a-pdf watermark demo: purchase from · pdf filegambar 4. kultur pakan alami pada media cair...

melakukan pemeliharaanlarva udang air payau

MODUL

Pusat Pendidikan Kelautan dan PerikananBadan Pengembangan SDM dan Pemberdayaan Masyarakat Kelautan dan PerikananKementerian Kelautan dan Perikanan

TEKNOLOGI BUDIDAYA PERIKANAN 2015

TEK

NO

LOG

I B

UD

IDA

YA P

ERIK

AN

AN

2015

MEL

AKUK

AN P

EMEL

IHAR

AAN

LARV

A UD

ANG

AIR

PAYA

U

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

A-PDF Watermark DEMO: Purchase from www.A-PDF.com to remove the watermark

http://www.a-pdf.com/?wm-demo

i Pembenihan Larva Udang Air Payau

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur kami panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa,

dengan tersusunnya modul Pembenihan Larva Udang Air Payau ini.

Modul ini merupakan modul pembelajaran yang dapat digunakan peserta

didik program keahlian Nautika Perikanan Laut dalam mempersiapkan diri

untuk uji kompetensi keahlian. Peserta didik dapat belajar secara individual

dan mandiri dalam menyelesaikan suatu unit kompetensi secara utuh.

Modul ini disusun berdasarkan silabus SUPM Edisi 2012 dan Standar

Kompetensi Kerja Nasional Indonesia (SKKNI). Pada setiap bab berisi

tentang lembar informasi, lembar praktek unjuk kerja, penilaian/evaluasi dan

lembar kunci jawaban.

Dengan mempelajari seluruh isi modul dan melaksanakan setiap

praktek unjuk kerja diharapkan peserta didik dapat lebih siap menghadapi uji

kompetensi keahlian.

Jakarta, Desember 2015

Pusat Pendidikan Kelautan dan Perikanan

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

ii Pembenihan Larva Udang Air Payau

DAFTAR ISI

KATA PENGANTAR ...................................................................................... i

DAFTAR ISI .................................................................................................. ii

DAFTAR TABEL.......................................................................................... iv

DAFTAR GAMBAR ...................................................................................... v

BAB I. PENDAHULUAN .............................................................................. 1

A. Deskripsi .......................................................................................... 1

B. Peta Judul Modul, Unit Kompetensi dan Elemen Kompetensi ......... 3

C. Tujuan .............................................................................................. 3

D. Petunjuk Penggunaan Modul ........................................................... 4

E. Waktu ............................................................................................... 4

BAB II. MENGELOLA KUALITAS AIR PADA PEMELIHARAAN LARVA

UDANG AIR PAYAU. ..................................................................... 5

A. Lembar informasi ............................................................................... 5

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja .............................................................12

C. Penilaian/Evaluasi ............................................................................16

D. Lembar Kunci Jawaban ....................................................................19

BAB III. MEMBERI PAKAN LARVA UDANG AIR PAYAU .......................20

A. Lembar Informasi ..............................................................................20

B. Lembar praktek unjuk kerja ..............................................................45



Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

iii Pembenihan Larva Udang Air Payau

BAB IV. MENGENDALIKAN KESEHATAN IKAN/LARVA UDANG. ......52

A. Lembar informasi ..............................................................................52

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja .............................................................80



BAB V PENUTUP. ......................................................................................87

DAFTAR PUSTAKA ...................................................................................88

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

iv Pembenihan Larva Udang Air Payau

DAFTAR TABEL

Tabel 1. Perlakuan media pemeliharaan larva udang vannamei .................. 8

Tabel 2. Pemberian pakan alami .................................................................22

Tabel 3. Ukuran saringan pakan berdasarkan stadia larva .........................23

Tabel 4. Formula pupuk kultur skala laboraturium .................................... 26

Tabel 5. Komposisi trace metal solution dan vitamin ..................................27

Tabel 6. Formula pupuk fitoplankton skala semi massal .............................34

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

v Pembenihan Larva Udang Air Payau

DAFTAR GAMBAR

Gambar 1. Pengukuran pH menggunakan pH meter ..................................10

Gambar 2. Pengukuran DO menggunakan DO meter.................................12

Gambar 3. Kultur Pakan Alam pada media agar .........................................28

Gambar 4. Kultur pakan alami pada media cair ....................................... 31

Gambar 5. Pengeringan tambak .................................................................56

Gambar 6. Melapisi tanggul dengan plastik ................................................56

Gambar 7. Penghalang burung menggunakan jaring ..................................58

Gambar 8. Hama labi-labi ...........................................................................59

Gambar 9. Hama kodok ..............................................................................59

Gambar 10. Hama ular ................................................................................60

Gambar 11. Hama biawak ...........................................................................60

Gambar 12. Hama liasang ..........................................................................61

Gambar 13. Hama kepiting ...................................................................... 61

Gambar 14. Hama belut ..............................................................................62

Gambar 15. Hama ikan gabus ....................................................................62

Gambar 16. Hama kini-kini/larva capung ....................................................63

Gambar 17. Hama ucrit/larva cybister .........................................................64

Gambar 18. Hama notonecta ......................................................................65

Gambar 19. Diagram venn interaksi triple ...................................................65

Gambar 20. Penyakit Early Mortality Syndrome (EMS) ...............................76

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

vi Pembenihan Larva Udang Air Payau

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

1 Pemeliharaan Larva Udang Air Payau

BAB I

PENDAHULUAN

A. Deskripsi

Modul Melakukan Pemeliharaan Larva Udang Air Payau ini berisi 3

(tiga) cakupan materi, yaitu:

1. Mengendalikan kualitas air pada wadah pemeliharaan larva udang

air payau.

Materi ini bertujuan agar peserta didik mengetahui tahapan standar

dalam mengendalikan kualitas air pada wadah pemeliharaan larva

udang air payau. Di dalam materi ini membahas: a). Tahapan

proses penyediaan air budidaya udang air payau, dimana sebelum

air dimasukkan ke dalam bak pemeliharaan harus melalui beberapa

treatment agar air yang digunakan dalam pemeliharaan larva

udang air payau sesuai dengan standar hidup larva udang; b).

Mengelola kualitas dan kuantitas air, karena air sebagai media

hidup larva harus memiliki kualitas mutu yang mendukung

perkembangan larva. Tujuan pengelolaan kualitas air adalah untuk

mempertahankan kualitas air tetap baik dan dapat ditolerir oleh

larva; c). Mengukur kualitas air dimaksudkan air yang digunakan

dalam kegiatan pemeliharaan larva udang air payau dapat diketaui

kandungan fisika dan kimianya sehingga dapat disesuaikan dengan

kebutuhan optimal larva udang untuk tumbuh; d). Melakukan

pergantian air, dimaksudkan agar kualitas air tetap terjaga pada

kisaran optimal terutama apabila kondisi air pada wadah

pemeliharaan larva udang air payau sudah terlalu kotor dan miskin

kandungan oksigennya.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


2. Memberi pakan larva

Pengelolaan pakan bertujuan agar pakan diberikan secara optimal,

tidak berlebihan dan tidak kekurangan, dikarenakan pakan sangat

menentukan perkembangan larva.

Di dalam materi ini membahas: a). Mengkultur Fitoplankton Secara

Murni; b).Mengkultur Zooplankton Secara Murni; c). Mengkultur

Fitoplankton Secara Massal; d). Mengkultur Zooplankton Secara

Massal; e). Menetaskan Artemia.

3. Mengendalikan kesehatan ikan

Dalam budidaya ikan, serangan hama penyakit adalah masalah

dan aspek yang sangat penting, artinya penanggulangan penyakit

dan hama juga harus menjadi pengetahuan yang penting bagi

petani ikan dan siapa saja yang hendak membudidayakan ikan.

Sebab penyerangan penyakit maupun gangguan hama dapat

mengakibatkan kerugian ekonomis.

Di dalam materi ini membahas: a).Mengidentifikasi Hama yang

Menyerang Ikan; b). Mengidentifikasi Penyebab Penyakit Ikan; c).

Mencegah Hama Yang Menyerang Ikan; d). Mengobati Ikan Sakit.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


B. Peta Judul Modul Unit Kompetensi dan Elemen Kompetensi

C. Tujuan

Setelah mempelajari modul ini peserta diharapkan dapat:

1. Memahami kegiatan pengelolaan kualitas air pada pemeliharaan

larva udang air payau;

2. Memahami teknik memberi pakan larva udang air payau;

3. Memahami teknik dalam mengendalikan kesehatan larva udang air

payau.

Melakukan Pemeliharaan Larva

Udang Air Payau

Mengendalikan kualitas air pada

wadah pemeliharaan larva udang air payau

Memberi pakan larva

Mengendalikan kesehatan larva

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


D. Petunjuk Penggunaan Modul

1. Bagi peserta:

a. Baca petunjuk dan deskripsi modul dengan baik;

b. Pelajari modul, baik teori, praktek, serta evaluasi dari awal hingga

akhir;

c. Siapkan alat dan bahan praktek sesuai dengan petunjuk di dalam

modul;

d. Diskusikan dengan guru pembimbing apabila ada hal-hal yang

perlu didiskusikan lebih lanjut;

e. Lakukan evaluasi mandiri yang ada di dalam modul ini sebelum

melaksanakan praktek.

2. Bagi Guru Pembimbing:

a. Lakukan penjelasan mengenai cara penggunaan modul ini;

b. Lakukan evaluasi penguasaan materi sebelum melakukan

praktek;

c. Membimbing siswa melalui tugas-tugas pelatihan yang ada di

dalam modul;

d. Membimbing siswa untuk menentukan sumber belajar lain selain

modul;

e. Mencatat dan mendata kemajuan belajar siswa;

f. Melakukan penilaian dan evaluasi;

g. Memberi masukan dan saran dari hasil evaluasi yang dihasilkan.

E. Waktu

Waktu yang dibutuhkan dalam mempelajari modul ini adalah

disesuaikan dengan ketuntasan belajar, serta sesuai panduan dari

guru/pembimbing.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


BAB II

MENGELOLA KUALITAS AIR PADA PEMELIHARAAN LARVA

UDANG AIR PAYAU

A. Lembar Informasi

1. Pendahuluan

Pengelolaan kualitas air pada pemeliharaan larva menjadi bagian

yang sangat penting karena dapat mempengaruhi perkembangan

larva yang dipelihara. Kualitas air yang jelek dapat mempengaruhi

respon larva terhadap pakan yang diberikan, serta dapat

mengurangi kelangsungan hidup larva yang dipelihara. Apabila hal

tersebut terjadi, maka harus dicari solusi atau cara penanganannya.

Pengelolaan kualitas air harus rutin dilakukan secara berkelanjutan.

Modul ini terkait dengan SKKNI Kelautan dan Perikanan pada

Kompetensi Inti Budidaya Air Payau dengan Kode Unit:

a. PRK.AP02.006.01 dengan judul unit: Menyediakan Air Budidaya;

b. PRK.AP02.007.01 dengan judul unit: Mengelola Kualitas dan

Kuantitas Air;

c. PRK.AP02.008.01 dengan judul unit: Mengukur Kualitas Air

Harian;

d. PRK.AP02.009.01 dengan judul unit: Melakukan Pergantian Air;

e. PRK.AP02.010.01 dengan judul unit: Monitoring Kualitas dan

Kuantitas Air;

2. Menyediakan Air Budidaya

Sebelum air laut digunakan sebagai media pemeliharaan larva

udang, ada beberapa tahapan yang harus dilalui, yaitu:

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


a. Air laut diambil dari jarak 1 km dari bibir pantai disedot dengan

menggunakan pompa melalui dua buah pipa besar dan

menggunakan dua buah saringan;

b. Air laut dimasukkan ke dalam bak penampungan/tandon A yang

terdiri dari empat buah bak. Bak pertama untuk mengendapkan

pasir dan lumpur yang terkandung dalam air laut;

c. Air laut dialirkan ke dalam bak yang kedua melalui bagian bawah

bak tandon yang pertama. Bak tandon yang kedua ini berisi batu

kali pada lapisan paling bawah, dilanjutkan dengan lapisan arang

batok, dan pasir laut. Bahan-bahan ini dimaksudkan sebagai filter

alami.

1) Dari bak kedua, air laut masuk ke dalam bak ketiga melalui

bagian atas bak, disini air disaring kembali menggunakan

arang batok, dan pasir laut.

2) Setelah itu air laut masuk ke dalam bak yang keempat yang

berfungsi sebagai tempat penampungan air laut yang sudah

difiltrasi.

3) Setelah air selesai difilter di bak tandon A, maka air

dimasukkan ke dalam tandon B yang juga terdiri dari empat

bak penampungan.

4) Setelah itu air dialirkan melalui alat ozonisasi yang

didalamnya terdapat bahan bernama bromine yang berfungsi

untuk mematikan bakteri yang merugikan.

5) Kemudian air dimasukkan ke dalam tandon C untuk

diendapkan selama 2 jam. Tandon C ini merupakan tandon

terakhir yang menampung air laut yang telah siap digunakan

dalam kegiatan produksi.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Sebelum dilakukan pengisian air laut ke dalam bak/wadah

pemeliharaan larva, air laut disaring menggunakan filter bag,

kain kasa, kapas, karet, dan pipa PVC ukuran 2 inchi.

Tahapan penyaringan yaitu dengan membentangkan kain

kasa kemudian di atasnya diberi lapisan kapas. Kedua

lapisan tersebut digulungkan pada pipa PVC 2 inchi,

kemudian diikat dengan karet. Gulungan ini kemudian

dimasukkan ke dalam filter bag, ikat kembali.

Proses pengisian air laut yang telah difilter ke dalam bak

pemeliharaan larva masih memerlukan beberapa treatmen air

dengan menggunakan beberapa bahan, yaitu:

a) Air ditreatmen menggunakan EDTA sebanyak 5 ppm yang

bertujuan mengikat logam berat agar selalu dalam

keadaan terlarut yang mungkin terdapat di dalam air laut

tersebut.

b) Selanjutnya media pemeliharaan diberi probiotik dengan

dosis 1 ppm sehari sebelum tebar nauplius, tujuannya

untuk mendominasi bakteri yang menguntungkan di media

pemeliharaan.

