identifikasi aktivitas dan populasi mikro organisme dan makro organisme tanah … · 2018. 12....

IDENTIFIKASI AKTIVITAS DAN POPULASI MIKRO ORGANISME

DAN MAKRO ORGANISME TANAH PADA LAHAN SAWAH

TANAMANCABAI RAWIT (Capsicun frutescens l.) DI DESA

ANTIROGO KECAMATAN SUMBERSARI

KABUPATEN JEMBER

LAPORAN PRAKTIKUM

Oleh

Kelompok A1

PROGRAM STUDI ILMU TANAH

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS JEMBER

2018





KABUPATEN JEMBER

LAPORAN PRAKTIKUM

diajukan guna melengkapi tugas praktikum dan memenuhi salah satu syarat untuk

menyelesaikan mata kuliah Biologi Tanah

Kelompok 1/A:

Fernanda Azmi Hariyadi (171510301059)

Syahrul Efendi (171510301057)

Rhisma Evina Happy P. (171510301049)

Aisyah Valentini Sonia (171510301006)

Amadea Candra (171510301064)

PROGRAM STUDI ILMU TANAH

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS JEMBER

2018

i

ii





KABUPATEN JEMBER

Fernanda Azmi Hariyadi, Syahrul Efendi, Rhisma Evina Happy P.,

Aisyah Valentini Sonia, Amadea Candra

RINGKASAN

Cabai rawit (Capsicum frutescens L.) merupakan salah satu tanaman

hortikultura dari famili Solanaceae yang memiliki nilai ekonomi tinggi. Faktor

tanah mempengaruhi tumbuhnya tanaman cabe rawit (Capsicum frutescens L.).

Tanah merupakan salah satu komponen penting selain air. Tanah memberikan

peran penting dalam kehidupan pertumbuhan makhluk hidup terlebih pada bidang

pertanian salah satunya adalah sifat biologinya yang sangat berpengaruh pada

pertumbuhan tanaman cabai rawit. Tujuan penelitian ini untuk mengetahui sifat

biologi tanah pada lahan cabai rawit yang berada di Antirogo, Jember. Metode

praktikum ini dilakukan dengan cara mengidentifikasi sifat biologi tanah di lahan

cabe rawit. Pada praktikum biofisik tanah cara pengambilan sampel tanah sawah

dengan pola zigzag lalu tanah dimonolitkan kemudian di ambil satu klip untuk

disimpan dalam icebox. Tanah yang tidak ditaruh icebox akan diuji dengan PUTK

dengan menguji kandungan N, P, C-Organik, dan pH. Pada praktikum Soil Fauna,

pengambilan sampel dengan cara penempatan ajir untuk menentukan titik

pengambilan sampel. Bor tanah digunakan untuk mengambil sampel dengan

kedlaman 0-5cm, 10-15cm, dan 15-20 cm. Sampel tanah akan di letakkan pada

alat Berlesse-Tullgren dengan volume 50cm3 dengan menggunakan lampu 15W

agar fauna tanah terpisah dari tanah dan dilakukan selama 4 hari. Pada praktikum

respirasi, sampel tanah seberat 100g dimasukkan ke dalam 1 botol plastik yang

berisi 10 ml 0,2N. Toples ditutup dan diinkubasi selama 7 hari. Setelah 7 hari,

sampel tanah di beri KOH dan CO2 dan ditambahkan 2 tetes indikator feneptalin

dan titrasi dengan 0,2 N HCL sampai larutan berwarna bening. Larutan KOH

ditetesi metil orange sebanyak 2 tetes lalu titrasi kembali dengan HCL 0,2 N

sampai warna yang awalnya kuning berubah orange. Kadar CO2 diperoleh setelah

setiap toples dikurangi kadar CO2 pada stoples tanah pengukuran dilakukan

dengan pengeringan oven pada suhu 105C. Pada praktikum populasi MO total terdapat 3 kegiatan antara lain pengambilan sampel tanah, penyebaran mikroba

dan penghitungan koloni.

Kata Kunci : Cabai Rawit, Tanah, Biologi Tanah

iii

IDENTIFICATION OF ACTIVITIES AND MICRO ORGANISM AND

MACRO POPULATION OF SOIL ORGANISMS IN RICE FIELDS

LAND IN (Capsicun frutescens l.) IN VILLAGE

ANTIROGO JEMBER DISTRICT

Fernanda Azmi Hariyadi, Syahrul Efendi, Rhisma Evina Happy P.,

Aisyah Valentini Sonia, Amadea Candra

SUMMARY

Cayenne pepper (Capsicum frutescens L.) is one of the horticultural plants

of the Solanaceae family that has high economic value. Soil factors affect the

growth of cayenne (Capsicum frutescens L.). Soil is one of the important

components other than water. Soil provides an important role in the growth of

living things, especially in agriculture, one of which is its biological properties

which

are very influential on the growth of cayenne pepper. The purpose of this study

was to determine the biological properties of soil on the raw chili land in

Antirogo, Jember. This practicum method is carried out by identifying the

biological properties of the soil in the cayenne pepper field. In the soil biophysical

practicum, how to take a sample of zigzag rice field and then monolith the soil

which has been monolithed will be taken one clip to be stored in an ice box. Land

that is not placed in an ice box will be tested with PUTS by testing the content of

N, P, C-Organic, and Ph. In the Soil Fauna practicum, sampling by placing a

marker to determine the sampling point. The soil drill is used to take samples with

a depth of 0-5cm, 10-15cm, and 15-20 cm. The soil sample will be placed on a

Berlesse-Tullgren device with a volume of 50cm3 using a 15W lamp as an

irradiation so that the soil fauna is separated from the soil and carried out for 4

days. In the respiration practicum, a sample of soil weighing 100g is inserted into

a plastic bottle containing 10 ml of 0.2N. The jar was closed and incubated for 7

days. After 7 days, soil samples were given KOH and CO2 and added 2 drops of

feneptalin indicator and titrated with 0.2 N HCL until the solution was clear. The

KOH solution is dripped with 2 drops of methyl orange and then titrate again with

0.2 N HCL until the initially yellow color turns orange. CO2 levels were obtained

after each jar was reduced by CO2 levels in the soil jars measurements were

made by drying the oven at 105C. In the total MO population practicum there are 3 activities including soil sampling, microbial distribution and colony

counting. In the specific organism population practicum there are several

procedures such as determining samples, flotation and screening methods and

observation and identification.

Keyword : Cayenne pepper, Soil, Soil Biology

iv

DAFTAR ISI

RINGKASAN ...................................................................................................... ii

DAFTAR ISI ........................................................................................................ iv

BAB 1. PENDAHULUAN .................................................................................. 1

1.1 Latar Belakang ............................................................................................. 1

1.2 Rumusan Masalah ......................................................................................... 2

1.3 Tujuan ........................................................................................................... 2

1.4 Manfaat ......................................................................................................... 3

BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA ......................................................................... 4

2.1 Klasifikasi Tanah .......................................................................................... 4

2.2 Biofisik Tanah................................................................................................ 5

2.3 Soil Fauna ...................................................................................................... 5

2.4 Respirasi Tanah ............................................................................................. 6

2.5 Populasi Mikroorganisme Total ................................................................. 6

2.6 Mikroorganisme Bakteri Ralstonia Salanacearum ................................... 7

BAB 3. METODE PRAKTIKUM ..................................................................... 8

3.1 Biofisik Tanah................................................................................................ 8

3.1.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 8

3.1.2 Alat dan Bahan ............................................................................................. 8

3.1.2.1 Alat ............................................................................................................ 8

3.1.2.2 Bahan......................................................................................................... 8

3.1.3 Prosedur........................................................................................................ 8

3.1.4 Diagram Alir ............................................................................................... 10

3.2 Soil Fauna ...................................................................................................... 12

3.2.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 12

3.2.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 12

3.2.2.1 Alat ........................................................................................................... 12

v

3.2.2.2 Bahan ........................................................................................................ 12

3.2.3 Prosedur ....................................................................................................... 12

3.2.3.1 Pengukuran Faktor Fisik Lingkungan ...................................................... 13

3.2.3.2 Pelabelan .................................................................................................. 13

3.2.3.3 Pemisahan Fauna Tanah dan Pengelompokannya ................................... 13

3.2.4 Diagram Alir ............................................................................................... 14

3.3 Respirasi Tanah ............................................................................................. 15

3.3.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 15

3.3.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 15

3.3.2.1 Alat ........................................................................................................... 15

3.3.2.2.Bahan ........................................................................................................ 15

3.3.3 Prosedur ....................................................................................................... 15

3.3.4 Perhitungan ................................................................................................. 16

3.3.5 Diagram Alir ............................................................................................... 18

3.4 Populasi Mikroorganisme Dalam Tanah ................................................... 19

3.4.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 19

3.4.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 19

3.4.2.1 Alat ........................................................................................................... 19

3.4.2.2 Bahan ........................................................................................................ 19

3.4.3 Prosedur ....................................................................................................... 19

3.4.4 Diagram Alir ............................................................................................... 21

3.5 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah .................................................. 23

3.5.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 23

3.5.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 23

3.5.2.1 Alat ........................................................................................................... 23

3.5.2.1 Bahan ....................................................................................................... 23

3.2.3 Prosedur ....................................................................................................... 23

3.2.4 Diagram Alir ................................................................................................ 25

BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................. 28

4.1 Hasil ............................................................................................................... 28

vi

4.1.1 Biofisik Tanah ............................................................................................. 28

4.1.2 Soil Fauna .................................................................................................... 30

4.1.3 Respirasi Tanah ........................................................................................... 32

4.1.4 Populasi Mikroorganisme Total Tanah ....................................................... 34

4.1.5 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah .................................................. 34

4.2 Pembahasan Umum ..................................................................................... 35

BAB 5. PENUTUP .............................................................................................. 43

5.1 Kesimpulan .................................................................................................... 43

5.2 Saran ............................................................................................................... 43

Daftar Pustaka

vii

Lampiran

Peta Jenis Tanah

Dokumentasi

Lembar ACC

Flowchart

viii

DAFTAR TABEL

Tabel Judul Halaman

4.1 Kondisi Lingkungan 28

4.2 Sifat Kimia Tanah 28

4.3 Soil Fauna Titik 1 30

4.4 Soil Fauna Titik 2 31

4.5 Respirasi Tanah 32

4.6 Populasi MO Total Tanah 34

4.7 Pengamatan Warna Nodul 34

ix

DAFTAR GAMBAR

Gambar Judul Halaman

4..1 Grafik Respirasi Tanah 33

1

BAB 1. PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Cabai rawit (Capsicum frutescens L.) merupakan salah satu tanaman

hortikultura dari famili Solanaceae yang tidak saja memiliki nilai ekonomi

tinggi, tetapi juga karena buahnya yang memiliki kombinasi warna, rasa, dan nilai

nutrisi yang lengkap. Pertumbuhan cabai rawit memiliki dua faktor yaotu faktor

internal dan faktor eksternal. Faktor internal sendiri yang mempengaruhi

pertumbuhan cabai seperti enzim dan hormon, sedangkan faktor eksternal lebih ke

faktor lingkungan yang mempengaruhi pertumbuhan cabai yaitu seperti

kelembapan suhu tanah, pH tanah, cahaya matahari, dan jumlah kandungan air

dalam tanah merupakan faktor eksternal penting.

