b. Menyentuh tetesan darah dengan speader, darah akan melebar
sepanjang spreader.
c. Mendorong spreader ke arah kiri dengan sudut 450, lalu keringkan.
d. Mengamati preparat baik bila :
i) Tipis
ii) Rata
iii) Tidak terputus-putus
iv) Ekor tidak robek
v) Bentuk seperti peluru
e. Memfiksasi dengan methanol 90% selama 10 menit.
f. Membuat larutan Giemsa kerja dari Giemsa stock dan buffer Sorensen
dengan perbandingan 1: 9 untuk buffernya. Buat setiap hari.
g. Menggenangi preparat yang telah dicat dengan larutan Giemsa selama
20 menit.
h. Membilas dengan air yang mengalir.
i. Mengeringkan preparat.
j. Mengolesi lacquer pada preparat
5. Golongan darah
a. Membersihkan obyek glass.
b. Meneteskan anti a, anti b, dan anti d pada obyek glass pada tempat yang
berbeda, masing-asing 1 tetes.
c. Masing-masing anti a, anti b, anti d, ditetesi darah sebanyak 1 tetes.
d. Mengaduk, perhatikan adanya aglutinasi.
BAB III
HASIL
A. Pemeriksaan Kadar Hemoglobin
Pada kegiatan praktikum Patologi Klinik 1 oleh kelompok A3 telah
dilakukan uji sampel kepada probanus dengan data sebagai berikut :
Nama : Normalisa Novrita
Jenis kelamin : Wanita
Golongan Usia : Dewasa
Dari kegiatan praktikum yang telah dilakukan diperoleh hasil kadar
hemoglobin pasien berada di bawah nilai rujukan untuk wanita dewasa. Nilai
rujukan untuk wanita dewasa berada dalam kisaran 11,5 – 16,5 gr %,
sedangkan kadar hemoglobin pasien sebesar 9 g%. Berdasarkan teori yang
ada dapat dicurigai bahwa probanus kekurangan kadar hemoglobin atau
menderita anemia ringan.
Nilai rujukan menurut Dacie :
- Dewasa laki – laki : 12,5 – 18,0 gr %
- Dewasa wanita : 11,5 – 16,5 gr %
B. Jumlah Leukosit
Dari pemeriksaan yang telah dilakukan terhadap
darah probandus, disapatkan hasil :
Jumlah leukosit : Jumlah leukosit x 16 x 10
(tinggi bilik hitung) x 10
Jumlah kotak
: 67/8 x 16 x 10 x 10
: 13.400 / mm3
C. Laju Endap Darah
Gambar 2. Hasil Laju Endap Darah yang telah dilakukan
Dari pemeriksaan laju endap darah yang sudah dilakukan, didapatkan
hasil 5mm/jam.
D. Membuat Preparat Darah Hapus
Gambar 3. Hasil preparat hapus yang sudah dilakukan.
Dari hasil praktikum yang telah dilakukan, mendapatkan hasil bahwa
apusan yang telah dibuat itu tipis, kurang rata, tidak putus-putus, ekor sedikit
robek dan bentuk seperti peluru. Dari hasil tersebut dikatakan preparat darah
apusan kurang baik.
E. Pemeriksaan Golongan Darah
Gambar 4. Pemeriksaan Golongan darah menggunakan larutan anti A,
larutan anti B, larutan anti D.
Dengan demikian golongan darah probandus adalah A dan memiliki resus
(+).
Anti A Anti B Anti D
+ - +
BAB IV
PEMBAHASAN
A. Pemeriksaan Kadar Hemoglobin
Pemeriksaan hemoglobin pada dasarnya terdapat beberapa metode
yang dapat dilakukan. Diantaranya adalah metode Sahli , metode ini adalah
metode yang digunakan pada praktikum patologiklinik yang baru
dilaksanakan.