3. Mengelola Kualitas dan Kuantitas Air

Pengelolaan kualitas air laut pada media pemeliharaan larva

sangat penting, karena air sebagai media hidup larva harus memiliki

kualitas mutu yang mendukung perkembangan larva. Tujuan

pengelolaan kualitas air adalah untuk mempertahankan kualitas air

tetap baik dan sesuai untuk kehidupan larva.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Pengelolaan kualitas air dilakukan melalui kegiatan perlakuan pada

media pemeliharaan larva udang vannamei di tiap-tiap fase

pertumbuhan larva, yang dapat dilihat pada Tabel 1. Perlakuan air ini

telah diaplikasikan pada backyard di kampus Sekolah Tinggi

Perikanan Jakarta dengan SR 50%.

Tabel 1. Perlakuan Media Pemeliharaan Larva Udang Vannamei

HARI ke Stadia Perlakuan

0 Pra tebar Probiotik 1 ppm (07.00)

1 Naupli probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00)

2 Zoea 1 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00)

3 Zoea 1-2 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00)

4 Zoea 2 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00)

5 Zoea 3 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00)

6 Mysis 1 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00)

7 Mysis 2 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00)

8 Mysis 3 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00)

9 Mysis-Postlarva

Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00)

10 PL 1 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00)

11 PL 2 Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00)

12 PL 3 Probiotik 1 ppm (jam 07,00)


14 PL 5 Ganti air 10 % (jam 06,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00)





Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


HARI ke Stadia Perlakuan





4. Mengukur Kualitas Air Harian

Untuk mengetahui kualitas air perlu dilakukan pengukuran

kualitas air dua kali sehari dengan beberapa parameter kualitas air

sebagai berikut:

a. pH

pH atau potensial hydrogen adalah derajat keasaman yang

terkandung dalam air. pH optimal untuk pemeliharaan benur

adalah 7,5-8,5. Pengukuran pH dapat dilakukan dengan dua

cara, yaitu menggunakan kertas lakmus dan pH meter. Cara

penggunaan kertas lakmus, yaitu dengan mencelupkan kertas

lakmus ke dalam air sampel, kemudian dilihat perubahan warna

yang terjadi pada ujung kertas lakmus. Kelemahan pengukuran

menggunakan kertas lakmus kurang akurat dan kurang efektif.

Pengukuran menggunakan pH meter cukup sederhana, pertama

pH meter dikalibrasi menggunakan akuades, selanjutnya ujung

pH meter dicelupkan ke dalam air sampel, aduk sedikit hingga

pada layar pH meter menunjukkan angka pH air sampel.

Pengukuran pH menggunakan pH meter dapat dilihat pada

Gambar 1.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 1. Pengukuran pH menggunakan pH meter

b. Suhu

Suhu optimal untuk pertumbuhan larva udang adalah 31oC. Pada

stadia larva (zoea dan mysis) jika suhu kurang dari 28oC maka

larva tidak akan bisa molting dan tidak bisa masuk stadia

berikutnya sehingga pertumbuhan menjadi lambat. Jika suhu

media pemeliharaan lebih tinggi dari 34oC maka larva atau post

larva menjadi lemas karena terlalu panas. Untuk menaikan suhu

air pemeliharaan maka bisa dilakukan pemasangan heather. Jika

suhu terlalu tinggi maka terpal penutup bak dan pintu ruangan

harus dibuka sehingga ada sirkulasi udara yang bagus.

c. Salinitas

Salinitas atau kadar garam adalah jumlah kandungan garam

yang terlarut dalam air. Benur udang vanamei dapat hidup dalam

kisaran sainitas yang cukup luas, yaitu 15-30 ppt. Pengukuran

salinitas dilakukan menggunakan refraktometer. Cara

menggunakan refraktometer cukup sederhana, pertama

refraktometer dikalibrasi menggunakan akuades. Di dalam

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


refraktometer ada garis yang menunjukkan kadar garam dalam

air. Pastikan batas antara warna putih dan biru berada di angka

nol. Selanjutnya air sampel diambil menggunakan pipet dan

diteteskan ke arah sensor refraktometer. Arahkan ke sumber

cahaya yang cukup terang, misalnya ke arah datangnya sinar

matahari, sehingga angka di dalam refraktometer terlihat jelas.

Salinitas dapat dilihat dari batas antara warna putih dan biru. Jika

pengukuran sudah selesai, bilas sensor refraktometer dengan

akuades, lap dengan tisu atau kain halus hingga kering dan

simpan pada tempatnya.

d. Ammonia

Di dalam air, ammonia terdapat dalam dua bentuk, yaitu NH4+

(ammonium) yang tidak bersifat racun dan NH3 (ammonia) yang

bersifat racun. Keberadaannya di dalam air disebabkan oleh

adanya kotoran larva udang dan hasil kegiatan jasad renik

didalam pembusukan bahan organik yang kaya akan nitrogen

(protein) yang berasal dari sisa pakan udang. Untuk mengukur

nilai ammonia dalam air dapat digunakan ammonia test kit sea

water. Keberadaan ammonia dapat menurunkan pertumbuhan

udang dan meningkatkan resiko infeksi bakteri.

e. Oksigen terlarut (DO)

Berdasarkan penelitian para ahli, kandungan oksigen terlarut

yang dapat menunjang kehidupan udang secara normal tidak

boleh kurang dari 3,7 ppm. Kadar oksigen yang kurang dari 1,2

ppm dapat mematikan larva yang dipelihara. Untuk mengukur

nilai oksigen terlarut menggunakan DO meter atau DO tes kit.

Penggunaan DO meter dapat dlihat pada Gambar 2.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 2. Pengukuran DO menggunakan DO meter

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja

1. Judul : Mengukur kualitas air

2. Alat :

- pH meter/ kertas lakmus

- Termometer

- Refraktometer

- DO meter/ DO tes kit

- Ammonia test kit salt water

- Gelas ukur

3. Bahan :

- akuades

- tisu

- reagent

- air sampel

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


4. Petunjuk : Gunakan pakaian kerja (Wear pack), harap berhati-hati

dalam menggunakan alat dan kembalikan sesuai

kondisi semula.

5. Langkah Kerja :

a. Mengukur pH menggunakan pH meter

1. Siapkan pH meter dan sampel air

2. pH meter dikalibrasi menggunakan akuades

3. Ujung pH meter dicelupkan ke dalam air sampel

4. Aduk sedikit hingga pada layar pH meter menunjukkan angka

pH air sampel.

5. Catat di dalam tabel pengamatan

No Sumber air sampel pH

b. Mengukur suhu

1) Alat pengukur disiapkan (Thermometer)

2) Alat dikalibrasi sebelum digunakan

3) Thermometer dicelupkan 5 – 10 menit dan dicatat hasilnya

4) Pengukuran dilakukan di tiga sampai lima tempat yang

berbeda

5) Hasil pengukuran dirata-ratakan dan dicatat dalam tabel

6) Alat disimpan kembali

No Sumber air sampel Suhu

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


c. Mengukur salinitas

1) Alat pengukur disiapkan (Hand Refractometer)

2) Alat dikalibrasi sebelum digunakan

3) Kaca prisma dibuka dan air sampel diteteskan diatasnya

4) Skala dilihat dengan mengarahkan ke sumber cahaya

5) Pengukuran dilakukan di tiga sampai lima tempat yang

berbeda

6) Kaca prisma dibersihkan dengan cara dibilas menggunakan

akuades dan dilap menggunakan tisu

7) Hasil pengukuran dicatat dalam tabel

No Sumber air sampel Salinitas

a) Ambil sampel 5 ml masukkan ke dalam

botol suntik.

b) Tambahkan 12 tetes reagent NH4-1, aduk

hingga rata.

c) Tambahkan 1 sendok takar NH4-2, tutup

tabung dan kocok sampai semua reagen

larut

d) Biarkan 5 menit

e) Masukkan 4 tetes NH4-3, aduk hingga rata

f) Biarkan 7 menit

g) Cocokkan warnanyawq

h) Cek pH = 7,5 dikarenakan pH air

merupakan faktor pembatas bagi ammoniak

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


d. Mengukur Kadar Ammonia

Pengukuran kadar ammonia dengan menggunakan ammonia

test kit salt water dilakukan dengan cara sebagai berikut:

1) Siapkan reagent yang ada di dalam ammonia test kit, yaitu

larutan NH4-1, NH4

-2, dan NH4-3.

2) Masukkan air sampel sebanyak 5 ml ke dalam botol suntik,

tambahkan 12 tetes reagent NH4-1 aduk hingga rata

3) Masukkan 1 sendok takar NH4-2, tutup tabung dan kocok

sampai semua reagent larut tunggu 5 menit.

4) Tambahkan 4 tetes larutan NH-3 aduk rata biarkan 7 menit.

5) Cocokkan warna larutan yang dihasilkan dengan indikator

pengukur warna ammoniak

6) Cek H= 7,5 dikarenakan pH air merupakan faktor pembatas

bagi ammoniak

7) Mencatat hasil pengukuran ke dalam tabel

No Sumber air sampel Ammoniak

e. Mengukur Oksigen Terlarut (DO)

Pengukuran oksigen terlarut dilakukan dengan menggunakan

DO meter dengan cara sebagai berikut :

1) Menekan tombol ON untuk menghidupkan alat DO meter

2) Setelah alat DO meter hidup sensor DO meter diangin-

anginkan selama 15-30 menit

3) Melakukan kalibrasi sampai menunjukkan angka 2,09

4) Kemudian tekan tombol Read

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


5) Memasukkan ujung sensor ke dalam bak sampai

terendam air

6) Melihat angka yang ditunjukkan pada layar

7) Mencatat hasil yang terlihat pada layar ke dalam tabel

No Sumber air sampel DO

C. Penilaian/Evaluasi

1. Air merupakan tempat hidup dan menyediakan ruang gerak bagi

organisme didalamnya adalah fungsi air dari segi …

A. Biologi

B. Fisika

C. Kimia

D. Sifat optis air

E. Sifat daya hantar listrik

2. Sifat air yang dapat melarutkan berbagai jenis senyawa kimia,

serta memungkinkan air sebagai pencuci yang baik dan sebagai

pengencer bahan pencemar (polutan) adalah sifat air sebagai …

A. Penyimpan panas yang baik.

B. Penguap (vaporization).

C. Pelarut yang baik.

D. Tegangan permukaan yang tinggi.

E. Senyawa yang dapat bertambah volumenya ketika membeku

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


3. Pernyataan berikut yang benar adalah ...

A. Smakin tinggi suhu maka kadar oksigen terlarut semakin tinggi

B. Semakin tinggi suhu maka kadar oksigen terlarut makin rendah

C. Suhu tidak mempengaruhi kadar oksigen terlarut

D. Suhu memberi pengaruh yang tidak nyata terhadap oksigen

terlarut.

E. Kenaikan suhu menyebabkan kenaikan jumlah oksigen terlarut.

4. Berikut ini yang termasuk ke dalam parameter biologi dalam

kualitas air adalah ...

A. Suhu

B. Kelimpahan plankton

C. pH

D. Daya hantar listrik

E. Oksigen terlarut

5. Berdasarkan keasamannya perairan dengan pH 9,5 dikategorikan

sebagai perairan ...

A. Asam

B. Sedang

C. Basa

D. Netral

E. Sangat asam

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


6. Air sumur atau air tanah umumnya ber-pH rendah. Agar air

tersebut aman untuk digunakan, sebaiknya diberi perlakuan ...

A. Diberi kaporit

B. Diberi tawas

C. Diberi aerasi kuat

D. Dilakukan filtrasi

E. Air diinapkan terlebih dahulu

7. Sumber utama oksigen di perairan adalah proses ...

A. Difusi

B. Fotosintesis

C. Oksidasi

D. Respirasi

E. Reduksi

8. Berikut adalah tanda yang menunjukkan bahwa ikan kekurangan

oksigen ...

A. Berenang terbalik

B. Ikan aktif bergerak

C. Ikan tidak mau makan

D. Ikan makan terus

E. Sering muncul ke permukaan air

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


9. Berikut ini manakah yang termasuk kedalam faktor fisika air

adalah…

A. pH dan Dissolved Oxygen (DO)

B. NH3 dan NH4

C. Kecerahan dan suhu

D. NO2 dan NO3

E. CO2 dan H2S

10. Apakah faktor yang berpengaruh terhadap salinitas air

pemeliharaan?

A. Ketinggian tempat lokasi budidaya

B. Posisi geografi

C. Awan

D. Kecerahan perairan

E. Banyaknya sungai yang bermuara ke pantai dan musim (hujan

atau kemarau)

D. Lembar Kunci Jawaban

1. A

2. C

3. B

4. B

5. C

6. A

7. B

8. E

9. C

10. E

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


BAB III

MEMBERI PAKAN LARVA UDANG AIR PAYAU

A. Lembar Informasi

1. Pendahuluan

Kegiatan pengelolaan pakan merupakan kegiatan yang terkait

dengan kualitas, jumlah, jenis, ukuran, waktu pemberian, frekuensi,

dan cara memberikan pakan. Kebutuhan pakan merupakan

membutuhkan kecermatan dan perhatian yang besar karena

mengambil sebagian besar biaya produksi. Pengelolaan pakan

bertujuan agar pakan diberikan secara optimal, tidak berlebihan dan

tidak kekurangan, dikarenakan pakan sangat menentukan

perkembangan larva.



a. PDB.AP02.024.01 dengan judul unit: Mengkultur Fitoplankton

Secara Murni

b. PDB.AP02.025.01 dengan judul unit: Mengkultur Zooplankton

Secara Murni

c. PDB.AP02.026.01 dengan judul unit: Mengkultur Fitoplankton

Secara Massal

d. PRK.AP02.027.01 dengan judul unit: Mengkultur Zooplankton

Secara Murni

e. PRK.AP02.028.01 dengan judul unit: Menetaskan Artemia

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


2. Kualitas Pakan

Kualitas pakan yang baik akan mendukung pertumbuhan larva

yang dipelihara. Pakan memiliki fungsi untuk mendukung

pertumbuhan sel dan mencegah ikan sakit. Pakan yang

berkualitas baik ditentukan oleh kandungan nutrisi terutama kadar

protein yang tinggi. Pada pakan udang, kandungan prrotein

minimal 35% dari total kandungan pakan.