Tanah merupakan salah satu komponen penting selain air. Tanah

memberikan peran penting dalam kehidupan pertumbuhan makhluk hidup terlebih

pada bidang pertanian. Ketika tanah tercemar oleh suatu zat berbahaya atau

beracun dari pembuangan limbah yang terus menerus maka zat tersebut dapat

menguap, tersapu air hujan ataupun masuk kedalam tanah. Hal ini akan

mempengaruhi karakteristik sifat tanah khususnya pada tingkat kesuburan tanah

tersebut yang akan berpengaruh terhadap pertumbuhan dan perkembangan

tanaman khususnya untuk tanaman cabai rawit yang sanagat rentan terhadap air

hujan karena bisa gagal panen.

Kesuburan tanah merupakan potensi tanah untuk menyediakan unsur hara

yang diperlukan dalam bentuk yang tersedia serta seimbang untuk menjamin

pertumbuhan tanaman yang maksimum dan berpengaruh. Tanah yang benar-benar

subur adalah apabila didukung oleh faktor-faktor pertumbuhan. Komponen kimia

tanah berperan besat terhadap menentukan ciri dan sifat tanah dan status

kesuburan tanah tersebut. Selain itu, sifat kimia tanah berperan dalam

menjelaskan serta menentukan reaksi-reaksi kimia yang menyangkut dalam

masalah ketersediaan unsur hara bagi tanaman tersebut sehingga sangat

berpengaruh. Selain itu sifat fisika tanah ikut mempengaruhi tingkat kesuburan

tanah tersebut. Keadaan fisika tanah meliputi, tekstur, kelembaban, struktur,

2

kedalaman efektif, dan tata udara tanah. Sifat-sifat tanah tersebut berpengaruh

terhadap kondisi fisik tanah dalam menentukan penetrasi akar di dalam tanah,

drainase, retensi air, aerasi, dan nutrisi tanaman terutama pada tanaman cabai

rawit.

Biologi tanah adalah ilmu yang mempelajari mahluk-mahluk hidup

didalam tanah. Karena ada bagian-bagian hidup di dalam tanah, maka tanah itu

disebut sebagai ―Living System‖ contohnya akar tanaman dan organisme lainnya

di dalam tanah. Biologi tanah adalah studi yang mempelajari tentang aktivitas

mikroorganisme dan organisme di dalam tanah. Organisme-organisme yang

termasuk di dalamnya seperti cacing tanah, nematode, fungi, bakteri dan sejumlah

arthropoda. Komposisi materi organic dalam tanah sangat berpengaruh terhadap

kesuburan, kualitas, dan struktur tanah sehingga biologi tanah berperan penting

terhadap karakteristik tanah.

Mikroorganisme adalah organisme yang berukuran sangat kecil sehingga

tidak dapat dilihat dengan mata telanjang. Organisme tanah berperan penting

dalam mempercepat penyediaan hara dan juga sebagai sumber bahan organik

tanah. Penambahan bahan organik dalam tanah akan menyebabkan aktivitas dan

populasi mikrobiologi dalm tanah meningkat, terutama berkaitan dengan aktivitas

dekomposisi dan meneralisasai bahan organik. Aktivitas mikroorganisme dalam

tanah sangat berpengaruh terhadap sifat fisik, kimia dan biologi pada tanah. Tanah

dengan adanya mikroorganisme ini akan berpengaruh pada tingkat kesuburan

tanah, karena mikroorganisme memegang peranan penting dalam proses pelpukan

bahan organik dalam tanah sehingga unsur hara menjadi tersedia bagi tanaman

(Prayudyaningsih, 2015).

1.2 Rumusan Masalah

1. Bagaimana kondisi biofisik tanah tanaman cabai rawit di Antirogo, Jember ?

2. Apa saja soil fauna yang terdapat pada tanah tanaman cabai rawit di Antirogo,

Jember ?

3. Bagaimana proses respirasi yang terjadi pada tanaman cabai rawit di Antirogo,

Jember ?

3

4. Berapa jumlah populasi mikroorganisme total pada tanaman cabai rawit di

Antirogo, Jember ?

5. Berapa jumlah populasi mikroorganisme Pseudomonas solanacearum pada

tanaman cabe rawit di Antirogo, Jember ?

1.3 Tujuan

1. Mengetahui fisik biologis tanah dalam pemanfaatannya sebagai lahan untuk

penanaman cabai.

2. Mengetahui hewan yang ada dalam tanah lahan cabai baik hewan yang

berukuran mikro, meso maupun makro yang dapat mempengaruhi tanaman

cabai yang ditanam.

3. Mengetahui aktivitas dari mikroorganisme. di dalam tanah pada tanaman cabe

rawit.

4. Mengetahui berapa banyak populasi mikroorganisme total pada tanah tanaman

cabai rawit.

5. mengidentifikasi dan menghitung populasi Pseudomonas solanacearum dengan

menggunakan metode agar nutrient (NA).

1.4 Manfaat

1. Bagi pemerintah agar lebih mengetahui potensi apa saja yang terdapat pada

lahan tanaman cabai agar dapat dikembangkan dengan optimal.

2. Bagi masyarakat sekitar agar lebih mengetahui potensi yang ada pada tanaman

cabai agar dapat di manfaatkan dengan baik.

3. Bagi mahasiswa agar menjadi ilmu yang bermanfaat bagi kelanjutan

perkuliahan dan dapat diamalkan dalam masyarakat sehingga bermanfaat.

4

BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Klasifikasi Tanaman Cabai

Tanaman cabai merupakan salah satu tanaman holtikultura yang sehari-

hari dibutuhkan oleh masyarakat Indonesia. Cabai merupakan tanaman perdu dari

family terung-terungan (Solanaceae) dan tergolong tanaman semusim. Tanaman

cabai tidak akan tumbuh dengan baik jika kekuranan air dalam proses

pertumbuhannya begitu juga air yang diberikan pada tanaman cabai terlalu banyak

tanaman tidak akan tumbuh dengan baik (Imtiyaz dkk, 2017). Menurut Cahyono

(2003) tanaman cabai rawit diklasifikasikan sebagai berikut:

Divisi : Spermatophyta (tumbuhan berbiji)

Subdivisi : Angiospermae (biji berada di dalam buah)

Kelas : Dicotyledonae (biji berkeping dua atau biji belah)

Ordo (Bangsa) : Corolliforea

Family (suku) : Solanaceae

Genus (marga) : Capsicum

Spesies (jenis) : Capsicum frutescens L.

2.2 Biofisik Tanah

Tanah merupakan salah satu komponen yang paling banyak memiliki jenis

habitat di bumi dan merupakan satu kumpulan yang paling beragam

organismenya. Tanah terbentuk karena adanya faktor-faktor lingkungan yang

bekerja dalam masa yang panjang. Tanah tersusun dari komponen mineral,

organik, air dan udara. Tanah merupakan salah satu penunjang yang membantu

kehidupan semua makhluk hidup yang ada di bumi baik tanaman, hewan maupun

manusia. Tanah memiliki struktur yang berongga-rongga sehingga memudahkan

akar untuk tumbuh dan bernafas (Briones, 2014).

Kondisi lingkungan seperti kondisi iklim dan tanah yang sesuai bagi

pertumbuhan tanaman merupakan syarat utama budidaya suatu tanaman. Keadaan

iklim yang sangat berpengaruh terhadap pertumbuhan tanaman cabai diantaranya

suhu udara, kelembaban udara, curah hujan dan cahaya matahari. Sebagai media

5

tempat pertumbuhan tanaman tanah merupakan faktor penting yang menentukan

keberhasilan proses produksi. Tanaman cabai lebih cocok ditanam pada jenis

tanah andosol yang kaya akan bahan organik. Sifat fisik, kimia dan biologi tanah

memiliki keterkaitan antara yang satu dengan yang lainnya dan saling

mempengaruhi untuk mendapatkan kesuburan tanah. Sifat fisik tanah yang baik

dapat memperbaiki drainase tanah sehingga dapat mencegah terjadinya genangan

air dan dapat meningkatkan kandungan oksigen. Sifat kimia tanah yang perlu

diperhatikan adalah Ph. Ph berpengaruh terhadap organisme yang berada di dalam

tanah sehingga mempengaruhi kesuburan tanah. Tanah yang memiliki sifat

biologi yang baik banyak terdapat zat-zat hara yang diperlukan tanaman

(Cahyono, 2003).

2.3 Soil Fauna

Soil fauna merupakan hewan yang hidup di dalam tanah, baik yang

hidupnya di permukaan tanah maupun yang hidupnya berada di dalam tanah.

Hewan tanah merupakan bagian dari ekosistem tanah. Berdasarkan ukuran

tubuhnya hewan-hewan yang berada di dalam tanah tersebut dikelompokkan

menjadi jenis hewan mikrofauna, mesofauna dan makrofauna. Keberadaan fauna

tanah sangat dipengaruhi oleh faktor lingkungan diantaranya yaitu faktor biotik

dan faktor abotik. Faktor biotik yang mempengaruhi antara lain fungi, dan

tanaman. Sedangkan faktor abiotik yaitu faktor yang tidak hidup meliputi tekstur

tanah, struktur tanah, pH, salinitas, kadar bahan organik dan unsur mineral tanah,

sehingga dapet berperan secara langsung maupun tidak langsung bagi tanah

(Nurrohman dkk, 2018).

