curso para auxiliar de lab oratorio

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CURSO PARA AUXILIAR DE LABORATORIO.INDICE TEMATICO

TEMA1 QUIMICA CLINICA 3OBJETIVO 3COMPRENDE 3EXÁMENES MÁS USUALES 3INFORMACION GENERAL DE LAS TECNICAS DE QUIMICA CLINICA(Cuadro informativo)GLUCOSAUREA UREA 2CREATININACREATININA2ACIDO URICOPRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA (PTG) Y GLUCOSA POST PRANDIALGLUCOSA POST PRANDIALFOSFORO EN SANGRE Y ORINACLOROEXAMEN GENERAL DE ORINA (GEO)DETERMINA PASOS DENSIDAD. ALBÚMINA GLUCOSA BILLIRRUBINA BROMOSULFALEINA MÉTODO

3

555666666

MANEJO DE MUESTRAS Y MATERIAL. 7A) TOMA DE MUESTRAS. 7B) RECOGER MUESTRAS Y SOLICITUDES. 7C) DISPONER REACTIVOS Y MATERIAL EN LAS MESAS DE TRABAJO. 7D) CENTRIFUGAR Y ORDENAS MUESTRAS. 8-9E) AYUDAR A REGISTRAR Y REPORTAR RESULTADOS. 9F) MEDIR VOLUMENES ORINARIOS. 9G) LIMPIAR EL EQUIPO. SOL (SEGURIDAD, ORDEN Y LIMPIEZA) 9SEGURIDAD 10BOLSAS Y CONTENEDORES (NORMA INTERNACIONAL DE SEGURIDAD) 10ORDEN. 10LIMPIEZA 10PROCEDIMIENTO DE ESTERILIZACION 10-11USO DEL AUTOCLAVE Manera de usarse

11-1212

NADA H) PREPARAR MATERIAL ESPECIAL P/ELECTROLITOS Y GASOMETRIAS.

12

TEMA2 MICROBIOLOGIA 13OBJETIVO 13COMPRENDE 13EXÁMENES MÁS USUALES 13

MANEJO DE MUESTRAS Y MATERIAL. 13A) TOMA DE MUESTRAS. 13B) RECOGER MUESTRAS Y SOLICITUDES. 13C) PREPARAR Y DSIPONER MEDIOS DE CULTIVO Y MATERIAL EN

LAS MESAS DE TRABAJO.13

D) ORDENAR MUESTRAS Y NUMERAR 14E) AYUDAR A REGISTRAR Y REPORTAR RESULTADOS EN EL LIBRO

DIARIO14

F) ELABORACION DE MEDIOS DE CULTIVO. CONSERVACION DE LOS MEDIOS DE CULTIVO LOS MEDIOS DE CULTIVO POR SU USO SIEMBRA DE MEDIOS

14-15

G) TINCIONES 16

2

GRAM TECNICA

ZIEHL NEELSEN TECNICA

WRIGHT-GIEMSA TECNICA

1617

17

TEMA 3 PARASITOLOGIA 18OBJETIVO 18COMPRENDE 18EXÁMENES MÁS USUALES 18COPROPARASITOSCOPICO (Técnica de Faust ó de Flotación en sulfato de Zinc modificada)

18

COPROLOGICO GENERAL 18INVESTIGACION DE AMIBA EN FRESCO Y RASPADO ANAL (Técnica de Graham)

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TEMA 4 INMUNOLOGIA 20OBJETIVO 20COMPRENDE 20EXÁMENES MÁS USUALES 20A) ACTIVIDADES DEL AUXILIAR EN ESTE DEPARTAMENTO 20B) PREPARAR Y DISPONER EL MATERIAL Y REACTIVOS EN LAS

MESAS DE TRABAJO20

C) AUXILIAR EN EL INFORME Y REGISTRO DE LOS RESULTADOS. 20D) LIMPIEZA DEL EQUIPO 20

TEMA 5 HORMONAS 21A) ACTIVIDADES DEL AUXILIAR EN ESTE DEPARTAMENTO 21B) PREPARAR Y DISPONER EL MATERIAL Y REACTIVOS EN LAS

MESAS DE TRABAJO21

C) MEDIR VOLÚMENES URINARIOS (SEPARACION DE ALICUOTAS POR CADA ESTUDIO SOLICITADO).