Metode yang digunakan pada praktikum kali ini menggunakan HCL
0,1 N yang dicampurkan dengan darah pada tabung pengencer yang ditetesi
dengan aquadest hingga warnanya berubah sama dengan tabung standart
untuk warna Hb. Pada prinsipnya perubahan warna ini terjadi akibat
perubahan Hb menjadi asam hematin karena dicampurkan dengan HCL 0,1
N. Setelah warnanya sama dengan tabung standart kita harus membaca kadar
Hb dengan skala yang tertera pada tabung pengencer dengan satuan /gr/100
ml darah.
Pada praktikum kali ini, darah probandus menunjukan kadar Hb
sebesar 9%, dimana pada kadar hemoglobin normal pada wanita dewasa
sebesar 11,5 – 16,5 % . Kadar Hb yang rendah pada probandus bisa terbilang
kurang, dimana bisa menjadi gejala dari anemia. Tinggi rendahnya Hb dapat
disebabkan oleh banyak hal diantaranya adalah kekurangan vitamin dan
mineral, terjadi perdarahan, ketidaksamaan hormon, terjadi gangguan pada
organ limfa, atau mengonsumsi obat-obatan.
Untuk batas hemoglobin setiap usia maupun jenis kelamin memiliki
batas normalnya masing-masing(WHO, 2002).
Kelompok umur Batas hemoglobin (gr/dl)
Anak 6 bulan – 6 tahun 11,0
Anak 6 tahun – 14 tahun 12,0
Pria dewasa 13,0
Wanita dewasa 11,0
Ibu hamil 12,0
Dalam perhitungan kadar hemoglobin menggunakan Metode Sahli
dapat terjadi beberapa kesalahan, karena menggunakan metode ini tingkat
kesalahan dalam melakukan interpretasi sebesar 10% , penyebab kesalah
yang dapat menjadi faktor adalah sbb:
i) Keadaan alat yang kurang mendukung seperti volume pipet yang kurang
tepat atau warna tabung yang sudah pucat.
ii) Ketajaman mata yang berbeda.
iii)Intensitas sinar kurang.
iv)Terdapat gelembung udara.
v) Darah pada ujung pipet yang tidak dibersihkan.
vi)Bila menggunakan darah kapiler akan memberikan hasil yang rendah bila
dipijit saat pengeluaran.
Pada praktikum yang dilaksanakan mungkin karena perbedaan dari
ketajaman mata dan subjektifitas dari pemeriksa dalam menginterpretasikan
hasilnya.
B. Jumlah Leukosit
Pemeriksaan leukosit pada praktikum kali ini menggunakan bilik
hitung Naubauer Improved. Pada prinsip dalam metode ini menggunakan
larutan Turk yang didalamnya mengandung Gentian violet 1% (1ml), Asam
asetat glacial (1ml), Aquadest (100ml). Dimana larutan ini mematikan semua
sel dalam darah kecuali sel darah putih atau leukosit.
Dalam hasil percobaan probandus memiliki 13.400/mm3 Leukosit.
Dimana hasil tersebut melebihi batas normal yaitu 4000 – 11.000/mm3 untuk
wanita dewasa.Tinggi rendahnya jumlah leukosit bisa disebabkan beberapa
hal diantaranya adalah karena infeksi virus atau bakteri, merokok, reaksi
alergi, penyakit akut, stress, campak, penyakit peradangan akibat luka bakar ,
ruam kulit, dan kerusakan jaringan.
Tabel Batas Normal Leukosit Dalam Tubuh (Dacie)
Kelompok Nilai
Dewasa pria 4 – 11 ribu/mm3
Dewasa wanit 4 – 11 ribu/mm3
Bayi 10 – 11 ribu/mm3
Anak 1 Tahun 6 – 18 ribu/mm3
Anak 12 Tahun 4,5 – 13 ribu/mm3
Dalam perhitungan tidak selamanya akurat beberapa faktor kesalah
bisa terjadi diantaranya :
vi) Alat
ii) Reagensia
iii) Sampel
iv) Pemeriksa
Dalam praktikum kali ini , kesalahan terjadi mungkin bisa dari
pemeriksa serta alat, dimana pemeriksa kurang berpengalaman atau
subjektifitas serta alat yang kurang terawat.