Fauna tanah merupakan bagian dari ekosistem tanah yang kehidupannya

berinteraksi dengan yang satu dan faktor yang lainnya dari suatu lingkungan

tempat dimana mereka hidup. Makrofauna tanah memiliki peran penting dalam

dekomposisi bahan organik tanah yang berguna untuk menyediakan unsur hara.

Mesofauna tanah berdampak positif bagi kesuburan tanah hal itu dapat terjadi jika

perkembangan dan aktivitas mesofauna berlangsung dengan baik. Kesuburan pada

tanah memiliki peran yang utama dalam pertumbuhan dan berkembangan

6

tanaman. Kesuburan pada tanah akan memberikan dampak yang positif seperti

meningkatnya produksi dan produktivitas pada tanaman yang dibudidayakan

(Hilwan dan Handayani, 2013).

Organisme tanah mempunyai peran sebagai salah satu indikator kesuburan

tanah. Adanya organisme di dalam tanah menandakan kualitas dari tanah tersebut

subur. Kelompok hewan tanah sangat beragam mulai dari nematode, annelida,

arthropoda, molusca, rotifer dan protozoa. Fauna tanah menempati kategori

hunian tertentu yang terdapat dalam tubuh tanah sesuai dengan ciri anatomi dan

ciri fisiologis yang dimilikinya (Marsandi dkk, 2017).

2.4 Respirasi Tanah

Respirasi tanah merupakan salah satu indikator dari aktifitas biologi

seperti mikroba, akar atau kehidupan lain di dalam tanah dan aktivitas ini sangat

penting untuk ekosistem dalam tanah (Tanam and Tiga, 2017). Respirasi tanah

juga salah satu indikator aktivitas mikroba di dalam tanah. Pengukuran respirasi

tanah dilakukan untuk mengetahui penggunaan O2 dan pembebasan CO2,

sehingga dapat di tentukan tingkat respirasi dengan mengukur O2 yang digunakan

oleh mikroba tanah. Aktifitas mikroorganisme di dalam tanah juga di pengaruhi

oleh bahan organik, kelembapan, aerasi dan sumber energi. Kelembapan dan

temperatur yang sesuai dapat mempengaruhi jumlah CO2 yang di hasilkan oleh

mikroorganisme yang ada di dalam tanah.

2.5 Populasi Mikroorganisme Total

Jumlah mikroorganisme tanah yang melimpah menggambarkan tingkat

kesuburan tanah dan sifat tanah secara biologis. Mikroorganisme yang ada di

dalam tanah sangat membantu untuk proses dekomposisi bahan organik pada

tanaman tingkat tinggi, dalam proses dekomposisi sisa tumbuhan dihancurkan

menjadi unsur yang dapat di gunakan oleh tanaman(Setyawan dkk, 2017).

Populasi mikroorganisme yang ada di dalam tanah sangat banyak, untuk

mengetahui perkembangan atau pertumbuhan suatu mikroorganisme diperlukan

suatu perhitungan yang harus dilakukan dan terdapat dua proses perhitungan yaitu

secara perhitungan langsung dan tidak langsung. Penggunaan perhitungan secara

7

tidak langsung memiliki kelebihan yang dapat di gunakan untuk isolasi dan

identifikasi bakteri yang masih hidup. Organisme tanah berperan sangat penting

dalam mempercepat penyediaan hara dan juga sebagai sumber bahan organik

tanah.

2.6 Mikroorganisme Bakteri Ralstonia Solanacearum

Menurut Ningtyas (2015), salah satu penyebab tidak tercapainya potensi

hasil cabai adalah karena serangan hama dan penyakit. Layu bakteri (Ralstonia

solanacearum) merupakan penyakit utama yang menyerang pertanaman cabai.

Bakteri ralstonia solanasearum merupakan salah satu gangguan penyakit yang

dapat menginfeksi tanaman melai akar dan menyerang pembuluh xylem sehingga

bakteri ini sulit untuk dikendalikan karena dapat bertahan di tanah dan gula

selama bertahun-tahun. Bakteri Ralstonia solanacearum termasuk ke dalam famili

Burkholderiaceae. Bakteri ini menginfeksi akar tanaman melalui luka yang terjadi

secara tidak langsung pada waktu proses pemindahan tanaman maupun luka

akibat tusukan nematoda akar, dan secara langsung masuk ke dalam bulu

akar/akar yang sangat muda dengan melarut dinding sel.

8

BAB 3. METODE PRAKTIKUM

3.1 Biofisik Tanah

3.1.1 Waktu dan Tempat Praktikum

Praktikum dengan acara biofisik tanah ini dilakukan di lapang yaitu di

Desa Antirogo Kecamatan Sumbersari Kabupaten Jember pada hari Rabu, 26

September 2018 pukul 11.45-14.00 WIB.

3.1.2 Alat dan Bahan

3.1.2.1 Alat

1. Sekop atau sendok tanah

2. Bor tanah

3. Kantung plastik contoh

4. pisau/gunting

5. Ember/baskom plastic

6. Kotak es

3.1.2.2 Bahan

1. Alkohol 90-95 %

2.Botol selai bertutup atau botol lain yang sejenis (untuk contoh tanah anaerobic)

3. Parafilm atau selotip

3.1.3 Prosedur Penelitian

1. Mencatat keadaan umum fisik lingkungan dilokasi pengambilan contoh,

anatara lain :jenis penggunaan tanah, vegetasi atau tanaman yang diusahakan,

riwayat penggunaan tanah (bila tersedia), lereng, ketinggian tempat, dan

keadaan permukaan tanah (berbatu, dan lain-lain)

2. Mencatat tanaman inang (legume) yang tumbuh dilokasi pengambilan contoh

dan mengambil contohnya untuk mengidentifikasinya hal tersebut khusus

contoh tanah untuk trapping mikroba symbiosis seperti rhizobia.1)

Pengambilan contoh tanah non-rizosfer-tanah non-rizosfer merupakan bagian

9

tanah tanpa akar dan tanah yang melekat pada akar.

3. Membersihkan permukaan tanah di lokasi/titik pengambilan contoh dari

tanaman dan seresah (litter). Kemudian menetapkan volume penggalian tanah,

misalnya 20 x 20 x 20 cm atau 10 x 10 x 20 cm (Panjang, lebar dan

kedalaman), yang penting ukuran volume pengambilan contoh ini konsisten di

tiap titik pengambilan contoh.

4. Menggali tanah dengan sendok tanah atau spatula (kape). Menggunakan bor

tanah untuk mengambil contoh tanah pada kedalaman tertentu.

5. Membersihkan tanah galian dari sisa tanaman dan potongan akar.

6. Memasukkan sejumlah tanah dengan volume atau berat tertentu (sesuai

kebutuhan) ke dalam kantong plastik dengan sendok tanah dan memberi label.

Menggunakan botol selai bertutup atau yang sejenis untuk contoh tanah

anaerobic. Untuk contoh komposit, memasukkan contoh tanah ini ke dalam

ember atau baskom plastic dan menggabungkan dengan anak contoh tanah

lain. Setelah mengaduk rata dengan sendok tanah, sejumlah tanah dengan

volume atau berat tertentu (sesuai kebutuhan) memasukkan ke dalam kantung

plastik dan memberi label.

7. Memasukkan segera contoh tanah ke dalam kotak es agar terhindar dari suhu

tinggi. Melakukan pemberian es batu dalam kotak es bila perjalanan contoh

tanah ke laboratorium memerlukan waktu lama.

8. Untuk pengambilan contoh tanah di tempat lain, mencuci semua peralatan

dengan air dan setrika seperti dijelaskan pada bagian alat dan bahan diatas.

10

3.1.4 Diagram Alir Biofisik Tanah

Membersihkan permukaan tanah di lokasi/titik pengambilan contoh dari

tanaman dan seresah (litter). Kemudian menetapkan volume penggalian

tanah, misalnya 20 x 20 x 20 cm atau 10 x 10 x 20 cm (Panjang, lebar dan

kedalaman), yang penting ukuran volume pengambilan contoh ini konsisten

di tiap titik pengambilan contoh.

Menggali tanah dengan sendok tanah atau spatula (kape). Menggunakan bor

tanah untuk mengambil contoh tanah pada kedalaman tertentu.

Membersihkan tanah galian dari sisa tanaman dan potongan akar

. Mencatat tanaman inang (legume) yang tumbuh dilokasi pengambilan contoh

dan mengambil contohnya untuk mengidentifikasinya hal tersebut khusus

contoh tanah untuk trapping mikroba symbiosis seperti rhizobia.1)

Mencatat keadaan umum fisik lingkungan dilokasi pengambilan contoh,

anatara lain :jenis penggunaan tanah, vegetasi atau tanaman yang diusahakan,

riwayat penggunaan tanah (bila tersedia), lereng, ketinggian tempat, dan

keadaan permukaan tanah (berbatu, dan lain-lain)

11

Memasukkan sejumlah tanah dengan volume atau berat tertentu (sesuai

kebutuhan) ke dalam kantong plastik dengan sendok tanah dan memberi

label. Menggunakan botol selai bertutup atau yang sejenis untuk contoh

tanah anaerobic. Untuk contoh komposit, memasukkan contoh tanah ini ke

dalam ember atau baskom plastic dan menggabungkan dengan anak contoh

tanah lain. Setelah mengaduk rata dengan sendok tanah, sejumlah tanah

dengan volume atau berat tertentu (sesuai kebutuhan) memasukkan ke

dalam kantung plastik dan memberi label.

Memasukkan segera contoh tanah ke dalam kotak es agar terhindar dari

suhu tinggi. Melakukan pemberian es batu dalam kotak es bila perjalanan

contoh tanah ke laboratorium memerlukan waktu lama.

Untuk pengambilan contoh tanah di tempat lain, mencuci semua peralatan

dengan air dan setrika seperti dijelaskan pada bagian alat dan bahan diatas.

12

3.2 Soil Fauna


Penelitian ini dilakukan di Labolatorium Biologi Tanah, Fakultas

Pertanian Universitas Jember pada hari Rabu, 3 Oktober 2018 pukul 11.45-14.10

WIB.