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D) AUXILIO EN EL INFORME Y REGISTRO DE RESULTADOS 21E) LIMPIEZA DEL EQUIPO 22F) INFORMACION GENERAL DE LAS TECNICAS 23

TEMA 6 HEMATOLOGIA (cuestionario) 24-26GLOSARIO 27-28

TEMA 1

3

QUIMICA CLINICA

OBJETIVO

Analizar los líquidos corporales (orina, sangre, líquido encéfalo raquídeo), de la condición salud-enfermedad de los pacientes. E informar al médico o al especialista sobre el estado del paciente y ayudar en el diagnóstico y pronóstico de las diferentes enfermedades.

COMPRENDE.

Análisis de los parámetros químicos medibles de los líquidos corporales, útiles en el diagnóstico y pronóstico de las diferentes enfermedades.

EXÁMENES MÁS USUALES.Glucosa Urea Creatinina Acido UricoTolerancia a la Glucosa y Glucosa post-prandial

GEO (Exámen General de Orina)

Colesterol Esteres de Colesterol

Bilirrubina Proteínas totales Albúmina GlobulinasRelac. Albúmina/Globulinas Transaminasa Oxalacética Transaminasa Pirúvica Fosfatasa AlcalinaFosfatasa Acida Deshidrogenasa láctica Creatinina fosfoquinasa CalcioCO2 (pH) Cloro PotasioSodio Líquido Céfalo Raquídeo Bromosulfaleína D-XilosaAmonio Trigliceridos Fosforo en sangre Depuración de Creatinina

INFORMACION GENERAL DE LAS TECNICAS DE QUIMICA CLINICA

EXAMEN TECNICA DEMATERIAL BIOLOGICO MATERIAL VIDRIO REACTIVOS

GLUCOSA HULTMAN Suero, plasma, orina LCR

Tubos de vidrio 15*150 Ortotolouidina (en pipetor automático)Baño de agua hirvienteCanicas

UREA ORMSBY 2 ml de sangre Matraces Erlenmeyer de 50 mlPipetas graduadas de 1 y 5 mlTubos 15*125 graduados a 10 ml

Acido sulfúrico s/3 NTungstato de Sodio al 10%Diacetil Monoxima al 3%Reactivo fosfórico sulfúrico cúpricoBaño de agua hirvienteCanicas

UREA 2 2 ml de sangre Tubos de vidrio 15*125Pipetas serológicas graduadas de 1 y 5 ml.

Reactivos de Tiosemicabarzida y Reactivo de cloruro Férrico (soluciones de trabajo)

CREATININA BONSNES-TAUSSKY

2ml de sangre Tubos 15*125 graduados a 10 mlTapones de hulePipetas serológicas graduadas de 1 y 5 ml

Acido pícrico 0.04MHidróxido de sodio 0.75 N

CREATININA 2 Suero y plasma Tubos de vidrio 13*100Pipetas serológicas graduadas de 1 y 5 ml

Acido tricoacético al 3 %Acido pícrico 0.04MHidróxido de sodio 0.75 N

ACIDO URICO FOLIN-NEWTON

2ml de sangre Tubos graduados a 25 mlTapones de hulePipetas serológicas graduadas de 1, 5 ml y 10 ml

Reactivo cianuro ureaReactivo de newton

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PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA (PTG) Y GLUCOSA POST PRANDIAL

DETERMINACION DE LA DIABETES Antes del exámen una dieta rica en carbohidratos.Sin haber ingerido alimentos cuando menos 8 horas.La PTG debe iniciarse entre las 7 y 9 AM.Mientras sé este efectuando la prueba, el paciente debe abstenerse de hacer ejercicio, ni tomar alcohol, café o fumar