C. Laju Endap Darah
Dari pemeriksaan Laju Endap Darah, didapatkan hasil 5 mm/jam.
Berdasarkan hasil tersebut, dapat disimpulkan bahwa LED yang dianalisis
adalah normal, baik menurut interpretasi Dacie ataupun Westergreen. Hasil
normal menurut Dacie bagi pria adalah 0 - 5 mm/jam, sedangkan wanita
adalah 0 - 7 mm/jam. Sedangkan hasil normal menurut Westergreen bagi pria
adalah 0 – 15 mm/jam, untuk wanita adalah 0 – 20 mm/jam.
Laju endap darah atau laju sedimentasi eritrosit adalah kecepatan
sedimentasi eritrosit dalam darah yang belum membeku, dengan satuan
mm/jam. Oleh karena itu dalam percobaan ini darah harus diberi
antikoagulans. Penting sekali untuk menaruh pipet atau tabung laju endap
darah dalam posisi tegak lurus benar, karena selisih kecil dari garis vertikal
sudah dapat berpengaruh banyak terhadap hasil laju endap darah
(Gandasoebrata, 2013).
LED merupakan uji yang tidak spesifik. LED dijumpai meningkat
selama proses inflamasi akut, infeksi akut dan kronis, kerusakan jaringan
(nekrosis), penyakit kolagen, rheumatoid, malignansi, dan kondisi stress
fisiologis (misalnya kehamilan). Nilai rujukan LED tidak spesifik karena
dipengaruhi oleh faktor fisiologis yang menyebabkan hasil tidak akurat.
D. Membuat Preparat Hapus
Langkah pertama dalam membuat preparat darah apus adalah
meletakkan satu tetes darah di sisi kanan obyek glass yang bersih, kering,
bebas debu, dan bebas lemak. Kemudian darah yang ada di obyek glass
disentuh dengan spreader dan darah akan melebar sepanjag spreader. Lalu
spreader didorong ke sebelah kiri dengan sudut antara 30 sampai 45 derajat.
Biarkan sediaan itu keing di udara (Gandasoebrata, 2013).
Sediaan apus pada obyek glass harus cepat mengering, karena kalau
sediaan apus tersebut lambat mengering umpamanya oleh hawa lembab,
sediaan tersebut akan sering mengalami perubahan morfologi eritrosit.
Supaya cepat kering, obyek glass boleh dikibas-kibaskan di udara ataupun
menggunakan kipas angin elektronik (Gandasoebrata, 2013).
Untuk membuat sediaan apus sebaiknya digunakan darah kapiler segar
atau darah vena yang telah bercampur dengan heparin atau EDTA. Jangan
pernah menggunakan darah oxalat untuk membuat sediaan apus karena
morfologi leukosit akan sangat berubah. Sudut miring yang dibentuk antara
spreader dengan obyek glass dan kecepatan menggerakkan spreader
berpengaruh terhadap tebalnya sediaan yang dibuat. Makin kecil sudut maka
makin tipis sediaan dan makin lambat menggeser maka makin tipis pula
sediaan (Gandasoebrata, 2013).
Penyebaran leukosit pada sediaan apus yang dibuat dengan cara ini
akan tidak merata, leukosit yang kecil selalu lebih banyak terdapat di tengah-
tengah, sedangkan leukosit yang besar lebih banyak terdapat di pinggir.
Semakin buruk sediaan apus yang dibuat maka semakin kurang baik
penyebaran itu (Gandasoebrata, 2013).
Adapun ciri-ciri sediaan baik menurut Gandasoebrata tahun 2013
adalah:
a. Sediaan tidak melebar sampai pinggir kaca objek.
b. Pada sediaan harus ada bagian yang cukup tipis untuk diperiksa, pada
bagian itu eritrosit terletak berdekatan tanpa bertumpukan dan tidak
menyusun gumpalan atau rouleaux.
c. Pinggir sediaan rata dan sediaan tidak boleh berlubang-lubang atau
bergaris-garis.
d. Penyebaran leukosit tidak boleh buruk, leukosit tidak boleh berhimpun
pada pinggir-pinggir atau ujung-ujung sediaan.