3.2.2.1 Alat

1. Meteran kayu ukuran 1m, meteran gulung ukuran 50 m terbuat dari logam atau

fiber glas, meteran siku dari kayu atau logam

2. Kayu/bamboo persegi dengan ukuran 25x25 cm

3. Cangkul

4. Mikroskop

5. Termometer

6. Higrometer

3.2.2.2 Bahan

1. Sampel tanah dari lahan tanaman cabai

2. Kantung kain (dari kain katun)

3.2.3 Prosedur Penelitian

1. Menetapkan lokasi titik pengambilan sampel tanah

2. Menetapkan posisi blok dengan ukuran 25x25 cm

3. Meletakkan kayu/bamboo yang berbentuk persegi dengan ukuran 25x25 cm ke

posisi blok yang sudah ditentukan

4. Mencangkul sisi-sisi blok hingga kedalaman 20-30 cm

5. Mengambil tanah blok

6. Meletakkan tanah sampel ke kain yang sudah disediakan

7. Mengamati fauna tanah yang ada di tanah tersebut

8. Setelah selesai mengamati makrofauna, sampel tanah dikembalikan ke tempat

semula.

13

3.2.3.1 Pengukuran Faktor Fisik Lingkungan

Pada saat pengumpulan hasil tangkapan, lakukan pengukuran suhu

udara, suhu tanah, dan kelembabab udara relatif serta keadaan cuaca

(Lembaga Penelitian Tanah, 1979; Suin, 2003). Pengukuran suhu udara

dilakukan dengan menggunakan thermometer yang digantungkan kira-kira

satu meter di atas permukaan tanah, sedangkan untuk mengukur suhu tanah,

masukkan thermometer ke dalam tanah dengan cara membuat lubang

menggunakan besi berdiameter sama dengan thermometer yang digunakan,

kemudian masukkan termometer ke dalam lubang tersebut sampai kedalaman

yang dikehendaki, missal untuk lapisan olah cukup sampai kedalaman 20 cm.

Gunakan hygrometer untuk mengukur kelembaban udara relatif, pengukuran

dilakukan antara 9.00 sampai jam 11.00.

3.2.3.2 Pelabelan

Pada saat pekerjaan di lapangan, beri label semua contoh yang diambil

dan simpan pada tempat-tempat khusus sesuai keperluan seperti kantung kain

katun untuk contoh tanah, botol-botol tempat menyimpan contoh sesuai

tempat, waktu pengambilan, kedalaman tanah, dan lain-lain. Setelah seluruh

keperluan pengambilan contoh telah siap, kemudian contoh dibawa ke

laboratorium untuk diidentifikasi. Siapkan buku catatan khusus untuk

mencatat keadaan yang tidak berhubungan langsung dengan pekerjaan

pengambilan contoh tanah, namun mendukung dan mempengaruhi secara

langsung keberadaan fauna tanah di lapangan, seperti suhu udara, cuaca,

musim, tipe agrosistem, dll, yang perlu dicatat secara khusus.

3.2.3.3 Pemisahan Fauna Tanah dan Pengelompokannya

Pisah-pisahkan contoh hewan permukaan tanah dari lapangan dengan

metode sortasi dengan tangan, menurut jenisnya dengan menggunakan

stereomikroskop, setelah dihitung kemudian awetkan dalam larutan formalin

4%. Contoh fauna tanah yang diambil menurut kedalaman yang telah

ditentukan masukkan kedalam kantung yang dibuat dari kain katun, dan

14

contoh tanah dalam perjalanan ke laboratorium tidak boleh lebih dari empat

jam agar hewan tidak mati di perjalanan (Anderson & Ingram, 1993).

3.2.4 Diagram Alir Soil Fauna

Menetapkan lokasi titik pengambilan sampel tanah.

Menetapkan posisi blok dengan ukuran 25x25 cm.

Meletakkan kayu/bamboo yang berbentuk persegi dengan ukuran 25x25

cm ke posisi blok yang sudah ditentukan.

Mencangkul sisi-sisi blok hingga kedalaman 20-30 cm

Mengambil tanah blok

Meletakkan tanah sampel ke kain yang sudah disediakan

Mengamati fauna tanah yang ada di tanah tersebut

Setelah selesai mengamati makrofauna, sampel tanah dikembalikan ke

tempat semula

15

3.3 Respirasi Tanah

3.3.1 Waktu dan Tempat

Praktikum ini dilaksanakan di Laboratorium Biolodi Tanah, Fakultas

Pertanian Universitas Jember. Penelitian ini dilakukan pada bulan Oktober 2018

sampai selesai.


3.3.2.1 Alat

1. Buret

2. Stoples plastik kedap udara

3. Botol pastik

4. Stirer

5. Labu Erlenmeyer

6. Corong

7. Beker glass

3.3.2.2 Bahan

1. KOH 0,5N

2. BaCL2 3N

3. HCl 0,2N

4. Indikator fenoptalin dan metil orange 0,1% (1 g/100 ml alkohol 96%)

3.3.3 Prosedur

1. Memasukan 100 g contoh tanah pada kapasitas lapang ke dalam stoples, dan 1

botol plastik terbuka berisi 10 ml 0,2 N KOH (untuk mengikat gas CO2 yang

dilepaskan dari respirasi mikroba dalam contoh tanah), lalu stoples ditutup

rapat (kedap udara) selama inkubasi 7 hari. Cara yang sama dilakukan untuk

kontrol, yaitu stoples yang tidak diisi contoh tanah. Setelah 7 hari, ambil botol

plastik yang berisi KOH dan CO2 yang sudah terikat, lalu menambahkan 2

tetes indikator fenoptalin dan titrasi dengan 0,2 N HCl sampai warna larutan

berubah dari merah muda (pink) menjadi bening.

16

2. Selanjutnya menetesi KOH dengan 2 tetes metil orange sehingga larutan

berubah menjadi kuning. Titrasi kembali dengan HCl 0,2 N sampai warna

kuning berubah menjadi oranye. - Kadar CO2 pada masing-masing perlakuan

diperoleh setelah dikurangi kadar CO2 pada stoples tanpa tanah (blanko).

Kadar air tanah ditentukan setelah pengukuran CO2 dan hasil dinyatakan

dalam berat kering oven 105o C.

3.3.4 Perhitungan

( )

Keterangan:

r = jumlah CO2 yang dihasilkan

a = ml HCl untuk stoples dengan contoh tanah

b = ml HCl untuk stoples tanpa contoh tanah (blanko)

t = normalitas HCl (lihat perhitungan t di bawah)

n = jumlah hari inkubasi

100 = 100 g contoh tanah

2,4 = dari perhitungan sbb : 1 ml HCl 0,2 N = 1 x 0,2 = 0,2 me HCl 0,2

me HCl setara 0,2 me CO2 0,2 x 44 mg CO2 = 8,8 mg CO2 (berat molekul

CO2 = 44) C / CO2 = (12 / 44) x 8,8 mg = 2,4 mg CO2-C

Penentuan normalitas :

Masukkan 16,67 ml HCl 37% (12 N) ke dalam labu ukur 1 l, kemudian

encerkan dengan akuades sampai volume 1.000 ml.

Masukkan 9,535 g boraks (Na2B4O7.H2O BM = 381,42) ke dalam labu ukur

250 ml dan encerkan dengan akuades sampai volume 250 ml.

Masukkan 10 ml boraks dan 2 tetes indikator metil orange ke dalam labu

Erlenmeyer, lalu titrasi dengan HCl.

17

Perhitungan

a mg t = —————— 381,42 / 2

keterangan : t = moralitas HCL

Catatan : Karena HCl yang distandarisasi 0,2 N maka larutan yang

dipakai boraks 0,2 N

18

3.3.5 Diagram Alir Respirasi Tanah

Masukkan 100 g contoh tanah pada kapasitas lapang kedalam stoples, dan

1 botol plastik terbuka berisi 10 ml 0,2 N KOH (untuk mengikat gas CO2

yang dilepaskan dari respirasi mikroba dalam contoh tanah), lalu stoples

ditutup rapat (kedap udara) selama inkubasi 7 hari

Selanjutnya tetesi KOH dengan 2 tetes metil orange sehingga larutan

berubah menjadi kuning. Titrasi kembali dengan HCl 0,2 N sampai

warna kuning berubah menjadi orange.

Kadar CO2 pada masing-masing perlakuan diperoleh setelah

dikurangi kadar CO2 pada stoples tanpa tanah (blanko). Kadar tanah

ditentukan setelah pengukuran CO2 dan hasil dinyatakan dalam berat

kering oven 1050 C.

19

3.4 Penetapan Populasi Mikroorganisme Total


Praktikum ini dilaksanakan di Laboratorium Biologi Tanah, Fakultas

Pertanian Universitas Jember. Penelitian dilakukan pada bulan Oktober 2018

sampai dengan selesai.


3.4.2.1 Alat

1. Erlenmeyer 250 ml

2. Tabung reaksi

3. Autoclave

4. Micropipete

5. Bunsen

6. Cawan petri

7. Colonoy Counter Number

8. Media PCA (Plate Count Agar)

3.4.2.2 Bahan

1. Larutan fisiologis (8.5 gr/liter)

2. Alkohol

3. Spiritus

4. Kapas Steril

3.4.3 Prosedur Praktikum

1. Masing-masing kelompok menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis

9 ml dalam tabung reaksi dan diautoclav.

2. Menyiapkan contoh tanah timbang ke dalam 90 ml larutan fisiologis yang di

tetapkan dalam elenmeyer 250 ml, larutan tersebut bernilai , kemudian

melalukan pengojokan selama 15 menit.

3. Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke

dalam larutam fisologis di tabung reaksi kemudian menvortex agar suspensi

20

mikrobia homogen. Suspensi yang baru di buat ini adalah pengenceran 100

kali atau Begitulah sampai memperoleh pengenceran

4. Memipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri

steril dan mengulangi sampai 3 kali setiap pengenceran tersebut.

5. Menyiapkan media PCA yang telah didinginkan dengan temperatur 40-45°C,

kemudian menuangkan dalam petri tersebut ±15 ml melewati busem, memutar

3 kali agar media rata seluruh cawan.

6. Setelah benar-benar padat, menginkubasikan pada temperatur yang

diinginkan, meletakkan cawan secara terbalik pada inkubator agar uap air tida

menempel pada cawan petri.

7. Menginkubasikan selama 5-7 hari kemudian melakukan perhitungan. Jumlah

koloni di dua cawan petri yang berturut-turut pengencerannya dari contoh

yang dama harus merupakan kelipatan 20 yang sama dengan pengenceran.