2 a 3 ml de sangre en ayunas y colocar en tubo “0”

4 tubos para determinación de glucosa con número de folio de la solicitud, nombre del paciente y marcando 0 ,1 ,2 3.“0” Hacer prueba de Dextrostix alguna tira reactiva, tomando sangre de la muestra (siga las instrucciones del frasco, sí en esta prueba se obtiene un valor más alto de lo normal, consultar al químico o al jefe de laboratorio, sí debe administrar la carga de glucosa.)Administrar 100 gr. de glucosa disueltos en 300 ml de agua (en algunas ocasiones el médico solicitante especifica otra cantidad en la carga de glucosa). Debe ingerirse en un lapso de 5 min. Y tomar el tiempo y extraer de 2 a 3 ml de sangre:A los 60 minutos y colocar en tubo marcado con “1“.A los 120 min. Y colocar en tubo marcado con “2”.A los 180 min. en tubo “3”.Las muestras se procesan con la técnica de GLUCOSA de HULTMAN

100 gr. de glucosa en 300 ml de agua.

GLUCOSA POST PRANDIAL

Sin haber ingerido alimentos x cuando menos 8 horas.Instruya al paciente sobre el desayuno a tomar (rico en carbohidratos) y que tome el tiempo al momento que termina el desayuno y regrese al laboratorio.

2 a 3 ml de sangre en ayunas y colocar en tubo “0”

Identifique 2 tubos para determinación de glucosa con # folio y nombre del paciente. Márquelos “Ayuno” y “Post Prandial”.Extraiga de 2 a 3 ml de sangre en ayunas y colóquelo en el tubo marcado “Ayuna”.2 horas después del desayuno extraiga 2 a 3 ml de sangre y deposítelos en el tubo “Post-Prandial”.

Técnica de HULTMAN

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FOSFORO EN SANGRE Y ORINA

FISKE SUBBAROW

Suero u Orina (se puede hacer en orina de 1 micción o en orina de 24 horas filtrada)

Tubos de vidrio 20*150Tubos cónicos graduados a 10 mlEmbudos de polietileno de 7.5 cm. de diámetro.Papel filtro Whatman # 42.Pipetas serológicas de 1, 5 y 10 ml.

Acido tricloroacetico al 10 %Reactivo de molibdatoReactivo amino naftol sulfónico

CLORO SCHALES Y SCHALES

1 ml. de sangre Tubos de Vidrio 20*150Pipetas serológicas de 1, 5 y 10 ml.

Reactivo Difenil-carbonazaReactivo Nitrato Mercúrico.

EXAMEN GENERAL DE ORINA (GEO)

Es considerado una de las pruebas más sencillas y a la vez más importantes, por medio de él, se puede obtener mucha información en forma rápida y económica. Al igual que todo debe llevarse a cabo en forma cuidadosa y perfectamente controlada.

DETERMINA

1) Densidad2) (pH)3) Albúmina (proteinuria)4) Glucosa (Glocosuria)5) Acetona (cetonuria)6) Bilirrubina (Bilirrubinuria)7) Hemoglobina (hemoglobinuria)8) Sedimento urinario

Una vez concentradas las muestras y las solicitudes en el departamento, se ordenan en forma progresiva y se numeran, verificando que el número de folio y el nombre del paciente sea el mimo en la solicitud y en la muestra, colocando el mismo número de folio y el nombre del paciente y con el mismo número progresivo en ambas.

Enseguida elabore un libro de registro anotando los datos de la muestra y después los resultados obtenidos:

# Folio # progresivo Densidad (ph) Albúmina. Glucosa Acetona3405 1 1.011 6 0 0 03408 2 Bilirub 0 Hb 0 Luec. 2 Eritrocitos 0

Después de haber ordenado y registrado las solicitudes conjuntamente con el químico o el laboratorista se precederá a efectuar los exámenes de orina

PASOS

1. Vacíe aproximadamente 7 ml. De cada muestra a los tubos 13*100 previamente identificados, verificando que el número progresivo coincida con la muestra y en el tubo.