3. Jenis Pakan

Jenis pakan yang diberikan pada larva disesuaikan dengan

kebiasaan makan dan bukaan mulut larva. Jenis pakan yang

diberikan umumnya terdiri dari pakan alami dan buatan. Jenis

pakan alami yang diberikan adalah Artemia sp., Skeletonema

costatum, dan Chaetoceros sp. Sedangkan pakan buatan

merupakan pakan yang diberikan selama proses pemeliharaan

mulai stadia Zoea hingga Post larva yang bertujuan agar tidak

terjadi under feeding atau kekurangan pakan selama

pemeliharaan. Pemberian pakan buatan pada pemeliharaan larva

lebih dominan dibandingkan pakan alami karena dari segi

kandungan gizi, pakan buatan memiliki nilai gizi yang lebih

lengkap yang dibutuhkan larva untuk pertumbuhan.

4. Jumlah Pakan

Jumlah pakan adalah banyaknya pakan yang diberikan pada

larva yang disesuaikan dengan bukaan mulut dan umur larva.

Jumlah pakan yang diberikan juga harus mempertimbangkan

jumlah larva. Jumlah yang diberikan tidak boleh berlebihan atau

kurang karena akan berpengaruh secara langsung pada

pertumbuhan larva. Jumlah pakan yang diberikan juga

berpengaruh terhadap kualitas air. Pemberian pakan yang

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


berlebih akan membuat pakan tidak termakan sepenuhnya dan

menurunkan kualitas air yang dapat mengakibatkan terjadinya

penyakit. Kekurangan pemberian pakan akan berpengaruh pada

terhambatnya pertumbuhan larva, karena asupan nutrisi

berkurang, walaupun kualitas air tetap baik. Jumlah pemberian

pakan alami pada larva dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 2. Pemberian pakan alami

No

STANDAR KEPADATAN LARVA

Stadia Kepadatan alga

(Chaetoceros sp.)

kepadatan artemia

1 N 50.000 sel/ml -

Z1 80.000 sel/ml -

Z2 100.000 sel/ml -

Z3 120.000 sel/ml -

M1 100.000 sel/ml -

M2 80.000 sel/ml -

M3 80.000 sel/ml 5 ind/ekor/pemberian pakan

PL1 50.000 sel/ml 15 ind/ekor/pemberian pakan

PL2 - 15 ind/ekor/pemberian pakan









Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan




Pakan artemia hidup mulai diberikan pada stadia mysis 3, hal ini

bertujuan untuk melatih larva dalam mengejar dan menangkap

artemia. Artemia yang diberikan harus dalam keadaan hidup tidak

mati, karena jika mati akan mengendap tidak termakan dan cepat

sekali membusuk dan akan merusak kualitas air.Pada stada Zoea

hingga Post larva 12 (PL12), larva udang sudah diberikan pakan

buatan untuk menjaga kebutuhan nutrisi dan ketersediaan pakan

yang kontinyu.

5. Ukuran Pakan

Ukuran pakan adalah panjang atau besarnya pakan yang dapat

dengan mudah masuk ke dalam mulut larva, sehingga bukaan

mulut larva merupakan patoan untuk memilih ukuran pakan. Ukuran

pakan juga bisa diukur menggunakan ukran saringan yang biasa

diistilahkan dengan mesh size. Ukuran saringan harus lebih kecil

dari bukaan mulut larva, sehingga pakan yang tersaring kan mudah

masuk ke dalam mulut larva. Tabel 3 menunjukan ukuran saringan

pakan berdasarkan stadia larva.

Tabel 3. Ukuran saringan pakan berdasarkan stadia larva

Stadia Ukuran saringan (mesh size)

Zoea 1-2 200 mikron

Zoea 3- mysis 3 < 100 mikron

Mysis 4- PL 4 100 – 150 mikron

PL 4- PL 10 56 mikron

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


6. Frekuensi dan Waktu Pemberian Pakan

Waktu dan ferkuensi pemberian pakan merupakan jadwal yang

ditetapkan dalam memberikan pakan pada larva setiap harinya.

Pemberian pakan biasanya dilakukan sebanyak 10 kali dalam

sehari, yaitu pada pukul 01.00, 04.00, 07.00, 09.00, 11.00, 13.00,

15.00, 16.00, 19.00, dan 23.00. Frekuensi yang dilakukan dengan

cukup sering pada larva fase zoea dimaksudkan agar tidak terjadi

kanibalisme.

7. Mengkultur Fitoplankton dan Zooplankton Secara Murni

Unit kompetensi ini berlaku untuk melakukan kultur pakan alami

air payau jenis fitoplankton yang dilakukan di bak kultur (baik bak

semen atau bak fiber), yang terdiri dari: menyiapkan peralatan,

wadah dan media kultur pakan alami, melakukan pemupukan

terhadap media, menginokulasi bibit, melakukan sampling pakan

alami, melakukan pemanenan dan membuat laporan hasil kultur

pakan alami.

Kultur skala laboratorium atau kultur murni adalah suatu usaha

untuk mempertahankan kemurnian dan mutu yang merupakan

sumber bibit dalam kultur semi massal/massal. Dengan

tersedianya stok murni secara terus menerus, jika terjadi kendala

dalam kultur massal, maka kegiatan kultur pakan alami tidak akan

terputus. Dalam kultur murni ada beberapa kegiatan yang umum

dilakukan antara lain:

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


a. Menyiapkan peralatan

Peralatan kultur yang perlu disiapkan berupa gelas (cawan

petri, tabung reaksi, erlenmeyer) dicuci bersih dengan air tawar,

kemudian dikeringkan dan disterilisasi dengan menggunakan

autoclave, oven, dan alohol 70% kemudian dikeringkan.

Peralatan lain yang berupa perangkat aerasi disterilisasi

dengan perebusan sampai mendidih ( suhu 100-150 oC) sekitar

15 menit. Ruangan dan tempat kultur juga disucihamakan

dengan antiseptik.

b. Menyiapkan media kultur

Sterilisasi air media kultur dapat dilakukan dengan cara

perebusan dan penyinaran dengan sinar ultra violet. Metode

perebusan adalah dengan merebus air laut sampai mendidih,

sebelumnya salinitas diturunkan menjadi 25 ‰ dengan

menambahkan air tawar. Penyaringan air juga harus dilakukan

dengan saringan pasir dan filter bag (kantong saring), kemudian

air dimasukkan ke dalam ember steril dan ditutup untuk

mencegah tumbuhnya lumut dan masuknya kotoran. Untuk

metode sinar ultra violet adalah dengan mengalirkan air

melewati sinar UV dengan panjang gelombang 2000-3000 Å

yang telah dilengkapi dengan catridge filter berukuran 50 µm,

10 µm, 5 µm dan 2 µm dan hasilnya ditampung dalam ember

steril.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


c. Melakukan pemupukan

Pupuk yang digunakan pada skala laboratorium ini terbuat

dari bahan kimia PA (pro analis) dengan dosis pemakaian 1 ml

pupuk untuk 1 liter volume kultur. Jenis dan formula pupuk

adalah yang sudah distandarkan dan umum digunakan adalah

pupuk Conwy (Walne’s medium) dan Guillard & Rhyter

Modifikasi F. Untuk memudahkan pemakaiannya, terlebih

dahulu dibuat stok pupuk cair (Tabel 4 dan 5). Pupuk Conwy

digunakan untuk fitoplankton jenis Chlorophycea atau

fitoplankton yang berwarna hijau, sedangkan Guillard

digunakan untuk fitoplankton dari jenis diatom atau fitoplankton

yang berwarna kecoklatan, karena dalam pupuk Guillard

terdapat silikat yang dibutuhkan untuk pertumbuhan diatom.

Tabel 4. Formula pupuk kultur skala laboratorium

No Bahan kimia Nama pupuk

Conwy/Walne Guillard

1.

2.

3.

4.

5.

6.

7.

8.

9.

10.

EDTA

NaH2PO4.2H2O

FeCl3.6H2O

H3BO3

MNCl2

NaNO3

Na2SiO3.9H2O

Trace Metal Solution*

Vitamin*

Aquades sampai

45 gram

20 gram

1,5 gram

33,6 gram

0,36 gram

100 gram

-

1 ml

1 ml

1000 ml

10 gram

10 gram

2,9 gram

-

3,6 gram

100 gram

5 gram/30 ml

1 ml

1 ml

1000 ml

*: Komposisi dapat dilhat pada Tabel 6.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Tabel 5. Komposisi trace metal solution dan vitamin

No Bahan Kimia Nama pupuk

Conwy/Walne Guillard

A

B

Trace Metal:

1. ZnCl2

2. CuSO4.5H2O

3. ZnSO4.7H2O

4. CoCl2.6H2O

5. (NH4)6.Mo7O24.4H2O

6. Aquabides sampai

Vitamin:

1. B1

2. B12

3. H (biotin)

4. Aquadest

2,10 gram

2,00 gram

-

2,00 gram

0,9 gram

100 m

200 mg

10 mg

-

200 ml

-

1,96 gram

4,40 gram

2,00 gram

1,26 gram

100 ml

0,2 gram

10 gram

10 ml

1 lt

d. Menginokulasi bibit

Menginokulasi bibit dapat dilakukan dengan dua cara, yaitu:

1) Menggunakan media agar

Kultur pada media agar dimaksudkan untuk

mempertahankan fitoplankton tetap murni dan berkualitas

baik, tahap awal kultur dimulai dengan kultur pada media

agar. Kultur di media agar juga berfungsi dalam kemudahan

transportasi dan penyimpanan. Cara kultur pada media

agar pertama-tama dengan melarutkan bacto-agar

sebanyak 1,5 gram dalam 100 ml air laut kemudian

dipanaskan sampai mendidih hingga larutan menjadi jernih.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Selama pemanasan, larutan selalu diaduk agar tidak

menggumpal. Setelah mendidih, larutan bacto agar

diangkat, dan setelah agak dingin ditambahkan pupuk

sesuai jenis fitoplankton yang akan ditanam. Selanjutnya

larutan dituangkan ke dalam cawan petri yang sudah steril

dengan ketebalan 3-5 mm atau ke dalam tabung reaksi

steril dengan posisi miring. Setelah media agar membeku,

siap digunakan untuk menanam inokulum (bibit

fitoplankton) dengan metode gores, metode tetes atau

metode tuang. Penanaman pada meda agar dapat dilihat

pada Gambar 3.

Gambar 3. Kultur pakan alam pada media agar

Metode gores menggunakan jarum ose yang sebelumnya

telah dibakar menggunakan lampu bunsen agar steril. Bibit

fitoplankton digoreskan pada permukaan media agar

dengan menggunakan jarum ose. Metode tetes

menggunakan pipet tetes steril untuk mengambil dan

meneteskan bibit fitoplankton pada permukaan media agar,

dengan meneteskan setetes demi setetes secara terpisah.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Sedangkan pada metode tuang, bibit fitoplankton dituang

dan diratakan pada permukaan media agar dengan

gerakan memutar. Kegiatan tersebut dilakukan dalam

ruangan yang steril (laminar).

Untuk mencegah kontaminasi dengan mikroorganisme lain,

cawan petri yang telah ditanami bibit fitoplankton disegel

atau ditutup dengan selotip, kemudian diletakkan di rak

kultur yang disinari dengan lampu neon TL. Cawan petri

diletakkan dalam keadaan terbalik untuk mencegah

terjadinya penetesan embun dari bagian tutup ke media

agar, hal tersebut akan mengganggu pertumbuhan

fitoplankton.Koloni dapat tumbuh setelah 4-7 hari

penanaman.

2) Menggunakan media cair

Kultur media cari merupakan tahap selanjutnya setelah dari

media agar. Koloni yang telah tumbuh dan berkembang di

media agar dapat dipindahkan dengan menggunakan jarum

ose ke dalam tabung reaksi yang berisi air laut steril dan

telah diberi pupuk. Sebaiknya digunakan satu jarum ose

untuk satu jenis fitoplankton untuk menghindari

kontaminasi. Tabung-tabung reaksi yang telah berisi bibit

fitoplankton ditempatkan dalam rak tabung reaksi dan

diletakkan pada rak kultur yang dilengkapi dengan lampu

neon TL sebagai sumber cahaya.

Selama masa kultur, tabung reaksi dikocok sesering

mungkin dengan tujuan untuk menghindari terjadinya

pengendapan dan untuk difusi udara. Bibit fitoplankton

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


dalam tabung reaksi akan meningkat kepadatannya,

setelah itu dapat dipindahkan sebagian ke wadah yang

lebih besar volumenya (100-300 ml), sedangkan sebagian

lagi dipindahkan ke tabung reaksi lain untuk

mempertahankan kemurniannya (sebagai stok).

Fitoplankton yang dikultur bisa diaerasi atau tanpa aerasi.

Apabila menginginkan pertumbuhan yang cepat, maka

sebaiknya diaerasi dan apabila tujuannya untuk stok tidak

perlu diaerasi, namun cukup dikocok sewaktu-waktu.

Setelah kepadatannya cukup (sekitar 1 minggu) dapat

dipindahkan ke volume yang lebih besar (500-1000 ml).

Demikian seterusnya kultur dilakukan secara bertahap dari

volume kecil ke volume yang lebih besar (sampai dengan 5

liter) dengan waktu kultur masing-masing 4-7 hari. Kultur

pakan alami pada media cair dapat dilihat pada Gambar 4.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 4. Kultur pakan alami pada media cair

Penyaringan dilakukan untuk memisahkan kotoran atau

fitoplankton yang mati/menggumpal dengan

menggunakan kertas saring atau kertas tissu. Kegiatan

tersebut berlangsung terus menerus dan

berkesinambungan dari media agar ke media cair dan

dari volume kecil ke volume lebih besar secara bertahap.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


e. Sampling dan panen

Sampling atau penghitungan dfitoplankton ditujukan untuk

mengetahui pertumbuhan fitoplankton yang ditandai dengan

adanya pertambahan kepadatan fitoplankton yang dikultur.