8. Bila pengenceran yang paling tinggi jumlah koloninya melebihi 300 koloni,

berarti pengenceran pencawan petri terlalu rendah, sebaliknya bila

pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang dari 30 koloni, berarti

pengenceran terlalu tinggi, jika semua sudah cawan petri menghasilkan koloni

yang memuaskan maka memilih cawan petri yang berisi 30-300 koloni

percawan petri. Untuk memudahkan perhitungan menggunakan Colony

Counter Number.

9. Mengalikan rata-rata jumlah koloni percawan petri dengan faktor pengenceran

untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme total per-gram contoh (tanah)

kering udara. Mengkonversikan hasi ini ke jumlah mikroorganisme didalam 1

gram tanah kering mutlak dengan memperhitungkan kadar air tanah.

Perhitungan koloni dengan aturan bahwa dalam satu petridisc hanya dapat

dihitung jika terdapat populasi 30-300 koloni, jika kurang dari 30 atau lebih dari

300 disebut ―spreader‖ yang berarti data tidak valid.

( ) ( ) ( )

Keterangan :

fp = faktor pengenceran pada petridisc yang koloninya dihitung

bk = berat kering contoh tanah (g) = berat basah x (1 – kadar air)

21

3.4.4 Diagram Alir Penetapan Mikroorganisme Dalam Tanah

Menyiapkan contoh tanah timbang ke dalam 90 ml larutan fisiologis yang di

tetapkan dalam elenmeyer 250 ml, larutan tersebut bernilai , kemudian

melalukan pengojokan selama 15 menit.

Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke dalam

larutam fisologis di tabung reaksi kemudian menvortex agar suspensi mikrobia

homogen. Suspensi yang baru di buat ini adalah pengenceran 100 kali atau Begitulah sampai memperoleh pengenceran

menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis 9 ml dalam tabung reaksi dan

diautoclav

Memipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri steril

dan mengulangi sampai 3 kali setiap pengenceran tersebut.

Setelah benar-benar padat, menginkubasikan pada temperatur yang diinginkan,

meletakkan cawan secara terbalik pada inkubator agar uap air tida menempel

pada cawan petri.

Menyiapkan media PCA yang telah didinginkan dengan temperatur 40-45°C,

kemudian menuangkan dalam petri tersebut ±15 ml melewati busem, memutar 3

kali agar media rata seluruh cawan.

22

Menginkubasikan selama 5-7 hari kemudian melakukan perhitungan. Jumlah

koloni di dua cawan petri yang berturut-turut pengencerannya dari contoh yang

dama harus merupakan kelipatan 20 yang sama dengan pengenceran.

Bila pengenceran yang paling tinggi jumlah koloninya melebihi 300 koloni,

berarti pengenceran pencawan petri terlalu rendah, sebaliknya bila

pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang dari 30 koloni, berarti

pengenceran terlalu tinggi, jika semua sudah cawan petri menghasilkan koloni

yang memuaskan maka memilih cawan petri yang berisi 30-300 koloni

percawan petri. Untuk memudahkan perhitungan menggunakan Colony

Counter Number.

Mengalikan rata-rata jumlah koloni percawan petri dengan faktor

pengenceran untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme total per-gram

contoh (tanah) kering udara. Mengkonversikan hasi ini ke jumlah

mikroorganisme didalam 1 gram tanah kering mutlak dengan

memperhitungkan kadar air tanah.

23

3.5 Populasi Mikroorganisme Pseudomonas Solanacearum


Praktikum ini dilaksanakan di Laboratorium Biologi Tanah, Fakultas

Pertanian Universitas Jember. Penelitian dilakukan pada bulan Oktober 2018

sampai dengan selesai.


3.5.2.1 Alat

1. Erlenmayer 250 ml

2. Tabung reaksi

3. Autoclave

4. Micropippete

5. Bunsen

6. Cawan petri

7. Laminar air flow

8. Colony counter number

3.5.2.1 Bahan

1. Sampel Tanah Cabai

2. Larutan Fisiologis

3. Alkohol

4. Kapas Steril

5. Media NA (Nutrien Agar)

3.5.3 Prosedur Praktikum

1. Menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis 9 ml dalam tabung reaksi

dan diautoclave.

2. Menyiapkan contoh tanah timbang 10 gram ke dalam 90 ml larutan fisiologis

yang ditempatkan dalam Erlenmeyer 250 ml, larutan tersebut bernilai .

24

3. Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke

dalam larutan fisiologis di tabung reaksi kemudian di vortex agar suspensi

bacteria homogen. Suspensi yang baru dibuat ini adalah pengenceran 100 kali

atau . Begitulah seterusnya sampai diperoleh pengenceran .

4. Pipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri steril

dan ulang sampai 3 kali setiap pengencaran tersebut.

5. Menyiapkan media NA yang telah didinginkan dengan temperature 40 – 45ºC,

kemudian tuangkan dalam petri tersebut + 15 ml lewat bunsen, putar 3 kali

agar media rata keseluruh cawan.

6. Setelah media benar–benar padat, inkubasikan pada temperatur yang

diinginkan letakkan cawan terbalik pada incubator agar uap air tidak


7. Inkubasikan 5 –7 hari kemudian lakukan perhitungan. Jumlah koloni di dua

cawan petri yang berturut – turut pengencerannya dari contoh yang sama harus

merupakan kelipatan 10 yang sama dengan pengenceran.

8. Bila dari pengenceran yang paling tinggi jumlah koloni melebihi 300 koloni

percawan petri berarti bahwa pengenceran terlalu rendah, sebaliknya bila

pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang dari 30, ini berarti

bahwa pengenceran terlalu tinggi, jika semua cawan petri menghasilkan

koloni yang memuaskan, pilih cawan petri yang berisi 30 sampai 300 koloni

percawwan petri. Untuk memudahkan perhiutungan gunakan Colony Counter

Number.

9. Perhitungan dari hasil. Kalikan rata – rata jumlah koloni per cawan petri

dengan faktor pengenceran untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme total

per gram contoh (tanah) kering udara. Hasil ini dikonversikan ke jumlah

mikroorganisme didalam 1 gram tanah kering mutlak dengan


25

3.5.4 Diagram Alir Populasi Mikroorganisme Pseudomonas Solanacearum

Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke

dalam larutan fisiologis di tabung reaksi kemudian di vortex agar suspensi

bacteria homogen. Suspensi yang baru dibuat ini adalah pengenceran 100

kali atau . Begitulah seterusnya sampai diperoleh pengenceran .

Memipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri

steril dan ulang sampai 3 kali setiap pengencaran tersebut.

Menyiapkan media NA yang telah didinginkan dengan temperature 40 –

45ºC, kemudian menuangkan dalam petri tersebut + 15 ml lewat bunsen,

putar 3 kali agar media rata keseluruh cawan.

Menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis 9 ml dalam tabung

reaksi dan diautoclave.

Menyiapkan contoh tanah timbang 10 gram ke dalam 90 ml larutan

fisiologis yang ditempatkan dalam Erlenmeyer 250 ml, larutan tersebut

bernilai untuk menguji pseudomonas solanacearum.

Setelah media benar–benar padat, menginkubasikan pada temperatur yang

diinginkan meletakkan cawan terbalik pada incubator agar uap air tidak


26

Bila dari pengenceran yang paling tinggi jumlah koloni melebihi 300

koloni percawan petri berarti bahwa pengenceran terlalu rendah,

sebaliknya bila pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang

dari 30, ini berarti bahwa pengenceran terlalu tinggi, jika semua cawan

petri menghasilkan koloni yang memuaskan, pilih cawan petri yang berisi

30 sampai 300 koloni percawwan petri. Untuk memudahkan perhiutungan

gunakan Colony Counter Number.

Perhitungan dari hasil. Kalikan rata – rata jumlah koloni per cawan petri

dengan faktor pengenceran untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme

spesifik per gram contoh (tanah) kering udara. Hasil ini dikonversikan ke

jumlah mikroorganisme didalam 1 gram tanah kering mutlak dengan


Menginkubasikan 5 –7 hari kemudian lakukan perhitungan. Jumlah koloni

di dua cawan petri yang berturut – turut pengencerannya dari contoh yang

sama harus merupakan kelipatan 10 yang sama dengan pengenceran.

28

BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

4.1.1 Biofisik Tanah

Tabel 4.1 Kondisi Lingkungan

1. Form No : 003/Lab BT/JT/2018

2. Kode SL (Satuan Lahan) : -

3. Tanggal Pemantauan : 26 September 2018

4. Nama Kelompok : A1

5. GPS-UTM : X = 8º 8’ 46‖

Y = 113º 43’ 52‖

6. Ketinggian : 117 mdpl

7. Jenis Tanah : Alluvial Kelabu

8. Lokasi : Dusun : Antirogo

Desa : Antirogo

Kecamatan : Sumbersari

Kabupaten : Jember

Propinsi : Jawa Timur

9. Vegetasi : Tanaman cabai

Tabel 4.2 Sifat Kimia Tanah

Analisis Satuan Harkat

pH 6-7 Netral

Nitrogen >2 cm Tinggi

Posfor Ada Tinggi

Kalium Ada Rendah

Sifat kimia tanah pada lokasi pengamatan dapat dilihat pada tabel diatas.

Analisis yang dilakukan mencakup pH tanah, kandungan nitrogen, kandungan

fosfor, dan kandungan kalium. Analisis dilakukan dengan menggunakan PUTS

atau Perangkat Uji Tanah Sawah. Hasil analisis menunjukkan bahwa pH tanah

29

pada tanaman cabai menunjukkan pH antara 6-7 dengan harkat netral. Kandungan

nitrogen menunjukkan hasil bahwa tanah pada tanaman cabai menunjukkan hasil

tinggi busa >2 cm dengan harkat tinggi. Kandungan fosfor menunjukkan hasil

bahwa tanah pada tanamn cabai adalah alluvial kelabu dengan harkat tinggi.

Kandungan kalium pada tanaman cabai tergolong dalam harkat rendah.