Preparat apusan yang dibuat dalam praktikum kali ini kurang baik
karena walaupun preparat apusan yang dibuat tipis, tidak terputus-putus, dan
tidak melebar sampai pinggir kaca objek, tetapi pada bagian ekor masih
sedikit robek dan terdapat penebalan pada ujung apusan sehingga apusan
tidak rata.
E. Pemeriksaan Golongan Darah
Cara yang terbaik untuk menetapkan golongan darah adalah dengan
melakukan penetapan aglutinogen dan penetapan aglutinin secara bersama-
sama. Dalam melakukan tes golongan darah dibutuh kan beberapa reagen
yaitu:
Keterangan :
a. Serum anti A berwarna hijau atau biru
b. Serum anti B berwarna kuning
c. Serum anti D dan AB netral atau tidak berwarna
Antiserum yang kuat biasanya memberikan hasil yang tegas dalam
waktu kurang dari satu menit, sebaiknya hasil diperiksa setelah dua menit dan
kemudian disusul dengan pemeriksaan ulangan lewat 20 menit. Jagalah
jangan sampai bahan pemeriksaan itu mengering pada obyek glass. Belilah
antiserum dari perusahaan yang dapat diandalkan dan simpanlah antiserum
tersebut sesuai dengan anjuran yang menyertainya (Gandasoebrata, 2013).
Obyek glass yang dipakai untuk memeriksa golongan darah harus
benar-benar bersih, tidak boleh ada sisa-sisa zat kimia atau darah meskipun
hanya sedikit saja. Jika terdapat pencemaran seperti itu maka bisa
menyebabkan adanya aglutinasi palsu (Gandasoebarata, 2013).
Pada praktikum kali ini didapatkan adanya penggumpalan pada serum
anti A tetapi tidak ada penggumpalan pada serum anti B. Selain itu juga
terdapat penggumpalan pada serum Rh. Jadi dapat disimpulkan golongan
darah yang diperiksa adalah A dengan Rh + (positif).
BAB IV
APLIKASI KLINIS
Leukemia
Leukemia ialah keganasan hematologic akibat proses neoplastic yang
disertai gangguan diferensiasi pad berbagai tingkatan sel induk hema[etik
sehingga terjadi ekspansi progresif dari kelompok sel ganas tersebut daklam
sumsum tulang, kemudian sel leukemia beredar secara sistemik. (Bakta,2013)
Gejala klinik leukemia akut sangat bervariasi, tetapi pada umumnya
timbul cepat, dalam beberapa hari sampai minggu, salah satunya adalah
leukostasis terjadi jika leukosit melebihi 50.000/µL. Penderita dengan
leukositosis serebral ditandai oleh sakit kepala, confusion, dan gangguan
visual. Leukostsis pulmoner ditandai oleh sesak napas, takipnea, ronchi, dan
adanya infiltrate pada foto rontgen.(Bakta,2013)
Dehidrasi
Dehidrasi adalah suatu kehilangan cairan tubuh yang berlebihan yang
disebabkan baik oleh penggantian cairan yang tidak cukup maupun karena
gangguan kesehatan. Pada kehilangan cairan tubuh G 1,5% gejalanya tidak
nampak, kelelahan muncul lebih awal dan mulut mulai kering. (Abidin,2009)
Saat terjadi dehidrasi akan terjadi peningkatan Hb karena plasma
darah berkurang sehingga darah akan menjadi kental.
Hemoglobin merupakan zat protein yang ditemukan dalam sel darah
merah, yang memberi warna merah pada darah. Hemoglobin terdiri atas zat
besi yang merupakan pembawa oksigen. Kadar hemoglobin yang tinggi
abnormal terjadi karena keadaan hemokonsentrasi akibat dehidrasi
(kehilangan cairan). Kadar hemoglobin darah yang rendah berkaitan dengan
berbagai maslah klinis (Kee, 2007)
Luka Bakar
Luka bakar adalah cedera terhadap jaringan yang disebabkan oleh
kontak dengan panas kering (api), panas lembab (uap atau cairan panas),
kimiawi (seperti, bahan-bahan korosif), barang-barang elektrik (aliran listrik
atau lampu), friksi, atau energi elektromagnetik dan radian. Luka bakar dapat
diklasifikasikan berdasarkan luas luka bakar dan derajat luka bakarnya.