2. El químico o laboratorista procederá a colocar el Bililabstix (tira reactiva) y registrará los resultados en el libro diario (pH, albúmina, glucosa, acetona, billirrubina y hemoglobina), marcando los positivos para efectuar después su cuantificación.

3. Al terminar el químico o laboratorista con el procedimiento anterior, al auxiliar llevará estos tubos a la centrifugadora durante 5 min. a 1,800 RPM. Ya centrifugados, decantará (vaciará) el sobrante y entregará los tubos con los sedimentos nuevamente al químico o laboratorista para que efectúe en el microscopio y el auxiliar irá anotando al mismo tiempo los resultados en el libro diario de registro.

4. Densidad.

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Para determinar la densidad con “densímetro” proceda de la siguiente forma:

En una probeta de 25 ml vacíe aproximadamente 20 ml de orina.Introduzca el densímetro (rotándolo en el momento de introducirlo) procurando que no toque las paredes de la probeta. Se examina en que lugar de la escala del densímetro queda el menísco (nivel de la orina).Anote la lectura en el libro de registro.En caso de contar con el refractómetro, de los mismos tubos que contienen la orina, (antes de centrifugarlos para el sedimento), se toma con un gotero y se llena la cámara del refractómetro. Se lee la unidad de la orina en la escala que se observa.Limpiar la cámara después de cada determinación con una gasa.Anote la lectura en el libro de registro.

EXAMENTECNICA

DE MATERIAL VIDRIO REACTIVOSCuantificación Albúmina Tubos de vidrio 18*150 ó 13*100

Pipetas serológicas de 1, 5 y 10 ml.Acido Sulfosalicílico al 3 %Reactivo de molibdatoReactivo amino naftol sulfónico

Cuantificación Glucosa Tubos de vidrio 18*150 ó 13*100Pipetas serológicas de 1, 5 y 10 ml.

Reactivo de ortotoluidinaBaño de agua hirviente

Billirrubina Cualitativo Ictotest (tableta reactiva).Coloque la almohadilla contenida en el equipo 5 gotas de orina.Ponga la tableta sobre la almohadilla humedecida.Agregue 2 gotas de agua destilada sobre la tableta (sí hay presencia de bilirrubina, aparecerá un color azul – violeta sobre la almohadilla).Dependiendo de la intensidad del color, se reporta la positividad de 1 a 4 cruces. Es proporcional a la intensidad del color y a la rapidez de su aparición.Una vez realizados todos los procedimientos obtenidos los resultados, se procederá a transcribir dichos datos al libro de registro de las solicitudes de exámenes de los paciente.

IctotestAgua destilada

BROMOSULFALEINA

Prueba de funcionamiento hepático.El paciente no debe estar ictéricoNo reacciones a las sulfasEn ayunas 10 horas antesSin fiebreEn reposo total al momento de la prueba.

Método

1.- Colocar dentro de una jeringa estéril el equivalente en milímetros a 5mgrs de colorante por kilogramo de peso al paciente.

ml. de colorante = peso del paciente /10ej. 60 Kg/10= 10 ml. De colorante.

2.- Inyectar la solución dentro de la vena en un período de 30 segundos aproximadamente. No extravasar.

3.- A los 45 minutos extraer 7 ml de sangre en el brazo opuesto al que se le aplico la inyección y deposítelo en un tubo previamente identificado y marcado “BROMO”.

Nota: En caso de que se extravase, suspender la prueba y avisar al médico Jefe del Laboratorio.No tomar la sangre antes de los 45 min., ya que la prueba reportaría resultados erróneos.La prueba no se puede repetir hasta que se hayan transcurrido por lo menos 15 días.

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El colorante debe aplicarse lentamente puede producir reacciones de hipersensibilidad inmediata, o choque anafiláctico, en cualquiera de los casos suspender la administración y avisar al médico.