30

4.1.2 SOIL FAUNA

Tabel 4.3 Titik Pengambilan Sampel Pertama

No. Jenis Makro Fauna Jumlah Deskripsi

1. Cacing Tanah

1 1. Kingdom: Animalia

2. Kelas: Oligachaeta

3. Famili: Lumbricidae

4. Spesies: Lumbricus

terrestris

5. Filum: Annemalida

6. Ordo: Terricobe

7. Genus: Lumbricus

Ciri-Ciri:

Tidak memiliki tulang

belakang

Tubuhnya terdidi dari cincin/segmen

Tubuhnya berbentuk tabung (silindris)

berwarna merah keunguan

2. Semut Hitam


2. Kelas: Hexapoda

3. Famili: Fermadae

4. Spesies: Lucius

Fuliginosus

5. Filum: Anthropoda

6. Ordo: Hymenoptera

7. Genus: Lacius

Ciri-Ciri:

Berwarna hitam

Memiliki antena

Tubuhnya terdiri dari

kepala, dada dan perut

Memiliki 3 pasang kaki dibagian dada

31

Tabel 4.4 Titik Pengambilan Sampel Kedua

No. Jenis Makro Fauna Jumlah Deskripsi

1. Semut Hitam


2. Kelas: Hexapoda

3. Famili: Fermadae

4. Spesies: Lucius

Fuliginosus


6. Ordo: Hymenoptera

7. Genus: Lacius

Ciri-Ciri:

Berwarna hitam

Memiliki antena

Tubuhnya terdiri dari kepala, dada dan perut

Memiliki 3 pasang kaki dibagian dada

2. Rayap


2. Kelas: Insecta

3. Famili: Mastutemitidae


5. Orde: Blattodea

Ciri-Ciri:

Memiliki ukurang tubuh kecil

Bertubuh lunak dan berjalan lambat

Memiliki antena berbentuk lurus

kedepan

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan, maka didapatkan beberapa

soil fauna yang ditemukan. Pengambilan sampel dibagi menjadi dua titik, yaitu

titik pertama dan titik kedua pada lahan tanaman cabai yang sama. Soil fauna pada

titik pertama adalah cacing tanah dan semut hitam yang berjumlah 1 dan semut

hutam sebanyak 17 ekor. Semut hitam ditemukan pada kedalaman sekitar 3-5 cm,

sedangkan cacing tanah ditemukan pada kedalamn sekitar 10 cm. Soil fauna yang

didapatkan pada titik kedua hampir sama dengan pengambilan sampel pada titik

yang pertama, yaitu semut hitam dan rayap yang berjumlah 22 dan rayap 5 ekor.

32

4.1.3 Respirasi Tanah

Tabel 4.5 Pengamatan Respirasi Tanah

Pengamatan

Ke-

Tanggal a b T n R

1 17-10-18 2,6 ml 0,3 0,2 7 15,77

2 24-10-18 1,3 ml 0,5 0,2 7 7,54

3 31-10-18 1,2 ml 0,9 0,2 7 2,06

4 7-10-18 3,5 ml 2,4 0,2 7 7,54

Hasil respirasi tanah yang berasal dari tanaman cabai dapat dilihat pada

tabel diatas. Pengamatan dilakukan selama 4 kali dalam 4 minggu. Munggu

pertama menunjukkan bahwa CO2 yang dihasilkan sebesar 15,77. Pada

pengamatan minggu kedua menunjukkan bahwa CO2 yang dihasilkan menurun

drastis yaitu sebesar 7,45. Pada pengamatan minggu ketiga menunjukkan bahwa

CO2 terus mengalami penurunan yaitu sebesar 2.06. pada minggu ke emmpat

menunjukkan bahwa CO2 kembali meninggat menjadi 7,45.masing-masing

diamati setiap minggu selama 4 minggu berturut-turut proses respirasi tanah. Data

yang memeperoleh hasil respirasi tertinggi adalah pada minggu pertama dan data

yang menghasilkan CO2 terendah adalah pada pengamatan minggu ke tiga.

Perhitungan:

( )

Keterangan :

r = jumlah CO2 yang dihasilkan

a = ml HCL untuk stoplesdengan contoh tanah

b = ml HCL untuk stoples tanpa contoh tanah (blanko)

t = normalitas HCL

n = jumlah hari inkubasi

Normalitas HCL = 0,2 N

33

Perhitungan jumlah CO2 yang dihasilkan :

a. Perthitungan ke-1

( )

( )

Mg CO2/hari

b. Pengamatan ke-2

( )

( )

Mg CO2/hari

c. Pengamatan ke-3

( )

( )

Mg CO2/hari

d. Perhitungan ke-4

( )

( )

Mg CO2/hari

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

Minggu Ke-1 Minggu Ke-2 Minggu Ke-3 Minggu Ke-4

Grafik Respirasi Tanah

CO2

34

4.1.4 Populasi Mikroorganisme Total Tanah

Tabel 4.6 Populasi Mikroorganisme Total Tanah

Jenis Mikroorganisme ∑ Populasi (CFU/gram)

Mikroorganisme Total

Perhitungan :

∑ Rata-rata = ( )

=

=

∑ Koloni Terhitung = ∑

=

=

∑ Sel Bakteri =

=

=

=24,32 x 10

8 =2,43 x 10

7 CFU/gram

Kadar Air Tanah =

BK Tanah = Berat Basah x (1 - Kadar Air)

= 5 x (1 – 0,26)

= 5 x 0,74

= 3,7

Hasil pengamatan populasi mikroorganisme total pada tanaman cabai

dapat dilihat pada tabel diatas. Pengamatan dilakukan dengan masa penyimpanan

selama 5 hari. Hasil pengamatan populasi mikroorganisme total menunjukkan

bahwa dari rata-rata pengenceran 10-7

adalah sebesar 9 × 107.

35

4.1.5 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah

Tabel 4.7 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah

No Jenis Bakteri ∑ Bakteri Ket

1 Pseudomonas

Perhitungan :

∑ rata-rata = ( )

=

∑ Koloni Tehitung = ∑

=

=

∑ Populasi Bakteri = ∑

=

=

= = CFU/gram

Kadar Air Tanah =

BK Tanah = Berat Basah x (1 - Kadar Air)

= 5 x (1 – 0,26)

= 5 x 0,74

= 3,7

Hasil pengamatan moroorganisme yang berasal dari tanaman cabai dapat

dilihat pada tabel diatas. Pengamatan mokroorganisme bakteri Pseudomonas

dalam tanah dilakukan sekali dengan lama penyimpanan selama 5 hari sebelum

dilakukan pengamatan. Hasil pengamatan menunjukkan bahwa rata-rata pada

pengenceran 10-7

sebesar 40 × 10-7.

36

4.2 Pembahasan Umum

Praktikum yang dilakukan yaitu Pengambilan sampel tanah diambil di

lokasi yaitu Desa Antirogo. Ketinggian Desa Antirogo yaitu 117 mdpl, dengan

menggunakan pola acak, pola zigzag, dan pola diagonal. Sampel tanah yang

diambil dari lapang merupakan jenis tanah alluvial kelabu. Vegetasi dari contoh

sampel tanah yang diambil untuk dilakukan penelitian tersebut yaitu dengan

mengunakan tanaman cabai. Pengujian tanah yang dilakukan ini dengan

menggunakan alat yaitu PUTS. PUTS ini merupakan suatu alat bantu yang

digunakan untuk menganalisis kadar hara yang terdapat di dalam tanah untuk

menentukan kandungan N, P, K dan pH dari tanah yang sudah diambil sampelnya.

Pengujian Nitrogen (N) pada sampel tanah yag telah diambil yaitu

memiliki hasil yang tinggi. Kandungan Nitrogen (N) yang tinggi dapat dilihat dari

cairan yang digunakan untuk menguji memiliki hasil yaitu warna hijau tua. Warna

hijau tua tersebut menunjukkan bahwa contoh sampel tanah tersebut banyak

memiliki kandungan Nitrogen (N) yang tinggi, dengan kandungan nitrogen yang

tinggi dapat dilakukan rekomendasi pemupukan urea sebanyak 300 kg. Unsur

Nitrogen (N) merupakan unsur hara utama bagi pertumbuhan tanaman, pada

umumnya unsur tersebut sangat diperlukan untuk pertumbuhan atau pembentukan

bagian vegetative tanaman seperti daun, batang dan akar. Unsur Nitrogen (N)

sangat penting untuk mendukung pertumbuhan tanaman karena tanaman yang

kekurangan unsur Nitrogen (N) akan mengalami pertumbuhan yang lambat,

daunnya sempit dan tanaman tetap pendek sehinga pertumbuhan tanaman akan

terhambat (Purnomo dkk., 2017)

Pengujian Posfor (P) yang dilakukan pada sampel tanah yang telah diambil

yaitu memiliki hasil yang tinggi. Hasil yang tinggi akan menunjukkan cairan yang

di uji berwarna biru muda. Hasil tersebut dapat dilakukan rekomendasi pupuk SP-

36 sebanayak 50 kg / ha. Kandungan unsur Posfor (P) yang tinggi sangat

berpengaruh terhadap pertumbuhan dan perkembangan tanaman, karena unsur

Posfor (P) berpengaruh terhadap perluasan permukaan daun sehingga laju

fotosintesis tanaman dapat meningkat, dengan meingkatnya laju fotosisntesi,

pertumbuhan tinggi tanaman juga akan mengalami peningkatan, sehingga unsur

37

Posfor (P) di dalam tanah memegang peran yang sangat penting pada tanaman

(Jamilah dkk., 2016).

Kalium (K) yang terdapat pada contoh sampel tanah yang diambil setelah

dilakukan pengujian memiliki hasil kalium (K) yang rendah dapat dilihat dari

cairan yang digunakan untuk analisis memiliki warna kuning keemasan. Hal

tersebut menandakan unsur Kalium (K) yang terdapat pada contoh sampel tanah

yang diambil di Desa Antirogo dengan vegetasi tanaman cabai tersebut rendah,

sehingga pada lahan tanaman cabai tersebut direkomendasikan untuk memberikan

pupuk KCl sebanyak 50 kg/ha dan 5 t jerami/ha. Seperti yang dikemukakan oleh

Subandi (2013) unsur kalium sangat penting karena unsur kalium relatif

dibutuhkan oleh tanaman agar tanaman dapat tumbuh dengan normal dan

berproduksi secara optimal. Unsur Kaliuam (K) sangat menentukan kualitas dan

kuantitas hasil tanaman karena unsur Kalium (K) memiliki peran yang penting

yaitu berperan dalam sintesis protein, proses dan translokasi hasil fotosintesis,

Peningkatan ketahanan tanaman terhadap gangguan hama dan penyakit.