Untuk menghitung kepadatan umumnya menggunakan alat

hitung haemocytometer dengan bantuan mikroskop. Kepadatan

fitoplankton dihitung sejak dari awal kultur sampai akhir kultur

setiap 24 jam. Dengan menghitung kepadatannya dapat

diketahui masa puncak fitoplankton yang diultur. Waktu panen

fitoplankton sebaiknya dilakukan pada saat menuju puncak

kepadatan dan jangan melewati masa puncak.

8. Mengkultur Fitoplankton dan Zooplankton Secara Massal

Unit kompetensi ini berlaku untuk melakukan kultur pakan

alami fitoplankton yang dilakukan di bak kultur (baik bak semen

atau bak fiber), yang terdiri dari: menyiapkan peralatan, wadah

dan media kultur pakan alami, melakukan pemupukan, menanam

bibit, melakukan sampling pakan alami, memanen pakan alami,

melakukan pemupukan susulan dan membuat laporan hasil kultur

pakan alami. Kultur pakan alami ini hanya berlaku pada kegiatan

pembenihan ikan dan udang.

a. Pendahuluan

Dalam mata rantai kegiatan kultur fitoplankton dan

zoopankton, kultur massal merupakan rantai terakhir sebelum

dilakukan pemanenan untuk dipergunakan pada kepentingan

lain. Beberapa jenis fitoplankton dan zooplankton yang

bermanfaat di dalam menunjang kegiatan pembenihan ikan

terutama ikan laut telah berhasil dikembangkan hingga skala

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


massal. Keberhasilan dalam kultur massal fitoplankton dan

zooplankton, merupakan salah satu kunci yang menentukan

keberhasilan usaha pembenihan. hal ini dikarenakan dalam

pemeliharaan organisme laut, terutama pada stadia awal

masih tergantung pada pakan hidup yang berupa zooplankton.

Bahkan ada beberapa jenis organisme laut sepanjang siklus

hidupnya sangat bergantung pada fitoplankton, sebagai pakan

seperti dari keluarga kekerangan dan teripang.

b. Persiapan alat dan bahan

Sebelum melakukan kultur, terlebih dahulu dilakukan

persiapan wadah dan peralatan yaitu dengan melakukan

pencucian dan sterilisasi dengan menggunakan kaporit 10

ppm. Sterilisasi air laut sebagai media kultur dilakukan di bak

tandon dengan kaporit 15-20 ppm dan kemudian dilakukan

pengadukan/pengudaraan selama 2-3 hari untuk menetralkan

kaporit. Selanjutnya air laut tersebut diendapkan dengan

menghentikan pengudaraannya. Chlorin tes dapat digunakan

untuk mengetahui apakah air laut sudah bebas dari kaporit.

Saat pengadukan harus terkena cahaya matahari dan kontak

dengan udara terbuka, untuk mempercepat air menjadi netral.

Untuk menghilangkan kaporit tidak dianjurkan menggunakan

penetral seperti Natrium Thiosufat, karena dapat meracuni

larva ikan.

Sterilisasi air mutlak diperlukan walaupun air terlihat

bersih dan jernih. Karena disamping untuk menghilangkan

organisme pathogen juga untuk menghindarkan terjadinya

kontaminasi fitoplankton dan zooplankton yang tidak

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


diinginkan yang terdapat diperairan tersebut. Dengan adanya

kontaminan dapat menyebabkan kegagalan dalam kultur.

c. Pemupukan

Untuk skala massal, digunakan pupuk dari bahan kimia

murni (PA: Pro Analis) dan atau pupuk teknis. Ada banyak

jenis formula pupuk yang dapat digunakan, beberapa contoh

nama formula yang sudah baku seperti: Conwy, Gillard’s,

EDTA, dan TMRL. Pemupukkan dapat dilakukan di awal kultur

atau bersamaan dengan masuknya bibit, dengan dosis 1 ml/lt

media air kultur. Komposisi pupuk teknis skala semi massal

dapat dilihat pada Tabel 6.

Tabel 6. Formula Pupuk Fitoplankton Skala Semi Massal

No Bahan kimia Nama Formula

Conwy Guillard TMRL

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

NaNO3/KNO3

Na2 EDTA

FeCl3

MnCl

H2 BO3

Na2 HPO4

Na2SiO3

Trace Metal*

Vitamin*

Aquadest

Urea

ZA

100/116 gr

45 gr

1,3 gr

0,36

33,6 gr

20 gr

-

1 ml

1 ml

1 lt

-

-

84,2 gr

10 gr

2,9 gr

0,36 gr

-

10 gr

50 gr/(38,5 ml)

1 ml

1 ml

1 lt

-

-

100 gr

-

3,0 gr

-

-

10 gr

1 gr/(0,7 ml)

-

-

1 lt

-

-

* Komposisi Trace metal dan vitamin dapat dilihat pada Tabel 6.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Bahan kimia trace metal masih menggunakan bahan kimia

murni (PA), karena belum ada bahan teknisnya, dan

kebutuhannya sangat sedikit. Untuk kultur dengan volume

lebih dari 10 m3tidak mutlak ditambahkan, tergantung kondisi

perairan. Trace metal adalah logam berat yang digolongkan

sebagai mikronutrien, yang mutlak diperlukan dalam kadar

yang rendah, bila berlebih justru akan mematikan fitoplankton.

Pada kultur skala massal (volume 10-100 m3), jenis pupuk

yang digunakan adalah pupuk pertanian seperti Urea, ZA,

NPK dan KNO3 sebagai sumber nitrogen, dan TSP, SP3, NPK

sebagai sumber phospat. Hasil sampingan dari proses

pembuatan gula (molase) atau bumbu masak (orgami) dapat

dijadikan sebagai sumber mikronutrien. Dosis yang digunakan

dalam kultur skala massal adalah kelas Diatomae perlu

ditambahkan unsur silikat sekitar 5-20 ppm, tergantung

jenisnya.

Formula pupuk tidak selalu sama dari waktu ke waktu dan

masing-masing lokasi kemungkinan juga berbeda

komposisinya. Keadaan ini disebabkan setiap perairan secara

kimiawi mungkin berbeda dan dapat berubah setiap saat. Oleh

karena itu, jika terjadi kegagalan dalamkultur salah satu yang

perlu diperhatikan adalah formulasi pupuk yang digunakan.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


d. Penanaman Bibit

Kegiatan penanaman dimulai dengan kultur skala massal,

dilakukan di ruang semi out door tanpa dinding, beratap

transparan, untuk memanfaatkan cahaya matahari. Kekuatan

cahaya sinar matahari mutlak diperhatikan, berkaitan dengan

jenis bahan wadah dan volume kultur. Kultur dengan wadah

akuarium/fiberglass transparan pada volume sekitar 100 liter,

kekuatan cahaya yang dibutuhkan jauh lebih kecil daripada

bila memakai bak beton atau fiberglass dengan volume lebih

besar dan tidak transparan. Cahaya yang terlalu kuat dapat

menghambat pertumbuhan, karena menyebabkan suhu tinggi,

sehingga kultur cenderung kurang berhasil.

Bibit untuk kultur semi massal didapat dari hasil kultur murni

skala laboratorium. Bibit sebelum dikultur perlu dilakukan

adaptasi lingkungan, minimal satu hari. Untuk volume 100 liter

diperlukan bibit 5-10% dari volume total. Di awal kultur

diperlukan salinitas 28-30‰, suhu air laut di bawah 31oC dan

pH 7,9-8,3 dengan intensitas cahaya pada kisaran 10.000-

50.000 lux. Kekuatan cahaya yang tinggi akan berpengaruh

negatif terhadap pertumbuhan.

Untuk mendapatkan kepadatan yang optimal diperlukan kultur

antara 3-5 hari, tergantung jenis fitoplanktonnya, kepadatan

awal tebar dan kondisi lingkungan (musim). dari volume kultur

100 liter selanjutnya digunakan sebagai bibit untuk kultur

volume 1000 liter (1m3). Pupuk yang dipakai dari bahan kimia

teknis, atau dapat juga menngunakan kombinasi bahan teknis

dengan pupuk pertanian.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Kultur selanjutnya, pada volume yang lebih besar yaitu 10-100

m3 yang dikenal dengan kultur skala massal. Jenis yang

biasanya dikultur dalam volume besar untuk kegiatan

pembenihan ikan laut adalah Nannochloropsis sp., Dunaliella

sp. dan Tetraselmis sp. sebagai pakan Brachionus sp. dan

untuk media pemeliharaan larva. Pemupukan dilakukan

bersamaan dengan masuknya bibit fitoplankton dari hasil

kultur skala semi massal, sekitar 10-20% tergantung

kepadatannya.

e. Melakukan sampling

Waktu kultur untuk mencapai kepadatan optimal dan

aman digunakan sebagai pakan larva Brachionus sp. serta

sebagai media di bak pemeliharaan larva ikan umumnya

berkisar antara 4-6 hari. Faktor lingkungan alam sangat

dominan peranannya, seperti cahaya matahari dan musim.

Salah satu kriteria fitoplankton dengan kualitas baik sebagai

pakan hidup yaitu, memiliki pola tumbuh yang normal. Untuk

itu perlu dilakukan pengamatan pertumbuhan dengan melihat

perubahan warna secara visual dan mengukur kecerahannya

dengan alat sechi disk. Bila memungkinkan, akan lebih baik

dilakukan pengamatan dan penghitungan di bawah mikroskop

dengan bantuan alat hitunh yaitu Haemocytometer.

Pengamatan dengan mikroskop memberi beberapa

keuntungan antara lain, dapat mengetahui penambahan

jumlah sel setiap harinya, mengamati bentuk sel dan

kemungkinan adanya kontaminan mikroorganisme lainnya.

Pengawasan yang disiplin memberi hasil yang lebih baik,

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


dengan demikian kemurnian kultur massal dapat

dipertahankan lebih lama dan berkualitas.

f. Pemanenan

Pada umumnya pemanenan hasil kultur fitoplankton

adalah dengan cara langsung bersama air media kultur.

Ukuran fitoplankton yang mkroskopis (2- <20 µm), sulit untuk

dilakukan penyaringan, misalnya Nannochloropsis sp.,

Tetraselmis sp., Isochrysis sp., Pavlova sp., dan lain-lain.

Fitoplankton yang mampu disaring adalah Skeletonema sp.

dan Spirulina sp., selnya berbentuk benang dengan ukuran di

atas 20 µm.

Teknik pemanenan ada dua cara, yaitu panen total dan panen

parsial/harian. Panen total adalah kultur hanya satu siklus dan

dipanen seluruhnya. kelebihan cara ini adalah kultur pakan

alami secara murni, tetapi memiliki kelemahan antar lain

sering mengalami kegagalan pada tahap kultur awal karena

fitoplankton butuh adaptasi lingkungan. Sistem panen harian

adalah memanen fitoplankton sekitar 50-75% dari volume

total, kemudian diisi air laut sampai volume semula dan

dilakukan pemupukkan kembali. Kultur dengan cara ini dapat

dilakukan berulang-ulang hingga maksimal 8 siklus atau

dalam 2 bulan masa kultur. Sistem partial ini lebih baik, karena

fitoplankton lebih stabil, namun memiliki kelemahan yaitu

kemungkinan terjadinya kontaminasi bila pelaksanaan tidak

hati-hati dan tidak menjaga kesterilan media, wadah dan

peralatan lainnya.

Fitoplankton skala massal umumnya dapat digunakan

langsung sebagai pakan larva ikan atau secara tidak langsung

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


yaitu diberikan terlebih dahulu dalam kultur zooplankton yang

merupakan pakan larva ikan. Fitoplankton yang digunakan

langsung sebagai pakan larva ikan adalah Skeletonema sp.

dan Chaetoceros sp. yaitu untuk pakan larva udang. Di

samping sebagai pakan larva udang, Chaetoceros sp. juga

dapat digunakan sebagai pakan kopepoda yang merupakan

pakan awal kuda laut. Sedangkan Isochrysis sp., Pavlova sp.,

Navicula sp., dan Nitzschia sp. dapat digunakan sebagai

pakan larva teripang dan kekerangan. Nannochloropsis,

Tetraselmis dan Dunaliella merupakan pakan dalam kultur

Brachionus sp., Diaphanosoma dan Acartia. Fungsi lain

fitoplankton hijau adalah sebagai media pemeliharaan larva

ikan yang berguna bagi larva sebagai pelindung dari intensitas

cahaya yang kuat dan menetralisir gas beracun yang terdapat

dalam media pemeliharaan.

Pemanenan fitoplankton dilakukan dengan cara memindahkan

langsung fitoplankton bersama air media kultur ke bak

pemeliharaan zooplankton. Demikian juga halnya, bila akan

digunakan di bak pemeliharaan larva, namun terlebih dahulu

ditampung dalam wadah khusus, diletakkan lebih tinggi dari

bak larva, dan dialirkan secara gravitasi, perlahan sesuai

kebutuhan. Keuntungan teknik tersebut adalah jumlah

pemberian lebih tepat dan tidak mengganggu larva karena

pemasukan secara perlahan-lahan, jika dibandingkan

penggunaan pompa.

Pemanenan pakan alami jenis bentik mikroalga dapat

dilakukan dengan dua cara, pertama memindahkan substrat

yang telah ditumbuhi bentik mikroalga ke bak pemeliharaan

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


benih teripang atau kekerangan. Cara kedua pemanenan

langsung yaitu mikroalga yang menempel di kerok atau

digosok dan ditampung dalam wadah tersendiri, selanjutnya

dimasukkan ke dalam bak pemeliharaan, terutama untuk larva

teripang. Pemeliharaan kekerangan dan teripang tidak

memerlukan fitoplankton dalam jumlah besar, sehingga kultur

cukup dilakukan dalam ukuran semi massal (100-1000 lt).

Fitoplankton yang biasa digunakan sebagai pakan hidup

antara lain: Pavlova sp., Isochrysis sp., Chaetoceros sp.,

Phaeodactylum sp., Navicula sp., dan Nitzschia sp.

Pemanenan dengan cara panen langsung disesuaikan

dengan kebutuhan, karena apabila berlebihan dan

penyimpanan tidak di lemari pendingin, maka mikroalga

tersebut akan membusuk.