Kematian karena luka bakar dapat di bagi menjadi 2 yaitu kematian cepat dan
kematian lambat. Perbedaan antara luka bakar antemortem dengan
postmortem adalah pada luka bakar antemortem terdapat tanda-tanda
intravital pada gelembung bula dan vesikula sedangkan pada luka bakar
postmortem tidak terdapat tanda tersebut. Ada tiga point utama untuk
membedakan luka bakar antemortem/postmortem, yaitu garis kemerahan,
vesikasi, dan proses perbaikan. (Dewi,2013)
Pada luka bakar <20%, biasanya mekanisme kompensasi tubuh masih
dapat mengatasinya. Luka bakar >20% dapat menimbulkan syok hipovolemik
dengan gejala yang khas.15 Luka bakar termal pada ruang tertutup dapat
menyebabkan trauma inhalasi dengan penemuan berupa sputum berwana
gelap akibat jelaga, luka bakar pada wajah, alis dan bulu hidung yang
terbakar, edema orofaring, perubahan suara seperti serak, perubahan
kesadaran, dan stridor. Pada luka bakar terjadi peningkatan katabolisme
sehingga keseimbangan protein menjadi negatif. Oleh karena itu, penderita
menjadi sangat kurus, otot mengecil dan berat badan menurun. Terjadi
hiperpireksia persisten, takikardi, hiperventilasi, dan hiperglikemi.15 Pada
luka bakar yang berat, respons imun mengalami penurunan dan dapat terjadi
bakterimia, syok septik serta kematian.5 Pada luka bakar dapat pula
ditemukan ileus paralitik. Stres atau beban faal dapat mengakibatkan tukak di
mukosa lambung atau duodenum dengan gejala sama seperti tukak peptik
yang disebut dengan tukak Curling dan dapat menyebabkan hematemesis
atau melena. (Dewi,2013)
DAFTAR PUSTAKA
Abidin, Z., & Widagdo, S. (2009). Studi Literatur Tentang Lingkungan Kerja
Fisik Perkantoran. Seminar Nasional V Teknologi Nuklir
Bain, Barbara J. 2003. A – Z Haematology. Malden: Blackwell Publishing
Bakta, I Made. 2006. Hematologi Klinik Ringkas. Jakarta : EGC
Dewi, S., & Ratna, Y. (2013). Burn injury: General Concepts and Investigation
Based on Antemortem and Postmortem of Clinical Injury. E-Jurnal
Medika Udayana, 2(3), 389-409.
Gandasoebrata, R. 2013. Penuntun Laboratorium Klinik. Jakarta: Dian Rakyat.
Hoffbrand, A. V. dan P. A. H. Moss. 2013. Kapita Selekta Hematologi. Jakarta:
EGC
Kee, Joyce LeFever. 2007. Pedoman Pemeriksaan Laboraturium & Diagnostik.
Edisi 6. Jakarta : EGC.
Martini, Frederic H. 2012. Fundamentals of Anatomy & Physiology 9th edition.
San Francisco: Benjamin Cummings
Mehta Atul & Victor Hoffbrand. 2008. At a Glance Hematologi (Edisi Kedua).
Jakarta : Penerbit Buku Kedokteran EGC
Murray, R. K., Granner, D. K. & Rodwell, V. W., 2009. Biokimia Harper. 27th
ed. Jakarta: EGC
Sacher, R. A. dan McPherson R. A., 2004. Tinjauan Klinik Hasil Pemeriksaan
Laboratorium Edisi 11. Jakarta: EGC
Sherwood, L., 2011. Fisiologi Manusia : Dari Sel ke Sistem. 6th ed. Jakarta: EGC