Kandungan Ph yang terdapat pada contoh sampel tanah yang diambil yaitu

memiliki ph 6-7. Kandungan pH tersebut menunjukkan keadaan tanah tersebut

netral,kandungan pH tersebut dapat diketahui dengan terlihatnya cairan yang

digunakan untuk menguji sampel tanah tersebut berwarna kekuningan sehingga

hasil tersebut menunjukkan keadaan pH yang netral, pH atau kemasan tanah dapat

disebbkan oleh beberapa factor diantaranya yaitu bahan induk tanah, bahan

organic tanah, hirdolisis aluminium reaksi oksidasi terhadap mineral tertentu dan

pencucian basa-basa di dalam tanah, sehingga pada lahan tersebut

direkomendasikan untuk menggunakan system drainase yang konvension

(Syahputra dan Razali, 2015).

Berdasarkan pengujian kandungan pH tanah sawah titik pertama dan titik

kedua yang diketahui netral, maka diperoleh beberapa jenis soil fauna yang

terdapat dalam petak pengambilan sampel. Pengambilan sampel tanah dilakukan

dengan metode kuadrat, yaitu membuat kuadrat di atas tanah dengan luasan

tertentu, selebar 25cm x 25cm dengan kedalaman 10-25cm. Petakan yang telah

dibuat kemudian digali sesuai dengan kedalaman yang telah di tentukan. Kedalam

38

tanah galian yang diambil sangat berpengaruh terhadap jenis fauna yang

diperoleh.

Hasil dari penggalian tanah tersebut kemudian diletakkan diatas kain untuk

dilakukan pengamatan jenis fauna dan menghitung jumlah fauna yang terdapat

dalam tanah sampel dan diketahui titik 1 dan titik 2 maka diperoleh beberapa jenis

fauna, yaitu cacing berjumlah 1 ekor, semut hitam berjumlah kurang lebih 39

ekor, dan rayap sebanyak 5 ekor. Cacing tanah merupakan hewan animalia,

memiliki bentuk tubuh pipih. Fungsi cacing tanah dalam tanah adalah untuk

meningkatkan infiltrasi air dan aerase tanah dibuat oleh cacing tanah dapat

meningkatkan masuknya air dalam tanah lebih tinggi dibandingkan tanpa adanya

saluran cacing tanah (Gbarakoro T.N and Zabbey N, 2013). Keragaman

makroorganisme atau makrofauna memiliki populasi yang cukup banyak

dikarenakan lahan tersebut memiliki kandungan pH netral, dan memiliki

kandungan N dan P yang tinggi tetapi kandungan K rendah. Kandungan N,P,K

yang diketahui sehingga terdapat populasi makroorganisme seperti semut, rayap,

cacing, dll.

Populasi semut hitam dalam tanah sampel yang diperoleh memiliki jumlah

yang berbeda, dimana jumlah populasi semut hitam pada titik pengambilan

sampel kedua lebih banyak dibandingkan pada titik sampel pertama. Semut dapat

melakukan daur ulang dengan cara memasukkan bahan organik mati atau sekarat

dan nutrisi dalam tanah. Banya juga jenis yang aktif membubarkan bibit bebagai

jenis tanaman. Karena jumlah populasi semut yang banyak, semut dapat

membantu tumbuhan dalam siklus reproduksi tanaman, misalnya dalam

membantu penyerbukan dengan begitu maka semut dan tanaman menunjukkan

sifat timbal balik yang cukup besar. Semut tidak hanya membantu proses

penyerbukan namun juga memberi pupuk pada tanaman dengan nutrisi penting

(Moh Ikdal, dkk. 2014).

Rayap yang terdapat dalam tanah sampel memang tidak terlalu banyak

yaitu hanya berkisat 5 ekor saja. Rayap merupan salah satu hewan purba karena

sudah ada sejak 200 juta tahun silam. Pada umumnya rayap dikenal sebagai

serangga yang menyebabkan kerugian terhadap lingkungan. Namun dalam tanah

39

rayap berpengaruh penting yaitu rayap membuat sarang dengan cara menggali

lubang berupa pori-pori kecil pada tanah, akibatnya air dapat meresap lebih jauh

dalam tanah. Dalam sebuah riset yang terdapat dalam junal Science, pera peneliti

menyatakan bahwa tanaman yang tumbuh disekitar sarang rayap dapat tumbuh

lebih lama pada kindisi kering. Gundukan sarang rayap dapat menjadi pertahanan

potensial untuk menghadapi perubahan iklim dan dapat mencegah tanah menjadi

lebih tandus.

Indikator suburnya tanah ditentukan dengan melihat populasi

mikroorganisme dalam suatu tanah tertentu disebut respirasi tanah.

Mikroorganisme memiliki pengaruh yang sangat penting bagi kesuburan tanah.

Mikroorganisme tanah memiliki peran sebagai dekomposer bahan-bahan organik

yang dapat menjadi nutrisi baru bagi tanah dan kandungan hara pada tanah

mencukupi bagi tanaman tersebut. Mengidentifikasi dan mengetahui aktifitas dan

jumlah mikroorganisme dalam tanah dapat menggunakan metode penghitungan

jumlah mikroorganisme secara langsung dan juga menghitung kadar

karbondioksida yang dikeluarkan atau dilepas oleh mikroorganisme dalam jangka

waktu tertentu. Mengetahui kesuburan tanah dapat diketahui dengan cara lain

seperti korelasi antara jumlah C organic tanah dengan jumlah mikroorganisme

tanah, yang berkorelasi semakin tinggi nilai C organic tanah maka jumlah

mikroorganisme di dalam tanah tersebut dipastikan banyak yang berkorelasi juga

dengan jumlah karbondioksida yang dihasilkan mikroorganisme tanah juga tinggi

(Nasution dkk, 2015).

Kadar karbon setiap minggunya mengalami perubahan. Mulai minggu 1

hingga minggu ke 3 mengalami penurunan secara signifikan hal ini dikarenakan

jumlah C-organik dalam tanah yang menurun sehingga aktifitas mikroorganisme

terbatas yang mempengaruhi jumlah karbondioksida yang dihasilkan. Hasil dari

minggu ke 4 mengalami peningktan dari minggu ke 3 hal ini dikarenakan aktifitas

jumlah C-organik dan mikroorganisme yang meningkat sehingga terjadi

perubahan pada minggu sebelumnya yang semula turun menjadi naik (Putri dkk,

2017).

Mikroorganisme merupakan organisme yang berukuran kecil sehingga

40

tidak dapat dilihat dengan mata telanjang. Mikroorganisme dapat disebut mikroba

atau jasad renik. Tanah yang subur mengandung lebih dari 100 juta

mikroorganisme per gram tanah. Kehadiran mikroorganisme tanah bermanfaat

seperti bakteri pelrut fospat dan bakteri penambat nitrogen non-simbiotik yang

diharapkan dapat meningkatkan kesuburan tanah (Prayudyaningsih, 2015).

Jumlah total mikroorganisme yang terdapat dalam tanah digunakan

sebagai indeks kesuburan tanah (fertility indeks). Populasi yang tinggi

menggambarkan adanya suplai makanan atau energi yang cukup ditambah lagi

dengan temperatur yang sesuai, ketersediaan air yang cukup, kondisi ekologi lain

yang mendukung perkembangan mikroorganisme pada tanah tersebut.

Berdasarkan hasil pengamatan populasi mikroorganisme total tanah

menggunakan media agar dapat diketahui total populasi mikroorganismenya yaitu

0,06 x (FU)/ Sel mikroba yang masih hidup ditumbuhkan ke dalam

media agar sehingga sel mikroba akan berkembangbiak dan membentuk koloni

yang dapat dilihat langsung dengan mata tanpa alat bantu mikroskop. Berdasarkan

3 sampel cawan dengan pengenceran terdapat 1 cawan

yang berhasil dilihat populasi bakteri yang telah dilakukan pengenceran,

kemudian mengitung jumlah koloni pada cawan tersebut. Cawan yang dipilih dan

dihitung merupakan cawan yang mengandung jumlah koloni 30-300 koloni.

Perhitungan koloni untuk menghitung jumlah total mikroorganisme fungi dan

bakteri yang dilakukan menggunakan pengenceran.

Bakteri yang berperan sebagai pelarut fosfat pada tanah telah banyak

ditemukan, diantaranya genera Pseudomonas, Micrococcus, Bacillus,

Azotobacter, Microbacterium dan Flavobacterium. Bakteri pelarut Fosfat adalah

bakteri aerob khemoorganotrof yang berbentuk batang lurus atau lengkung dengan

ukuran tiap sel bakteri 0,5-0,1µm x 1,5-4,0µm. Bakteri Pelarut Fosfat dapat

membantu mengurai senyawa-senyawa kompleks yang tidak dapat diserap

tanaman menjadi tersedia dan dapat digunakan oleh tanaman. Bakteri Pelarut

Fosfat tidak membentuk spora dan bereaksi negatif terhadap pewarnaan gram.

Bakteri Pelarut Fosfat di dalam tanah berjumlah 3-15% dari populasi bakteri.

Bakteri Pelarut Fosfat merupakan bakteri dekomposer yang mengkonsumsi

41

senyawa karbon sederhana, seperti eskudrat akar dan sisa tanaman yang dapat

mengkonversi energi dalam bahan organik tanah menjadi bentuk yang bermanfaat

untuk organisme tanah lain dalam rantai makanan tanah (Aditya dkk, 2015).

Bakteri pelarut fosfat dalam tanah dapat dilakukan dengan isolasi bakteri

pelarut fosfat atau uji fostase. Uji fosfatase dilakukan untuk melihat kemampuan

hidup bakteri pelarut fosfat. Media Agar yang sudah disterilkan disebarkan merata

ke dalam cawan petri. Kemudiam dilakukan pengamatan secara makroskopis

terhadap cawan yang telah di isolasi selama 72 jam dengan suhu 30°C dengan

melihat jumlah koloninya untuk kepentingan lebih lanjut dapat dilakukan

pengamatan secara mikroskopis untuk melihat morfologi bakteri mulai dari

bentuk dan warna sel dengan pewarnaan gram. Isolasi Pseudomonas dilakuakan

dengan sesteril mungkin untuk hasil isolasi yang tidak terkontaminasi oleh bakteri

yang terdapat diluar sampel tanah (Setiawati dkk, 2014).