9. Menetaskan Kista Artemia

Unit kompetensi ini berlaku untuk melakukan kultur pakan

alami artemia yang dilakukan di bak fiber berbentuk bulat atau

kerucut, yang terdiri dari: menyiapkan peralatan, media kultur dan

kista artemia, melakukan dekapsulasi artemia, mengontrol proses

penetasan, mengontrol kualitas dan kuantitas air media

pemeliharaan, memanen artemia dan membuat laporan hasil

kultur artemia.

Makanan alami lain yang diperlukan oleh larva pada stadium

mysis dan Post Larva (PL) adalah Artemia salina. Artemia yang

dijual di pasaran umumnya berupa cyste atau telur, sehingga

untuk mendapatkan naupli artemia yang siap diberikan pada larva

sebagai makanan, cyste atau telur perlu didekapsulasi lebih

dahulu kemudian baru ditetaskan atau dikultur.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


a. Menyiapkan Peralatan penetasan

Ada beberapa sarana yang diperlukan untuk proses

dekapsulasi, salah satu yang paling penting adalah bak atau

tempat penetasan artemia. Bak penetasan artemia bisa

terbuat dari fiberglass, plastik atau dari bahan lainnya. Bak

penetasan yang paling mudah dibuat dan murah harganya

adalah ember plastik dengan kombinasi corong plastik pada

bagian bawahnya.

Bentuk spesifik yang harus dipenuhi oleh bak penetasan ini

adalah kerucut. Dengan bentuk kerucut, maka hanya dengan

menggunakan satu batu aerasi yang diletakkan pada bagian

tengah dasar bak sudah bisa mengaduk seluruh volume air

dalam bak secara merata. Dengan demikian semua cyste

atau telur artemia bisa menetas dengan baik, karena tidak

ada yang melekat atau mengendap di dasar bak.

Cara membuat bak penetasan artemia sangat mudah, hanya

diperlukan satu ember plastik volume 20 liter dan sebuah

corong plastik besar yang lebar bukaan mulutnya sama

dengan lebar bagian bawah yang digunakan. Pembuatannya

dengan cara memotong bagian bawah ember kurang lebih 5

cm dari dasar ember, kemudian menyambungnya dengan

corong plastik.

Bak penetasan dengan volume 20-25 liter ini sudah bisa

untuk menetaskan artemia sebanyak 150-200 gram dan

sudah cukup untuk memberi makan larva yang dipelihara

selama 3-4 hari. Selain dari bahan plastik, bak penetasan

artemia juga bisa dibuat dari bahan fiberglass, namun

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


harganya mahal sehingga kurang sesuai untuk pembenihan

udang skala rumah tangga.

b. menyiapkan Media Kultur

Ada enam langkah yang harus diikuti untuk

memperhitungkan jumlah Artemia yang ditambahkan ke

dalam bak pemeliharaan, yaitu:

1) Jumlah Artemia yang dibutuhkan =A

2) Kepadatan Artemia/ml yang ada dalam bak pemeliharaan

larva = B

3) A-B = C

4) C x Volume bak pemeliharaan larva dalam ml = D

5) Jumlah Artemia/liter dalam wadah penetasan = E

6) 𝐷

𝐸𝑥 1000= ml Artemia yang harus ditambahkan pada bak

pemeliharaan larva.

Saat ini sudah ada alat yang sederhana, cepat dan teliti

untuk menghitung larva udang dan naupli Artemia di pasaran.

c. Melakukan Dekapsulasi Artemia

Dekapsulasi adalah penanganan Cyste Artemia untuk

meningkatkan kemampuan menetas dengan cara

menghilangkan cangkang luar yang tebal sebelum menetas.

Dekapsulasi dan penetasan dimulai 24 jam sebelum waktu

(saat) naupli depergunakan sebagai makanan larva. Proses

dekapsulasi memerlukan waktu sekitar 30 menit dan cyst

dapat mencapai kemampuan menetas 90-100% dalam waktu

24 jam. Cyst Artemia yang tidak menetas dibuang. Wadah

penetasan Artemia biasanya berbentuk kerucut. Naupli

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Artemia yang menetas akan tenggelam bila aerasi dimatikan,

cyst Artemia yang tidak menetas mengapung sehingga naupli

Artemia dapat dengan mudah dipisahkan. A\Setiap gram cyst

Artema yang didekapsulasi dapat menghasilkan sekitar

200.000 naupli Artemia.

Bahan-bahan larutan dekapsulasi:

1. 71,0 ml larutan hipoklorite

2. 2,25 gr NaCl

3. 137,0 ml air laut (yang sudah disterilkan)

4. 0,1 NHCl

Metode dekapsulasi untuk 15 gram kista Artemia adalah

sebagai berikut:

1. Timbang kista Artemia secara hati-hati. Kista Artemia

dihidrasi dengan cara direndam dengan air tawar yang

telah dberi garam dapur (NaCl) dengan salinitas maksmal

35 permil pada botol ukuran 1 liter atau 2 liter yang diberi

aerasi selama 2 jam.

2. Tuangkan kista Artemia yang telah dihidrasi ke dalam

saringan 120 µ. Kista Artemia dicuci dengan air tawar

(selama 1 menit) dan dikeluarkan melalui pipa saluran di

dasar wadahnya.

3. Buat larutkan hipoklorit bisa berupa natrium hipoklorit/klorin

(NaOCl) dengan dosis 10 cc untuk satu gram kista atau

berupa kalsium hipoklorit/kaporit (Ca(Ocl)2 dengan dosis

0,67 gram untuk satu gram kista.

4. Kista yang sudah disaring dimasukkan ke dalam larutan

hipoklorit, diaduk serta diberi aerasi kuat. Suhu

dipertahankan di bawah 40 oC.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


5. Proses ini dinamakan dekapsulasi yang memakan waktu

5-15 menit ditandai dengan adanya perubaan warna kista

dari coklat gelap menjadi abu-abu lalu orange. Kista

Artemia sudah selesai terdekapsulasi ketika sudah tidak

ada lagi perubahan warna.

6. Kista Artemia (di atas yang tenggelam) disaring dengan

saringan 120 µ kemudian dicelupkan ke dalam larutan 0,1

NHCl selama 30 detik.

7. Selanjutnya kista dicuci dengan air laut sebanyak 6 kali

hingga bau klorin hilang. Pekerjaan ini harus dilakukan

karena sangat penting. Kista ini telah tak bercangkang

namun masih diselimuti oleh selaput embrio sehingga

masih perlu untuk ditetaskan.

8. Kista Artemia sekarang dimasukkan dalam wadah

penetasan berbentuk kerucut yang diisi dengan 8 liter air

laut.

9. Beri aerasi dengan kecepatan 10-20 liter hawa/menit.

Suhu dipertahankan antara 25-30 oC dengan pH 8-9.

10. Media penetasan diberi cahaya dari lampu TL dengan

intensitas minimum 1.000 lux dengan jarak lampu ke

wadah 20 cm. Penetasan akan berlangsung selama 24-

48 jam.

11. Setelah menetas kista Artemia siap dipanen.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan



1. Judul : Mendekapsulasi Artemia

2. Alat :

- Timbangan;

- Wadah penetasan artemia;

- Saringan 120 µ;

- Aerasi;

- Becker glass;

- Botol ukuran 1-2 liter

3. Bahan :

- 71,0 ml larutan hypochlorite;

- 2,25 gr NaCl;

- 137,0 ml air laut (yang sudah disterilkan);

- 0,1 NHCl;

- Kista Artemia;

- Air laut;

- Air tawar

4. Petunjuk : Gunakan pakaian kerja (wear pack), harap berhati-hati

dalam menggunakan alat dan kembalikan sesuai

kondisi semula.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


5. Langkah Kerja :

a. Timbang kista Artemia secara hati-hati. Kista Artemia dihidrasi

dengan cara direndam dengan air tawar yang telah dberi garam

dapur (NaCl) dengan salinitas maksmal 35 permil pada botol

ukuran 1 liter atau 2 liter yang diberi aerasi selama 2 jam;

b. Tuangkan kista Artemia yang telah dihidrasi ke dalam saringan

120 µ. Kista Artemia dicuci dengan air tawar (selama 1 menit)

dan dikeluarkan melalui pipa saluran di dasar wadahnya;

c. Buat larutkan hipoklorit bisa berupa natrium hipoklorit/klorin

(NaOCl) dengan dosis 10 cc untuk satu gram kista atau berupa

kalsium hipoklorit/kaporit (Ca(Ocl)2 dengan dosis 0,67 gram

untuk satu gram kista;

d. Kista yang sudah disaring dimasukkan ke dalam larutan

hipoklorit, diaduk serta diberi aerasi kuat. Suhu dipertahankan di

bawah 40 Oc;

e. Proses ini dinamakan dekapsulasi yang memakan waktu 5-15

menit ditandai dengan adanya perubaan warna kista dari coklat

gelap menjadi abu-abu lalu orange. Kista Artemia sudah selesai

terdekapsulasi ketika sudah tidak ada lagi perubahan warna;

f. Kista Artemia (di atas yang tenggelam) disaring dengan

saringan 120 µ kemudian dicelupkan ke dalam larutan 0,1 NHCl

selama 30 detik;

g. Selanjutnya kista dicuci dengan air laut sebanyak 6 kali hingga

bau klorin hilang. Pekerjaan ini harus dilakukan karena sangat

penting. Kista ini telah tak bercangkang namun masih diselimuti

oleh selaput embrio sehingga masih perlu untuk ditetaskan;

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


h. Kista Artemia sekarang dimasukkan dalam wadah penetasan

berbentuk kerucut yang diisi dengan 8 liter air laut;

i. Beri aerasi dengan kecepatan 10-20 liter hawa/menit. Suhu

dipertahankan antara 25-30 oC dengan pH 8-9;

j. Media penetasan diberi cahaya dari lampu TL dengan intensitas

minimum 1.000 lux dengan jarak lampu ke wadah 20 cm.

Penetasan akan berlangsung selama 24-48 jam;

k. Setelah menetas kista Artemia siap dipanen.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan



1. Makanan yang tumbuh sendiri dari tempat pemeliharaan

ikan ...

A. Pakan Alami

B. Pakan buatan

C. Pakan suppelmen

D. Pakan Tambahan

E. Pakan utama

2. Jenis pakan alami dapat berupa …

A. Nabati

B. Hewani

C. Nabati dan hewani

D. Nekton

E. Bentos

3. Organisme yang berukuran renik mengikuti arah arus dan

dapat melakukan proes fotosintesa mempunyai klorofil ...

A. Fitoplankton

B. Bentos

C. Nekton

D. Zooplanton

E. Plankton

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


4. Kultur plankton yang di lakukan di ruang tertutup dengan

bertujuan mendapatkan spesies murni (Mono Spesis) adalah

...

A. Kultur massal

B. Kultur semi masal

C. Kultur out door

D. Kultur murni

E. Kultur Indoor

5. Untuk menyakinkan alat yang akan di gunakan sudah

disterilisasi di keringkan kembali dengan suhu 100 oC selama

10 - 15 menit dengan menggunakan alat …

A. AC

B. Kulkas

C. Autoclave

D. Panci

E. Oven

6. Pada kultur skala massal (volume 10-100 m3), jenis pupuk yang

digunakan sebagai sumber nitrogen dan phospat adalah pupuk

pertanian adalah ...

A. TSP

B. KNO3

C. ZA

D. SP3

E. NPK

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


7. Salah satu cara untuk menetaskan kista Artemia dengan

menggunakan metode ...

A. Penggaraman

B. Perendaman

C. Dekonsentrasi

D. Dekapsulasi

E. Dekomposisi

8. Bentuk spesifik yang harus dipenuhi oleh bak penetasan ini

adalah kerucut. Berikut keuntungan bak penetasan berbentuk

kerucut, kecuali ...

A. Dengan menggunakan satu batu aerasi yang diletakkan

pada bagian tengah dasar bak sudah bisa mengaduk seluruh

volume air dalam bak.

B. Semua cyste atau telur artemia bisa menetas dengan baik,

karena tidak ada yang melekat atau mengendap di dasar

bak.

C. Kemudahan dalam membeli dan membuat peralatan

penetasan.

D. Kemudahan dalam memanen Artemia karena yang memiliki

keran pengeluaran dibagian bawah.

E. Memudahkan dalam memisahkan kista Artemia yang

menetas dan tidak menetas.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


9. Kista Artemia yang telah terdekapsulasi akan berubah warna

menjadi ...

A. Coklat gelap

B. Abu-abu

C. Orange

D. Coklat susu

E. Kuning terang

10. Cahaya yang terlalu kuat dapat menghambat pertumbuhan

fitoplankton, karena menyebabkan ..., sehingga kultur cenderung

kurang berhasil.

A. Suhu rendah

B. Suhu tinggi

C. Salinitas tinggi

D. Salinitas rendah

E. Blooming plankton


1. A

2. C

3. A

4. D

5. C

6. E

7. D

8. C

9. C

10. B

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


BAB IV

MENGENDALIKAN KESEHATAN IKAN/LARVA UDANG

A. Lembar Informasi

1. Melakukan Pengendalian Hama Ikan

Dalam budidaya ikan, serangan hama penyakit adalah

masalah dan aspek yang sangat penting, artinya penanggulangan

penyakit dan hama juga harus menjadi pengetahuan yang penting

bagi petani ikan dan siapa saja yang hendak membudidayakan

ikan. Sebab penyerangan penyakit maupun gangguan hama

dapat mengakibatkan kerugian ekonomis.

