bta (praktikum)

7/24/2019 BTA (Praktikum)

1/7


2/7

Dr. Buchari, SpPK (Bagian Patologi Klinik FK Unsyiah) Page2

Dahak Sewaktu hari 1 (A)

Dahak pertama diambil SEWAKTU pada saat pasien berkunjung ke pusat

layanan kesehatan akan diberi pot dahak

pada saat pasien pulang untuk keperluan pengumpulan dahak pagi hariberikutnya.

Dahak Pagi (B)

Pasien mengeluarkan dahak kedua pada PAGI hari setelah bangun tidur dan

membawa contoh uji dahak ke laboratorium.

Dahak Sewaktu hari 2 (C)

Kumpulkan dahak ketiga (dahak SEWAKTU) di laboratorium pada saat pasien

kembali ke laboratorium pada hari kedua saat membawa dahak pagi (B).

2. TEMPAT PENGUMPULAN DAHAK Dahak adalah bahan yang infeksius, pada

saat berdahak aerosol/percikan dapat menulari orang yang ada disekitarnya,

karena itu tempat berdahak harus berada ditempat yang jauh dari kerumunan

orang, misalnya didepan ruang pendaftaran,ruang pemeriksaan ,ruang obat dll.

Harus diperhatikan pula arah angin pada saat berdahak, agar droplet/ percikan

dahak tidak mengenai petugas.

3. CARA PENGUMPULAN DAHAK

Persiapan Pengumpulan dahak

a. Persiapan pasien

o Pasien diberitahu bahwa uji dahak sangat bernilai untuk menentukan status

penyakitnya, karena itu anjuran pemeriksaan SPS untuk pasien baru dan SP

untuk pasien dalam pemantauan pengobatan harus dipenuhi.

o Dahak yang baik adalah yang berasal dari saluran nafas bagian bawah,

berupa lendir yang berwarna kuning kehijauan (mukopurulen). Pasien

berdahak dalam keadaan perut kosong, sebelum makan/minum dan

membersihkan rongga mulut terlebih dahulu dengan berkumur air bersih.

o Bila ada kesulitan berdahak pasien harus diberi obat ekspektoran yang

dapat merangsang pengeluaran dahak dan diminum pada malam sebelum

mengeluarkan dahak. Olahraga ringan sebelum berdahak juga dapat

merangsang dahak keluar.


3/7


o Dahak adalah bahan infeksius sehingga pasien harus berhati-hati saat

berdahak dan mencuci tangan.

o Pasien dianjurkan membaca prosedur tetap pengumpulan dahak yang

tersedia di tempat/lokasi berdahak

4. PENILAIAN KUALITAS SECARA MAKROSKOPIS

Petugas laboratorium harus melakukan penilaian terhadap dahak pasien. Tanpa

membuka tutup pot, petugas laboratorium melihat dahak melalui dinding pot yang

transparan, hal-hal yang perlu diamati adalah :

- Vol 3,5 - 5 ml

- Kekentalan : mukoid

- Warna : Hijau kekuningan (purulen)

ANALITIK

Cara pemeriksaan BTA dari sputum dengan oil imersi

1. Teteskan oil imersi pada sediaan sputum lihat pada pembesaran lensa

objektif 100x carilah BTA yang berbentuk batang warna merah.

2. Periksa dengan cara mengeser dan membentuk zig zag dari atas kebawah

kemudian ulangi dengan berlawanan arah.

Pembacaan BTA sputum menggunakan skala IUATLD (International Union Against

Tuberculosis and Lung Diseases)

Tidak ditemukan BTA dalam 100 lp, disebut negatif

Ditemukan 1-9 BTA dalam 100 lp, ditulis jumlah kuman yang ditemukan

Ditemukan 10-99 BTA dalam 100 lp, disebut + atau (1+)

Ditemukan 1-10 BTA dalam 1 lp, disebut ++ atau (2+)

Ditemukan >10 BTA dlam 1 lp, disebut +++ atau (3+)

PASCA ANALITIK

a. Penyimpanan sediaan

Dilakukan pengecekan ulang apakah penyimpanan sediaan sudah sesuai

dengan prosedur


4/7


b. Tahap Pasca Analisis

Menjamin bahwa pelaksanaan tahap pasca analisis sesuai protap yaitu

pelaksanaan dekontaminasi alat dan bahan infeksius; pengelolaan limbah

infeksius dan non infeksius; dan pemeliharaan mikroskop. Periksa kembali

pencatatan dan pelaporan sesuai dengan standar. Petugas tidak

diperkenankan menuliskan laporan dengan tanda atau simbol yang tidak

sesuai skala IUATLD. Contoh tidak ditemukan BTA dituliskan sebagai ,

seharusnya : neg; ditemukan 1-9 BTA/ 100 LPB dituliskan BTA jarang atau

seharusnya dituliskan jumlah BTA yang ditemukan. Apabila ditemukan

BTA harus dilaporkan dengan simbol 1+, 2+ atau 3+ sesuai dengan skala

IUATLD. Tidak diperbolehkan menuliskan hasil pemeriksaan diatas kaca

sediaan. Penulisan hasil positif dituliskan dengan tinta merah.

Pewarnaan Ziehl Neelsen

a. Prinsip Pewarnaan

Bakteri tahan asam (BTA) akan memberikan warna merah, sedangkan

yang tidak tahan asam akan berwarna biru.

Cara Pewarnaan Ziehl Neelsen

A. Alat dan Bahan:

1.Object glass

2. Carbol fuchsin 0,3%

3. Alkohol asam 3% (Alkohol + konsentrasi HCl 3%)

4. Methylen-blue 0,3%

5. Air

6. Lidi

7. Lampu bunsen/spiritus

B. Cara Membuat Sediaan:

Bersihkan objek gelas, beri label

1. Ambil dengan ujung lidi sputum yang kental (hijau kuning)

letakkan diatas objek gelas, ratakan.


5/7


2. Sediaan biarkan kering pada suhu kamar.

3. Setelah kering fiksasi dengan melewatkkan diatas nyala api

sebanyak 3 x, sediaan siap untuk diwarnai.

C. Cara Pewarnaan ZN:

1. Sediaan dituangi Carbol Fuchsin sampai penuh

2. Panaskan selama 3-5 menit, jangan sampai mendidih

3. Biarkan dingin selama 5 menit, cuci dengan air

4. Dekolorisasi dengan alkohol asam 10-30 detik, cuci dengan air

5. Tuangi methylen blue selama 20-30 detik, cuci dengan air


6/7


Laporan Hasil

Hasil Pewarnaan apusan yang kurang baik


7/7


Kerpustakaan:

1. Angra P et al. Ziehl-Neelsen staining: strong red on weak blue, or weak redunder strong blue? International Journal of Tuberculosis and Lung Disease,2007, 11:11601161

2. WHO, 1998, Laboratory Services in Tuberculosis Control Part 2, Microscopy,WHO

3. WHO, 2002, External Quality Assessment for AFB Smear Microscopy, APHL,CDC,

IUATLD,KNCV, RIT, WHO

4. RIT, 2007, Mikroskopis TB untuk Program Tuberkulosis Nasional, A. Fujiki

bta (praktikum)

Documents