Pseudomonas terbagi atas grup, diantaranya adalah sub-grup berpendarfluor

(Fluorescent) yang dapat mengeluarkan pigmen phenazine. Kemampuan

menghasilkan pigmen phenazine juga dijumpai pada kelompok tak

berpendarfluor. Isolat bakteri yang dilakukan dengan media Agar hanya dapat

menumbukan bakteri pelarut fosfat saja sehingga dapat disimpulkan bahwa

bakteri yang terisolasi adalah Bakteri Pelarut Fosfat salah satunya jenis dari

Pseudomonas dengan jumlah 0,83 x . Kemampuan Pseudomonas dalam

mendegradasi jenis hidrokarbon dalam keberhasilannya dalam bioremediasi

lingkungan akibat pencemaran hidrokarbon dalam interaksi antara pseudomonas

dengan senyawa hidrokarbon. Pseudomonas merupakan bakteri

hidrokarbonoklastik yang mampu mendegradasi berbagai jenis hidrokarbon.

Keberhasilan penggunaan bakteri pseudomonas dalam upaya remediasi

lingkungan akibat pencemaran hidrokarbon membutuhkan pemahaman tentang

mekanisme interaksi antara bakteri pseudomonas dengan senyawa hidrokarbon.

Selain itu bakteri dari genus Bacillus termasuk bakteri yang memiliki kemampuan

yang tinggi dalam melarutkan fosfat. Kemampuan bakteri pseudomonas dalam

mendegradasi hidrokarbon dan dalam menghasilkan biosurfaktan menunjukkan

bahwa isolat bakteri pseudomonas berpotensi untuk digunakan dalam upaya

42

bioremediasi lingkungan akibat pencemaran hidrokarbon (Lukito dkk, 2013).

42

BAB 5. KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

1. Praktikum yang dilakukan yaitu biofisik tanah dengan mengamati

kandungan N,P,K dan Ph di dalam tanah. Kandungan N dan kandungan P

pada sampel tanah tersebut tinggi sedangkan kandungan K rendah dan

kandungan Ph nya yaitu netral.

2. Soil fauna yang telah didapatkan pada titik pengambilan sampel pertama

yaitu cacing tanah dan semut hitam, sedangkan soil fauna yang didapatkan

pada titik pengambilan sampel kedua yaitu semut hitam dan rayap

3. Praktikum respirasi tanah dengan 4 kali titrasi yang dilakukan hasil tertinggi

terdapat pada pengamatan pertama dengan hasil 15,77 dan hasil paling

rendah terdapat pada pengamatan ketiga dengan hasil 2,06

4. Praktium populasi mikroorganisme total yang didapatkan yaitu dengan

populasi 0,06 x 10 ⁶

5. Praktikum yang dilakukan dengan mengamati bakteri yang spesifik yaitu

pseudomonas didapatkan hasil bakteri yaitu 0,83 x 10 ֿֿ ⁵

5.2 Saran

Sebaiknya praktikum Biologi Tanah yang dilakukan lebih baik lagi dari

persiapan segi alat yang akan digunakan untuk praktikum maupun dari segi

teknisnnya dan sebaiknya pengembalian tabel acc lebih cepat.

DAFTAR PUSTAKA

Aditya M, Idwar, dan Nurbaiti. 2015. Aplikasi Bakteri Pelarut Fosfat Isolat No.

68 dengan Berbagai Takaran Batuan Fosfat Pada Medium Gambut dalam

Meningkatkan Pertumbuhan dan Produksi Kacang Hijau (Vigna Radiata

L.). Varietas 129. JOM Faperta. 2(2): 1-15.

Briones, J. M. 2014. Soil Fauna And Soil Functions : a Jigsaw Puzzle.

Environmental Science. 2(7) : 1-22

Cahyono B. 2003. Teknik Budidaya dan Analisis Usahatani Cabai Rawit.

Kanisius : Yogyakarta.

Gbarakoro T. N and Zabbey N. 2013. Soil Makrofauna Diversity and Responses

to Agro-Herbicide Toxicities in Rainforest Zone of the Niger Delt,

Nigeria. Applied Journal of Hygiene. Vol 2 (1): 01-07.

Hilwan, I. dan Handayani, P. E. 2013. Keanekaragaman Mesofauna dan

Makrofauna Tanah Pada Areal Bekas Tambang Timah di Kabupaten

Belitung, Provinsi Kepulauan Bangka-Belitung. Silvikultur Tropika. 4(1)

: 35-41

Imtiyaz, H., Prasetio, H. B., dan Hidayat, N. 2017. Sistem Pendukung Keputusan

Budidaya Tanaman Cabai Berdasarkan Prediksi Curah Hujan.

Pengembangan Teknologi Informasi dan Ilmu Komputer. 1(9) : 733-738.

Jamilah, M., Purnomowati dan Dwiputranto, U. 2016. Pertumbuhan Cabai Merah

(Capsicum annuum L.) Pada Tanah Masam yang Diinokulasi Mikoriza

Vesikula Arbuskula (MVA) Campuran dan Pupuk Fosfat. Biosfera. 33(1)

: 37-45.

Lukito A. B. D., Goretti M., dan Goeltom M. T. Pertumbuhan Bakteri

Pseudomonas aeruginosa dan Dekolorisasi Senyawa Pewarna Stroberi

Red dan Orange Yellow dalam Kondisi Curah. Ilmiah Mahasiswa

Universitas Surabaya. 2(1): 1-16.

Marsandi, F., Hermansah, Agustian, Yasin, S. 2017. Keanekaragaman Organisme

Tanah dan Hubungannya dengan Keanekragaman Spesies Tumbuhan

Kawasan Hutan Hujan Tropis Pinang-Pinang, Padang, Indonesia. Pros

Sem Nas Masy Biodiv Indon. 3(2) : 309-318.

Moh. Ikbal, Nugroho Susetya Putra, dan Edhi Martono. 2014. Keragaman Semut

Pada Ekosistem Tanaman Kakao Di Desa Banjaroya Kecamatan

Kalibawang Yogyakarta. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia.

18(2):79-88.

Nasution N. A. P., dkk. Respirasi Tanah Pada Sebagian Lokasi Di Hutan Taman

Nasional Bukit Barisan Selatan (TNBBS). Jurnal Agrotek Tropika, Vol

3, No. 3: 427-433 2015.

Ningtyas, D.A., N.Basuki., dan Respatijarti.2015. Seleksi sifat ketahanan tanaman

cabai besar (Capsicum annuum L.) pada populasi f2 terhadap penyakit

Layu bakteri (Ralstonia solanacearum). Produksi Tanaman. 3(8) :632-

629.

Nurrohman, E., Rahardjanto, A., dan Wahyuni, S. 2018. Studi Hubungan

Keanekaragaman Makrofauna Tanah Dengan Kandungan C-Organik dan

Organophosfat Tanah di Perkebunan Cokelat (Theobroma cacao L.)

Kalibaru Banyuwangi.

Pangestu, E., Sri Y., Ainin N., dan Henrie B.2017. Pengaruh sistem olah tanah

dan aplikasi herbisida Terhadap respirasi tanah pada lahan

pertanaman jagung (zea mays) musim tanam ke tiga. Agrotek Tropika.

5(2) :113– 118.

Prayudyaningsih, R., Nursyamsi., dan R, Sari.2015. Mikroorganisme Tanah

Bermanfaat Pada Rhizosfer Tanaman Umbi Di Bawah Tegakan Hutan

Rakyat Sulawesi Selatan. Pros Sem Nas Masy Biodiv Indon. 1(4) :954-

959.

Purnomo, A. E., Sutrisno, E. dan Sumiyati, S. 2017. Pengaruh Variasi C/N Rasio

Terhadap Produksi Kompos Dan Kandungan Kalium (K), Pospat (P)

DariI Batang Pisang Dengan Kombinasi Kotoran Sapi Dalam Sistem

Vermicomposting. Teknik Lingkungan. 6(2):1-15.

Putri N. A. R., dkk. Pengaruh Sistem Olah Tanah dan Aplikasi Mulsa Bagas

Terhadap Respirasi Tanah Pada Pertanaman Tebu (Saccharum

Officinarum L) Ratoon Ke-1 Periode 2 Di PT Gunung Madu Plantations.

Jurnal Agrotek Tropika. Vol 5, No. 2: 109-112, 2017.

Setyawan, D., H. Hanum. 2014. Respirasi Tanah sebagai Indikator Kepulihan

Lahan Pascatambang Batubara di Sumatera Selatan. Lahan Suboptimal.

3(1) :71-75.

Setiawati M. R., Suryatmana P., Hindersah R., Fitriatin B. N. dan Herdiyantoro D.

2014. Karakterisasi Isolat Bakteri Pelarut Fosfat Untuk Meningkatkan

Ketersediaan P Pada Media Kultur Cair Tanaman Jagung (Zea Mays L.).

Ilmu Hayati dan Fisik. 16(1) : 30-34.

Subandi. 2013. Peran dan Pengelolaan Hara Kalium Untuk Produksi Pangan di

Indonesia. Pengembangan Inovasi Pertanian. 6(1) : 1-10.

Syahputra, E, Fauzi dan Razali. 2015. Karakteristik Sifat Kimia Sub Grup Tanah

Ultisol di Beberapa Wilayah Sumatera Utara. 4(1) : 1796-1803.

Utami, Nur Hikmah. 2009. Kajian Sifat Fisik,Sifat Kimia Dan Sifat Biologi Tanah

Paska Tambang Galian C Pada Tiga Penutupan Lahan (Studi Kasus

Pertambangan Pasir (Galian C) Di Desa Gumulung Tonggoh, Kecamatan

Astanajapura, Kabupaten Cirebon, Provinsi Jawa Barat). Skripsi : Institut

Pertanian Bogor.

LAMPIRAN

Peta Jenis Tanah

Dokumentasi

Acara 1. Biofisik Tanah

Acara 2. Soil Fauna

Acara 3. Respirasi Tanah

Acara 4. Populasi Mikroorganisme Total Tanah

Acara 5. Mikroorganisme spesifik

identifikasi aktivitas dan populasi mikro organisme dan makro organisme tanah … · 2018. 12....

Documents