Serangan penyakit dan gangguan hama dapat menyebabkan

pertumbuhan ikan menjadi lambat (kekerdilan), padat tebar sangat

rendah, konversi pakan sangat tinggi, periode pemeliharaan lebih

lama, yang berarti meningkatnya biaya produksi. Dan pada tahap

tertentu, serangan penyakit dan gangguan hama tidak hanya

menyebabkan menurunnya hasil panen (produksi), tetapi pada

tahap yang lebih jauh dapat menyebabkan kegagalan panen.



a. PRK.AP02.034.01 dengan judul unit: Mengidentifikasi Hama

Yang Menyerang Ikan.

b. PRK.AP02.035.01 dengan judul unit: Mengidentifikasi Penyebab

Penyakit Ikan.

c. PRK.AP02.036.01 dengan judul unit: Mencegah Hama Yang

Menyerang Ikan.

d. PRK.AP02.037.01 dengan judul unit: Mengobati Ikan Sakit.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Agar para pembudidaya ikan mampu mencegah serta

mengatasi serangan penyakit dan gangguan hama yang terjadi

pada ikan pemeliharaannya, maka mereka perlu dibekali

pengetahuan mengenai sumber masuknya hama, penyebab, dan

jenisnya serta teknik-teknik penanggulangan hama.

a. Faktor-Faktor Timbulnya Hama

Lingkungan budidaya yang tertata baik belumlah cukup untuk

menjamin keberhasilan usaha budidaya, karena organisme

hama dapat masuk melalui berbagai media seperti air,

manusia dan peralatan budidaya. Sikap pelaku budidaya

untuk tidak membuang hama ikan yang sudah mati misalnya

ke lingkungan, mensucihamakan peralatan yang akan

digunakan serta mengolah limbah sebelum dibuang ke

lingkungan adalah hal-hal yang belum sepenuhnya dilakukan

secara benar.

Untuk itu perawatan ikan yang meliputi pemeliharaan dengan

pengelolaan lingkungan atau kualitas air, penggunaan alat-

alat budidaya dengan baik dan hygienies, penanganan ikan

dengan cermat hendaknya selalu dilakukan.

Keberadaan hama ikan di areal budidaya dapat disebabkan

oleh faktor-faktor :

1) Persiapan Lahan Yang Kurang Baik

Pada saat akan dilakukannya usaha budidaya ikan, baik

pembenihan, pendederan, maupun pembesaran, akan

dilakukan tahapan persiapan kolam (dekontaminasi

kolam) meliputi proses pengapuran, pemupukan dan

pemberantasan hama penyakit ikan. Salah satu tujuan

pengapuran adalah membunuh bakteri patogen dan

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


organisme hama (eradikasi). Jika tahapan pemberantasan

hama dan penyakit ini tidak dilakukan, maka hama ikan

akan bebas hidup dan tumbuh bersama benih ikan yang

dibudidayakan, sehingga hama akan menyerang dan

menimbulkan penyakit pada ikan. Akibatnya, dapat

menimbulkan kematian pada ikan yang dibudidayakan.

2) Konstruksi Wadah

Konstruksi wadah dapat memicu timbulnya hama ikan.

Wadah budidaya yang bersifat terbuka (outdoor) seperti

kolam memudahkan hama untuk masuk, seperti melalui

pematang, saluran air, pintu masuk air (inlet), atau melalui

permukaan air atau tanaman yang ada di pinggir kolam.

Sedangkan wadah yang bersifat tertutup, seperti akuarium

dan hatchery cukup aman dari serangan hama, tetapi si

pemilik wadah budidaya itu harus senantiasa waspada

akan keberadaan hama ikan.

3) Letak Wadah Budidaya

Wadah budidaya yang berdekatan dengan tempat hidup

hama, seperti di luar ruangan, atau tanpa atap, dekat

dengan sungai akan memudahkan masuknya hama ke

dalam kolam/wadah budidaya. Contohnya linsang, hal ini

dipicu oleh adanya sumber makanan yang lebih terjamin di

dalam kolam, sehingga mereka akan menyerang ikan

budidaya.

Keberadaan hama juga dapat masuk bersama-sama

dengan tanaman air yang digunakan di wadah budidaya

baik sebagai assesoris (hiasan) atau untuk keperluan

budidaya lainnya. Untuk itu kebersihan tanaman air harus

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


selalu dijaga dengan mencucinya menggunakan air bersih

atau direndam dalam PK (Kalium Permanganat) bila

diperlukan.

Hama ikan sering dikenal juga dengan hewan tingkat tinggi

yang secara langsung maupun tidak langsung mengganggu

kehidupan ikan dengan cara mengisap cairan atau

memakan sebagian atau seluruh tubuh ikan budidaya.

Serangan hama pada umumnya lebih banyak terjadi pada

pendederan dan pembesaran ikan, karena biasanya

kegiatan tersebut biasanya dilakukan di alam terbuka,

sedangkan pembenihan ikan dilakukan di ruangan / areal

tertutup.

Upaya pemberantasan hama merupakan bagian penting

kegiatan budidaya terutama untuk golongan predator,

kompetitor dan segala jenis hewan perusak..Untuk

mengendalikan hama ikan dapat dilakukan dua

pendekatan, yaitu pencegahan dan penanggulangan.

2. Pemberantasan hama

Pemberantasan hama dapat dikelompokkan menjadi 3 (tiga)

cara yaitu :

a. Mekanis

Merupakan pengendalian hama tanpa menggunakan bahan

kimia, dengan cara memburu, menangkap, membunuh hama

dengan menggunakan peralatan mekanis seperti jala, jaring,

pancing, parang, tombak, dan cangkul. Dalam kondisi serangan

hama yang sudah parah, tindakan yang dapat dilakukan adalah

memindahkan ikan budidaya dan memisahkannya dari hama.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Sementara itu tindakan pengendalian hama khususnya pada

tambak dilakukan dengan cara seperti :

1) Sebelum benur ditebar, usahakan agar tambak dikeringkan

secara total agar semua organisme mati dan pengeringan

dasar tambak dapat membantu memperbaiki struktur tanah

(Gambar 4).

Gambar 5. Pengeringan tambak

2) Lubang-lubang pada pematang sebaiknya diperbaiki, jika

terdapat lubang dapat dilakukan penyumbatan. Cara lain

adalah dengan melapisi tanggul dengan plastik (Gambar ).6

Gambar 6. Melapisi tanggul dengan plastik

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


3) Dilakukan dengan menangkapi udang liar, ikan, kepiting

dan ular. Cara ini sangat efektif jika dilakukan teratur

sehingga menghemat biaya pembelian pestisida.

b. Kimia

Merupakan metode pemberantasan hama menggunakan bahan

kimia untuk meracuni hama sehingga hama terganggu, sakit

dan mati. Bahan kimia yang disarankan adalah pestisida

organik seperti saponin dan akar tuba. Dalam keadaan biasa,

air garam dapat diberikan untuk membunuh hama atau hewan

kecil seperti lintah. Jika cara mekanis mengalami hambatan

maka cara kimiawi dapat digunakan tetapi tetap harus hati-hati

dalam pemilihan jenis maupun dosis yang digunakan. Cara

kimiawi lebih menguntungkan dalam hal tenaga dan waktu.

c. Biologis

Pengendalian hama secara biologis dilakukan dengan

mengeliminasi hama dengan dampak negatif bagi lingkungan

dan kesehatan manusia yang sesedikit mungkin seperti

menggunakan bakteri pengurai dan tanaman air. Pengendalian

hama secara biologis menekankan pada upaya pemeliharaan

benih yang tahan atau bisa terhindar dari serangan hama.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

http://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Pengendalian_hama_secara_biologis&action=edit&redlink=1


3. Secara detail, beberapa tehnik pengendalian

hama-hama ikan diuraikan sebagai berikut :

a) Pengendalian Burung

Pengendalian burung dengan melakukan pengawasan

terhadap unit-unit usaha pembenihan (kolam pendederan atau

bak benih). Atau dengan melakukan pengusiran jika melihat

kehadiran burung, membuat penghalang dari bambu dan diberi

rumbai/tali pada kolam sehingga burung tidak dapat menerkam

ikan (Gambar 7). Atau dengan menyingkirkan ranting/dahan

pohon mati di sekitar kolam sehingga tidak ada tempat

bertengger burung predator ikan.

Gambar 7. Penghalang burung menggunakan jaring

b) Pengendalian Labi-labi

Cara mudah adalah dengan menangkap labi-labi dengan

serok/tangguk, memancing dengan umpan daging seperti anak

ayam/ikan, atau dengan secara rutin melakukan pembersihan

kolam, tempat pembenihan dan sekitarnya seperti di lingkungan

luar kolam sebagai lokasi persembunyian labi-labi, walaupun

tidak ada petunjuk yang jelas sebagai indikator keberadaan

labi-labi di lingkungan budidaya. Beberapa petunjuk yang dapat

dijadikan patokan untuk keberadaan labi-labi adalah tidak

adanya bangkai ikan yang mati tetapi hasil sampling terhadap

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


populasi ikan mengalami penurunan, air kolam menjadi keruh

karena labi-labi menyelam ke dalam lumpur (Gambar 8).

Gambar 8. Hama labi-labi

c) Pengendalian Kodok

Ada 3 (tiga) cara yaitu dengan perbaikan sarana perkolaman,

pengontrolan kebersihan lokasi dan pembuangan telur-telur

kodok (Gambar 9).

Gambar 9. Hama Kodok

d) Pengendalian Ular

Dengan cara menangkap langsung atau dengan cara

pemberian pagar sehingga ular tidak dapat masuk ke area

perkolaman (Gambar 10).

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 10. Hama Ular

e) Pengendalian Biawak

Dengan cara menangkap menggunakan jerat atau kail yang

dipasang pada tempat-tempat yang biasa didatangi oleh biawak

(Gambar 10).

Gambar 11. Hama Biawak

f) Pengendalian Lingsang/Sero

Dengan cara memasang rintangan berupa ranting bambu di

kolam atau memasang jaring pengaman dari bahan tambang

yang kuat. Pemagaran dan pemasangan lampu penerangan di

bagian-bagian tertentu sangat efektif juga untuk mencegah

keberadaan lingsang (Gambar 12).

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 12. Hama Linsang

g) Pengendalian Kepiting

Dengan cara memberantas secara langsung yakni dengan

membunuh atau menangkapi kepiting di luar dan di lubang-

lubang tanggul. Atau dengan cara menaburkan sekam padi ke

dalam lubang-lubang kepiting sehingga akan keluar dan pindah

ke tempat lain (Gambar 13).

Gambar 13. Hama Kepiting

h) Pengendalian Belut

Dengan cara menangkap menggunakan tangan kosong atau

alat khusus menangkap belut seperti pancing yang diberi

umpan ikan kecil/anak kodok atau dengan bubu yang sudah

diberi umpan dan dibenamkan ke dalam lumpur pada sore hari.

Ada juga yang menggunakan racun/tuba untuk membunuh

belut pada saat pengeringan kolam (Gambar 14).

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 14. Hama belut

i) Pengendalian Ikan Gabus

Dengan cara memasang saringan dari ijuk pada saluran

pemasukan air secara rapat sehingga telur, anak ikan dan ikan

gabus dewasa tidak ikut masuk ke kolam bersama aliran air.

Atau dengan cara menangkapnya menggunakan pancing yang

sudah diberi umpan ikan kecil, cacing atau anak kodok. Pada

saat pengolahan lahan untuk mencegah masuknya gabus ke

kolam, dasar kolam harus benar-benar kering sampai retak-

retak karena kondisi ini akan menyulitkan bagi ikan gabus untuk

dapat bertahan hidup (Gambar 15).

Gambar 15. Hama Ikan Gabus

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


j) Pengendalian Kini-kini/Larva capung

Dapat dilakukan secara mekanis, biologis dan kimiawi. Secara

mekanis adalah dengan cara mengendalikan

perkembangbiakan induk, telur serta larva capung melalui

kegiatan sanitasi/kebersihan pematang atau tanggul kolam baik

dari rerumputan/semak ataupun perdu. Sedangkan secara

biologis dititikberatkan pada upaya pemeliharaan terhadap

benih yang tahan atau bisa terhindar dari serangan kini-kini

artinya dengan memanfaatkan kelemahan kini-kini dan

kelebihan jenis ikan tertentu. Pengendalian secara kimiawi

umumnya dilakukan sebagai alternatif akhir karena

menggunakan pestisida/insektisida (Gambar 16).

Gambar 16. Hama Kini-kini/Larva capung

k) Pengendalian Ucrit/Larva Cybister

Dengan cara menghindari bahan organik yang menumpuk di

sekitar kolam, memasang saringan pada pintu air masuk kolam.

Penangkapan dengan jumlah banyak dapat dilakukan dengan

menggunakan alat tangkap seser. Pemberantasan ucrit dapat

dilakukan dengan penyemprotan bahan kimia, walaupun ini

merupakan solusi akhir jika populasi ucrit sulit diberantas

secara mekanis. Bahan kimia yang umumnya digunakan

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


adalah minyak tanah, yang disemprotkan di permukaan air

kolam sehingga ucrit yang ada di kolam tidak dapat mengambil

oksigen dari udara bebas dan akhirnya mematikan ucrit

(Gambar 17).

Gambar 17. Hama Ucrit/ Larva Cybister

l) Pengendalian Notonecta/Bebeasan

Dengan cara memasang saringan berupa filter dari bahan

kawat halus atau kain kassa halus pada pintu masuknya air

untuk mencegah telur dan benih Notonecta masuk ke air.

Pemberantasan dianjurkan menggunakan minyak tanah

dengan cara memercikkan minyak tanah ke permukaan air

sebanyak 500 cc/100 m2 luas permukaan kolam. Notonecta

akan mati karena stigma atau alat pernafasannya kemasukan

minyak tanah. Yang perlu diingat adalah pada saat pemberian

minyak tanah, agar mendapatkan hasil yang efektif maka pintu

air masuk dan keluar harus ditutup (Gambar 18).

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Gambar 18. Hama Notonecta

4. Melakukan Pengendalian Penyakit Ikan

Timbulnya serangan penyakit ikan di kolam merupakan hasil

interaksi yang tidak serasi antara ikan, kondisi lingkungan dan

organisme penyakit. Interaksi yang tidak serasi ini telah

menyebabkan stress pada ikan, sehingga mekanisme pertahanan

diri yang dimilikinya menjadi lemah dan akhirnya mudah diserang

oleh penyakit.

Hubungan antara parasit, ikan (inang) dan faktor lingkungan

terhadap terjadinya penyakit (yang disebut Interaksi Tripel)

digambarkan dalam diagram Venn pada Gambar 19.

Gambar 19. Diagram Venn Interaksi Triple

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Inang dapat berupa ikan atau hewan air lainnya dimana daya

tahan tubuh inang terhadap serangan penyakit dipengaruhi oleh

faktor-faktor antara lain : umur dan ukuran, jenis, daya tahan

tubuh dan status kesehatan ikan. Menurut Sachlan dalam Afrianto

(1992), penyakit ikan adalah segala sesuatu yang dapat

menimbulkan gangguan pada ikan, baik secara langsung maupun

tidak langsung.

Penyakit ikan dapat dibedakan menjadi dua, yaitu :

a. Penyakit Parasiter/Infektif (Infectious disease) adalah

penyakit yang disebabkan oleh aktivitas organisme parasit.

Organisme yang sering menyerang ikan peliharaan antara

lain virus, bakteri, jamur, protozoa, golongan cacing dan

udang renik. Bakteri dan virus akan menyebabkan infeksi

pada ikan budidaya, sementara yang disebabkan oleh

parasit akan mengakibatkan investasi pada ikan budidaya. ;

b. Penyakit Non Parasiter/Non Infektif (Non Infectious disease)

adalah penyakit yang disebabkan bukan oleh hama maupun

organisme parasit. Penyakit ini dapat dikelompokkan menjadi

tiga berdasarkan faktor penyebabnya, yaitu:

1) Lingkungan

Penyakit non parasiter yang disebabkan oleh faktor

lingkungan yang kurang menunjang bagi kehidupan ikan,

antara lain pH air terlalu tinggi/rendah, kandungan oksigen

terlarut terlalu tinggi/rendah, perubahan temperatur air

secara tiba-tiba, adanya gas beracun hasil penguraian

bahan organik (gas metan, ammonia atau asam

belerang), adanya polusi dari pestisida (insektisida atau

herbisida), limbah industri atau limbah rumah tangga.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Dalam budidaya laut khususnya, penyebab penyakit non

parasiter (non infektif/infectious disease) akibat lingkungan

dapat berupa :

a) Faktor kimia dan fisika, antara lain: perubahan

salinitas air secara mendadak; pH yang terlalu

rendah (air asam), pH yang terlalu tinggi (air basa /

alkalis); kekurangan oksigen dalam air; zat beracun,

pestisida (insektisida, herbisida dan sebagainya);

perubahan suhu air yang mendadak; kerusakan

mekanis (luka-luka); perairan terkena polusi.

b) Stres : stres yang terjadi pada ikan berkaitan dengan

timbulnya penyakit pada ikan tersebut. Stres

merupakan suatu rangsangan yang menaikan batas

keseimbangan psikologi dalam diri ikan terhadap

lingkungannya. Biasanya stres pada ikan diakibatkan

perubahan lingkungan akibat beberapa hal atau

perlakuan misalnya akibat pengangkutan

/transportasi ikan-ikan yang dimasukan kedalam

jaring apung di laut dari tempatpengangkutan

biasanya akan mengalami shock, berhenti makan

dan mengalami pelemahan daya tahan terhadap

penyakit.

c) Kepadatan ikanyang melebihi daya dukung perairan

(carrying capacity) akan menimbulkan persaingan

antar ikan tinggi, oksigen terlarut menjadi rendah dan

sisa metabolisme seperti ammonia akan meningkat

sehingga dapat menimbulkan stres dan merupakan

penyebab timbulnya serangan penyakit.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


2) Pakan/ Nutrisi

Salah satu penyakit non parasiter akibat pakan adalah

kelaparan. Kelaparan merupakan kekurangan nutrisi yang

bersifat absolut. Kelaparan pada ikan menunjukkan gejala

seperti anemia dan hambatan pertumbuhan. Contoh

lainnya adalah penyakit yang disebabkan karena kualitas

pakan yang diberikan kurang baik (malnutrition) antara

lain karena kekurangan vitamin, gizinya rendah, bahan

pakan yang digunakan telah busuk atau mengandung

racun.

3) Turunan

Penyakit yang disebabkan oleh turunan, misalnya bentuk

fisik dan kelainan- kelainan tubuh yang sudah ada sejak

lahir, seperti tubuh bengkok, larva ikan yang cacat, sisik

tidak lengkap atau sirip melengkung. Bentuk fisik dan

kelainan-kelainan tubuh yang disebabkan oleh keturunan,

dimana faktor keturunan sangat berpengaruh langsung

terhadap penampilan fisik ikan. Untuk mencegahnya

harus dilakukan seleksi induk yang ketat pada saat

melakukan breeding. Variasi genetika ini juga dapat

menyebabkan terjadinya kanibalisme, tutup insang yang

tidak dapat menutup sempurna, ikan menjadi kerdil dan

cacat.

Secara garis besar kondisi ikan sakit atau penyakit

digolongkan menjadi 2 (dua) kelompok penyebab penyakit

ikan yang harus selalu diwaspadai oleh para petani ikan

dan hobiis (kolektor) ikan, yaitu kelompok penyakit

patogen dan kelompok penyakit non patogen. Kelompok

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


penyakit patogen diartikan sebagai kelompok penyakit

yang disebabkan oleh jasad hidup berupa parasit, jamur,

bakteri dan virus dan biasanya menyebabkan infeksi pada

ikan yang diserangnya. Sedangkan kelompok non

patogen adalah kelompok penyakit yang disebabkan oleh

bukan jasad hidup, antara lain disebabkan oleh

perubahanlingkungan seperti kepadatan ikan terlalu tinggi,

variasi lingkungan (oksigen, suhu, pH, salinitas, dsb.),

biotoksin (toksin alga, toksin zooplankton, dsb.), polutan,

rendahnya mutu pakan, dan lain-lain.

Berikut ini beberapa tanda udang yang dapat menjadi

patokan akan adanya serangan penyakit yaitu :

a) Udang terlihat pasif, lemah dan terjadi perubaan

tingkah laku;

b) Nafsu makan menurun, bahkan pada udang yang

sangat lemah tidak ada nafsu makan sama sekali.

Di kolam/tambak di mana terdapat organisme predator

umumnya sulit dideteksi, karena tubuh ikan/udang yang

diserang akan habis dimangsa. Untuk mengetahui

organisme predator perlu dilakukan pengamatan terhadap

jenis ikan atau organisme predator lainnya yang ada di

kolam.

Penyakit yang disebabkan oleh adanya senyawa beracun di

dalam kolam umumnya sulit untuk diidentifikasi, sebab efek

dari senyawa beracun ini terhadap ikan relatif cepat,

sehingga petani sering terlambat untuk mengatasinya.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Untuk mencegah timbulnya penyakit pada ikan budidaya

dapat dilakukan hal-hal sebagai berikut :

a) Melakukan persiapan lahan yang benar, yaitu

pengeringan, pengapuran dan pemupukan.

Pengeringan bertujuan untuk memutus siklus hidup

penyakit, dilakukan kira-kira selama tiga minggu

sampai dasar kolam retak-retak. Pengapuran

digunakan untuk menstabilkan pH tanah dan air

serta dapat membunuh bakteri dan parasit.

Pemupukan digunakan untuk menyuburkan kolam

dan menumbuhkan fitoplankton sebagai pakan

alami.

b) Menjaga kualitas air pada saat pemeliharaan. Hal ini

dapat dilakukan dengan cara treatment di tambak

menggunakan probiotik secara teratur setiap hari.

Probiotik akan mendegradasikan bahan organik,

menguraikan gas beracun dan menekan

pertumbuhan bakteri merugikan penyebab timbulnya

penyakit.

c) Meningkatkan ketahanan tubuh ikan/udang melalui

kekebalan non spesifik dengan aplikasi

immunostimulan secara teratur seperti vitamin,

betaglukan dan lipopolisacaridae (LPS).

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


5. Jenis Obat dan Bahan Kimia

Mencegah lebih baik dari mengobati adalah prinsip yang tepat

untuk mengatasi setiap gangguan penyakit ikan. Mencegah

penyakit akan jauh lebih baik dari mengobatinya. Namun, apabila

ikan/udang kita sudah terlanjur terinfeksi penyakit, pengobatan

dapat dilakukan dengan menggunakan berbagai jenis obat dan

bahan kimia.Pada tahap awal, seorang petani ikan hendaknya

memiliki kemampuan dan keterampilan untuk mengenal tanda-

tanda awal dari ikan/udang yang terkena penyakit. Ini sangat

diperlukan agar tindakan pencegahan dan pengendalian terhadap

serangan penyakit tersebut juga dapat dilakukan secara dini.

Pengobatan merupakan suatu usaha yang dilakukan oleh

para pembudidaya ikan jika ikan yang dipelihara terserang

penyakit. Sebelum melakukan pengobatan terhadap ikan/udang

yang sakit, terlebih dahulu harus diketahui jenis penyakit yang

menyebabkan ikan/udang sakit agar dapat diketahui jenis obat

yang akan digunakan untuk menyembuhkan penyakit tersebut.

Ada tiga hal yang harus diperhatikan oleh para pembudidaya ikan

yang akan melakukan pengobatan terhadap beberapa jenis

penyakit infeksi yaitu:

a. Jika penyakit ikan/udang disebabkan oleh virus maka tidak

ada obat yang dapat memberantas virus tersebut. Yang bisa

dilakukan adalah mengurangi hal-hal yang menyebabkan

terjadinya penyakit.

b. Jika penyakit disebabkan oleh bakteri maka obat yang dapat

digunakan adalah bahan kimia sintetik atau alami atau

antibiotika.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


c. Jika penyakit disebabkan oleh jamur dan parasit maka obat

yang digunakan adalah bahan kimia.

Pengobatan ikan sakit dapat dilakukan beberapa metoda.

Metoda yang dilakukan harus mempertimbangkan antara lain;

ukuran ikan, ukuran wadah, bahan kimia atau obat yang diberikan

dan sifat ikan. Beberapa metoda pengobatan adalah sebagai

berikut :

a. Melalui suntikan dengan antibiotika.

Metoda penyuntikan dilakukan bila yang diberikan adalah

sejenis obat seperti antibiotik atau vitamin. Penyuntikan

dilakukan pada daerah punggung ikan yang mempunyai

jaringan otot lebih tebal. Penyuntikan hanya dilakukan pada

ikan yang berukuran besar terutama ukuran induk. Sedangkan

yang kecil tidak dapat dilakukan.

b. Melalui makanan.

Obat atau vitamin dapat diberikan melalui makanan. Akan

tetapi bila makanan yang diberikan tidak segera dimakan ikan

maka konsentrasi obat atau vitamin pada makanan akan

menurun karena sebagian akan larut dalam air. Oleh karena

itu metoda ini afektif diberikan pada ikan yang tidak

kehilangan nafsu makannya.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


c. Perendaman

Metoda perendaman dilakukan bila yang diberikan adalah

bahan kimia untuk membunuh parasit maupun

mikroorganisme dalam air atau untuk memutuskan siklus

hidup parasit. Pengobatan ikan sakit dengan metoda

perendaman adalah sebagai berikut:

a. Pengolesan dengan bahan kimia atau obat, metoda ini

dilakukan bila bahan kimia atau obat yang digunakan dapat

membunuh ikan, bahan kimia atau obat dioleskan pada

luka di tubuh ikan.

b. Pencelupan; Ikan sakit dicelupkan pada larutan bahan

kimia atau obat selama 15 – 30 detik, metoda ini pun

dilakukan bila bahan kimia atau obat yang digunakan dapat

meracuni ikan.

c. Perendaman; dilakukan bila bahan kimia atau obat kurang

sifat racunnya atau konsentrasi yang diberikan tidak akan

membunuh ikan.Pada perendaman jangka pendek (5 – 15

menit) dapat diberikan konsentrasi yang lebih tinggi

daripada pada perendaman dengan waktu yang lebih lama

(1 jam lebih sampai beberapa hari).

Jenis bahan kimia dan obat yang digunakan dalam

pengobatan dan pencegahan harus mempertimbangkan

antara lain:

1) Dalam dosis tertentu tidak membuat ikan stress maupun

mati

2) Efektif dapat membunuh parasit

3) Sifat racun cepat menurun dalam waktu tertentu.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


4) Mudah mengalami degradasi dalam waktu

singkat.

6. PerhitunganDosis Obat dan Metode Pengobatan

Dosis obat yang digunakan sangat tergantung pada penyebab

penyakit, tingkat serangan penyakit, dan jenis obat yang

digunakan. Penyakit patogen pada ikan dapat disebabkan oleh

bakteri, virus dan jamur. Berikut adalah jenis dan dosis obat yang

digunakan untuk tiap-tiap jenis serangan:

1. Virus patogen pada udang

Ada beberapa jenis virus yang sering ditemukan

menyerang udang, yaitu :

1) Invefecttious Myonecrosis Virus (IMNV)

IMNV pertama kali dilaporkan di wilayah Brazil pada tahun

2002 dan saat ini sudah tersebar luas di berbagai sentra

budidaya udang di Indonesia serta menimnbulkan

kerugian yang cukup besar.

IMNV dapat menyerang secara tunggal dan tergolong

ganas karena bisa mematikan udang berumur 60-80 hari

dalam sekejap atau tingkat kematian antara 10-30%, dan

bahkan ada yang mencapai 60%. Jenis virus ini dapat

menyerang bersamaan dengan jenis virus lain (multi

infection) terutama Taura Syndrome Virus (TSV) dan/atau

White Spot Syndrome Virus (WSSV) dengan tingkat

kematian yang signifikan.

Ancaman infeksi IMNV pada budidaya udang vanname

belum dapat ditanggulangi secara optimal. Berbagai

upaya penanggulangan telah dilakukan untuk mengatasi

penyakit tersebut, salah satu strategi penanggulangan

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


yang masih terus dikaji oleh para praktisi adalah melalui

penerapan “Good Management Practices” yang intinya

berusaha meningkatkan status kesehatan udang dan

meminimalisir sumber penyakit secara fisikal, kimia,

biologs, dan ekologis. Namun hingga kini belum tersedia

teknologi penanggulangan penyakit yang memiliki tingkat

keberhasilan dan kesesuaian yang tinggi terhadap variasi

kondisi pertambakan di Indonesia.

Karakteristik serangan IMNV ditandai dengan adanya

nekrosis berwarna keputihan pada jaringan otot atau

daging terutapa pada daerah 2 ruas belakang di depan

ekor serta pada pangkal ekor. Beberapa gejala klinis

serangan IMNV, yaitu:

a) Awalnya udang makan dengan baik, pertumbuhan

fisiknya pun bagus. Namun, ketika mencapai umur 60-

80 hari, tiba-tiba nafsu makannya turun drastis;

b) Dagingnya berwarna putih keruh, kemudian tepi

pleura udang bersemburat merah seperti udang

rebus;

c) Bentuk usus saat diamati berkelok-kelok dan terjadi

pembengkakan pada kelenjar limpa;

d) Perut udang kosong, dan bagian pangkal ekornya

pucat;

e) Otot-otot daging mengalami nekrosis, mengkerut di

kepala, termasuk terjadi perubahan patologi pada

jaringan hepatopankreas.

Berdasarkan penelitian menunjukkan bahwa gejala klinis

tersebut terjadi pada udang vanname, namun hal yang

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


sama tidak terjadi pada udang windu (Penaeus monodon)

dikarenakan udang tersebut memiliki karapas yang cukup

tebal. Setelah diinfeksi selama satu bulan tidak terjadi

kematian pada udang windu. Hal tersebut menyimpulkan

bahwa udang vanname merupakan spesies yang paling

rentan terhadap IMNV.

2) Early Mortality Syndrome (EMS)

Dikenal juga sebagai Acute Hepatopancreatic Necrosis

Disease (AHPND) yang disebabkan oleh serangan bakteri

Vibrio parahaemolyticus yang telah terinfeksi oleh virus

yang diketahui sebagai fag sehingga bekteri dapat

melepaskan racun. Penyakit ini menyerang udang windu

(P. monodon) dan udang vaname (L. vannamei) (gambar

20). Gejala klinis serangan dapat terlihat pada 10-30 hari

setelah masa tebar. Kematian dapat mencapai 40-100%

dalam waktu 4 hari.

Gambar 20. Penyakit Early Mortality Syndrome (EMS)

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Penanganan udang yang terinfeksi EMS dengan cara

memusnahkan semua udang yang terinfeksi. Lakukan

desinfeksi air tambak dengan chlorine 200 pppm selama 1

hari. Segera laporkan ke UPT Badan Karantina Ikan

Pengendalian Mutu dan keamanan Hasil Perikanan

setempat.

Beberapa kegiatan berikut ini juga bermanfaat untuk

mengendalikan serangan penyakit ikan/udang yaitu:

a) Pengaliran Air

Pengaliran air adalah salah satu cara untuk mengatasi

serangan penyakit ikan/udang di kolam/tambak,

disebabkan oleh senyawa beracun atau kualitas air

kolam yang kurang memenuhi syarat. Pengaliran

dimaksudkan untuk mengencerkan senyawa beracun

atau menciptakan kondisi lingkungan kolam yang lebih

baik, sehingga daya tahan tubuh ikan tetap baik.

Adanya aliran air yang lancar akan menghanyutkan

sisa pakan dan hasil ekskresi, sehingga tidak terdapat

senyawa beracun hasil dekomposisi bahan tersebut.

Aliran air juga dapat mempertahankan temperatur dan

konsentrasi oksigen di tambak tetap menunjang

kehidupan udang.

b) Pengeringan tambak

Sering dijumpai kematian udang di tambak

disebabkan masuknya senyawa racun ke dalam

tambak, baik disengaja maupun tidak. Penggunaan

insektisida untuk pertanian maupun buangan limbah

industri yang tidak dilakukan secara hati-hati dapat

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


menyebabkan masuknya senyawa beracun tersebut

ke dalam tambak dan menimbulkan masalah penyakit.

Untuk mengatasi kematian udang secara masal

karena keracunan sebaiknya dilakukan penutupan

saluran pemasukan air dan memindahkan udang yang

terkena racun secepat mungkin ke tambak lain atau

saluran air yang tidak tercemar oleh racun atau limbah

industri. Tindakan selanjutnya adalah mengeringkan

tambak selama beberapa hari agar daya racun dari

senyawa tersebut menjadi lemah.

Penanganan terhadap ikan sakit dapat dibagi atas 2

(dua) langkah yaitu :

a) Berdasarkan tehnik budidaya yaitu berupa

tindakan-tindakan menghentikan pemberian pakan

pada udang, mengganti pakan dengan jenis lain,

mengelompokkan udang menjadi kelompok yang

kepadatan/densitasnya rendah, dan bila tidak

memungkinkan lagi maka udang dapat dipanen

daripada menjadi wabah bagi udang lainnya;

b) Berdasarkan terapi kimia yaitu berupa pemeriksaan

kepekaan dari masing-masing obat yang telah dan

akan digunakan, pemeriksaan batas dosis yang

aman untuk masing-masing obat agar tidak terjadi

over dosis, dan memperhatikan keterangan yang

dikeluarkan oleh pabrik obat tersebut.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


7. Propilaksis dan Terapi Ikan

Propilaksis atau profilaksis merupakan prosedur pencegahan

penyakit. Propilaksis terbagi menjadi dua, yaitu 1) mencegah

munculnya serangan penyakit, 2) mencegah ikan/udang yang

sudah tertular untuk tidak semakin memburuk dan masih bisa

diselamatkan. Propilaksis dapat dilakukan dengan cara vaksinasi

dan seleksi udang yang tahan terhadap infeksi penyakit serta

dengan memberikan vaksin dan immunostimulan atau ikan

diberikan vitamin untuk meningkatkan daya tahan tubuhnya.

Terapi ikan/udang merupakan tindakan pengobatan yang

dilakukan terhadap ikan/udang yang terserang penyakit. Terapi

ikan/udang terbagi menjadi dua, yaitu: Terapi abortive adalah

pengobatan yang dimaksudkan untuk menghentikan kondisi medis

dari perkembangan lebih lanjut. Pengobatan yang dilakukan pada

tanda-tanda paling awal dari munculnya penyakit.

Terapi supportive adalah suatu terapi untuk meningkatkan

kenyamanan ikan yang terserang penyakit untuk mempercepat

penyembuhan, misalnya dengan mengurangi kepadatan dan

meningkatkan kualitas air.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan



1. Judul : Melakukan tindakan pengobatan ikan melalui

Perendaman

2. Alat :

- Timbangan gantung;

- Timbangan digital;;

- Serok/seser;

- Ember;

- Kayu pengaduk

3. Bahan :

- Obat penghilang parasit;

- Air tawar

4. Petunjuk : Gunakan pakaian kerja (Wear pack), harap berhati-

hati dalam menggunakan alat dan kembalikan

sesuai kondisi semula.

5. Langkah Kerja :

a. Perendaman; dilakukan bila bahan kimia atau obat kurang

sifat racunnya atau konsentrasi yang diberikan tidak akan

membunuh ikan;

b. Pada perendaman jangka pendek (5 – 15 menit) dapat

diberikan konsentrasi yang lebih tinggi daripada pada

perendaman dengan waktu yang lebih lama (1 jam lebih

sampai beberapa hari);

c. Jenis bahan kimia dan obat yang digunakan dalam

pengobatan dan pencegahan harus mempertimbangkan

antara lain:

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


1) Dalam dosis tertentu tidak membuat ikan stress maupun

mati

2) Efektif dapat membunuh parasit

3) Sifat racun cepat menurun dalam waktu tertentu.

4) Mudah mengalami degradasi dalam waktu singkat.

d. Timbang berat ikan yang akan ditreatmen perendaman

menggunakan timbangan gantung.

e. Lakukan perhitungan dosis obat yang disesuaikan dengan

cara pemakaian yang ada dibrosur dan berdasarkan berat

ikan.

f. Timbang obat menggunakan timbangan digital.

g. Larutkan obat menggunakan air tawar sesuai dengan cara

penggunaan yang ada dibrosur ke dalam ember yang telah

disiapkan.

h. Masukkan ikan yang sudah ditimbang ke dalam larutan obat

selama 5-10 menit tergantung tingkat.

i. Masukkan ikan yang telah ditreatmen ke dalam wadah

pemeliharaan yang telah diisi air baru.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan



Soal-soal Latihan

1. Pemberantasan hama dapat dikelompokkan menjadi 3 (tiga) cara

yaitu ...

A. Fisika, kimia, dan biologi

B. Mekanis, langsung, dan tak langsung

C. Mekanis, kimia, dan fisika

D. Mekanis, kimia, dan biologi

E. Matematis, kimia, dan biologi

2. Pengendalian hama dengan cara memburu, menangkap, dan

membunuh merupakan cara yang digunakan dalam

pemberantasan hama secara ...

A. Mekanis

B. Kimia

C. Biologi

D. Fisika

E. Matematis

3. Pengendalian hama dilakukan dengan cara menggunakan

serok/tangguk, memancing dengan umpan daging seperti anak

ayam/ikan, atau dengan secara rutin melakukan pembersihan

kolam. Hal tersebut merupakan pengendalian hama jenis ...

A. Ular

B. Kodok

C. Burung

D. Labi-labi

E. Biawak

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


4. Apabila pengendalian hama secara mekanis tidak membuahkan

hasil, maka dilakukan pengendalian secara kimia. Berikut

pengendalian hama secara kimia menggunakan minyak tanah

yang disemprotkan di permukaan air kolam. Hal tersebut

dilakukan untuk mengendalikan hama jenis ....

A. Belut

B. Ikan gabus

C. Kini-kini/Larva capung

D. Ucrit/Larva Cybister

E. Linsang/sero

5. Pengendalian hama dengan cara mengeliminasi hama dengan

sesedikit mungkin dampak negatif bagi lingkungan dan kesehatan

manusia merupakan metode pengendalian hama secara ...

A. Mekanis

B. Kimia

C. Biologi

D. Fisika

E. Matematis

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


6. Timbulnya serangan penyakit ikan di kolam merupakan hasil

interaksi yang tidak serasi antara ikan, kondisi lingkungan dan ...

A. Inang

B. Organisme penyakit

C. Suspect

D. Perantara

E. Lokasi kolam

7. Penyakit yang disebabkan oleh aktivitas organisme parasit disebut

…

A. Penyakit akut

B. Penyakit parasiter/infektif

C. Penyakit non parasiter/non infektif

D. Penyakit menular

E. Penyakit turunan

8. Faktor penyebab penyakit Non Parasiter/Non Infektif dibagi

menjadi tiga, yaitu ...

A. Lingkungan, pakan, dan daya tahan tubuh

B. Lingkungan, umur, dan ukuran

C. Status kesehatan, jumlah, dan ukuran

D. Lingkungan, pakan, dan turunan

E. Status kesehatan, pakan, dan ukuran

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


9. Ada 3 (tiga) jenis virus yang paling sering ditemukan menyerang

ikan, yaitu ...

A. Dactylogyrosis, Hervesvirus, Early MortalitySyndrome (EMS)

B. Epithelioma papulasum, Hervesvirus, Epizootic Haematopoletic

Necrosis (EHN)

C. Epithelioma papulasum, Hervesvirus, Spring Viramea of Carp

Virus(SVCV)

D. Epithelioma papulasum, Hervesvirus, Early Mortality Syndrome

(EMS)

E. Viral Haemonhagic Septicaemia (VHS), Hervesvirus, Early

Mortality Syndrome (EMS)

10. Penyakit yang ditunjukkan dengan gejala-gejala klinis antara lain

luka dan pendarahan pada kulit, mata menonjol, bisul pada tubuh,

pendarahan pada pangkal sirip adalah jenis penyakit ...

A. Vibriosis

B. Furunculosis

C. Aeromonas/ penyakit merah

D. Columnaris

E. tuberculosis

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan



1. D

2. A

3. D

4. D

5. C

6. B

7. B

8. D

9. D

10. E

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


BAB V. PENUTUP

Modul ini merupakan salah satu bagian dari kompetensi melakukan

Pemeliharaan Larva Udang Air Payau. Untuk menguasai teknik

Pemeliharaan Larva Udang Air Payau,modul – modul yangperlu anda

kuasai adalah:

Memilih dan memelihara induk.

Memijahkan induk

Memanen telur, dan

Melakukan penanganan telur.

Apabila nilai evaluasi tiap modul memenuhi persyaratan dengan nilai

baik,maka pelajari modul selanjutnya. Tetapi apabila masih cukup, maka

sebaiknya di dipelajari lagi modul tersebut sebelum meningkat ke modul

selanjutnya.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


DAFTAR PUSTAKA

Anindiastuti, Kadek, A.W., Rusyani, E., Warsito. 2007. Budidaya

Fitoplankton dan Zooplankton Skala Massal. Balai besar Pengembangan

Budidaya Laut. Lampung.

Anonim. 2010. Petunjuk teknis Pengendalian Penyakit IMNV Iinfectious

Myonecrosis Virus). Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya.

Kementerian Kelautan dan Perikanan. Jakarta.

Anonim. 2012. Hama dan penyakit Ikan. Pusat Penyuluh Kelautan dan

Perikanan. Badan Pengembangan SDM Kelautan dan Perikanan.

Jakarta.

Novriadi, R., Purnomowati, R., Yunianto, D. Santosa, J. 2014. Penyakit

Ikan Air Laut di Indonesia. Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya.

Kementerian Kelautan dan Perikanan.

Nurdjana, M.L., Djunaidah, I.S., Sumartono, B. 1989. Paket Teknologi

Pembenihan Udang Skala Rumah Tangga. Direktorat Jenderal

Perikanan bekerja sama dengan International Development Research

Centre. Jepara.

Rusyani, E., Sapta, AIM., M. Firdaus., dan Reynaldo. 2007. Budidaya

Fitoplankton dan Zooplankton Skala Laboratorium. Balai besar

Pengembangan Budidaya Laut. Lampung.

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan


Setiawan, A. 2004. Pemilihan dan Pemeliharaan Induk Udang. Direktorat

Pendidikan Menengah Kejuruan. Direktorat Jenderal Dasar dan

Menengah. Departemen Pendidikan Nasional.

Treece, G.D. D. Diterjemahkan oleh Hastuti, W., Kokarkin, C., Nurdjana,

M.L. 1992. Teknologi Pemeliharaan Larva. Jaringan Informasi Perikanan

Indonesia. Direktorat Jenderal Perikanan bekerjasama dengan

International Development Research Centre.

Sutaman. 2007. Petunjuk Praktis Pembenihan Udang Windu Skala Rumah Tangga. Kanisius. Yogyakarta

Pusat P

endidikan K

elauta

n dan P

erikanan

a-pdf watermark demo: purchase from · pdf filegambar 4. kultur pakan alami pada media cair...

Documents