BROMOSULFALEINA

GAEBLER Tubos de 20*150Pipetas serológicas graduadas de 1 y 10 ml.

Acido clorhídrico 0.1 NHidróxido de sodio 0.1N

MANEJO DE MUESTRAS Y MATERIAL.

A) TOMA DE MUESTRAS.

La primera actividad que realizará en el inicio de sus labores, será tomar las muestras que le sean asignadas.

Material: La toma se realizará en tubo seco o vacutainer, tubos, liga, corunda, marcador.

Tubo con tapón Contienen Usado en... Usado para...

Rojo Gel Química sanguínea (Q.S)Para suero; separar paquete sanguíneo sin anticoagulante.

Violeta EDTA (Etil Diamino Tetra Acético) Biometria Hemática (B.h) Para el estudio del plasma.

Azul Citrato de sodio Tiempos de coagulación Para el estudio del plasma.Naranja EDTA Para banco de sangre Para determinar cruce y Q. S

(Ponerlo en baño María 10 min.)Tubo seco 10 * 10

Se hace preparación del gel o EDTA con 1/10 por 9/10 de muestraNOTA: Teniendo precaución de marcar aquellas que sean solicitadas a enfermos de VIH.

B) RECOGER MUESTRAS Y SOLICITUDES.

Recoger de los cubículos de tomas o del lugar convenido en cada unidad, las muestras con sus correspondientes solicitudes, marcando aquellas que sean solicitadas a enfermos de VIH.

Las muestras de sangre, las cuales por lo general estarán tomadas en tubo seco o vacutainer con tapón rojo, ya que la mayoría de las técnicas en química clínica se efectúan en suero sanguíneo, excepto Glucosa, Urea, Creatinina y Acido Urico se pueden procesar de sangre total o en plasma.

C) DISPONER REACTIVOS Y MATERIAL EN LAS MESAS DE TRABAJO.

Disponer reactivos y material en las mesas de trabajo, de acuerdo a las técnicas que se realicen y el volúmen de trabajo. La mayoría de los reactivos, se encuentran en los mismos departamentos, donde se ejecutan las pruebas, algunos deben estar en refrigeración. El material, deberá ser preparado conforme a las técnicas a desarrollar y en cantidad suficiente para el número de exámenes a efectuar.

EXAMEN MATERIAL MEDIDA OBSERVACIONESGLUCOSA Tubos 16*150 (Introducir en un baño de agua

hirviente)Gradilla de alambrón 72 tubosAsa de alambre (ambos lados)

UREA Tubos 15*125 (Introducir en un baño de agua hirviente)

Gradilla alambrón 72 tubosAsa de alambre (ambos lados)

CREATININA 2 Tubos 13*100Gradilla alambrón 72 O 90 tubos

ACIDO URICO Tubos graduales a 25mlGradilla alambrón 40 tubos

COLESTEROL Tubos 20*150Gradilla alambrón 40 tubosAsa de alambre (ambos lados)

ESTERES DE Tubos cónicos graduales a 15mlCOLESTEROL Gradilla alambrón 40 tubosBILIRRUBINA Tubos 12*75

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DIR O INDIR. Gradilla 90 tubosBROMOSULFALEINA Tubos 20*150

Gradilla 40 tubosPROTEINAS TOTALES Y FRACCIONES

1 Tubo 2 Tubos

15*12518*150– 20*150

Para cada determinación

Gradilla 40 tubosTRANS. O Y P Tubos 15*125

Gradilla 72 tubosDESHIDROGENASA Tubos 16-150

Gradilla 72 tubosFOSFATA. ALCAL, ACIDA

TubosTubos cónicos graduados

20*15015 ml

Y FOSFORO Gradilla 40 tubosCREATININA Tubos 20*150FOSFOQUINASA Gradilla 40 tubosCREATININA Tubos 20*150FOSFOQUINASA Gradilla 40 tubosTRIGLICERIDOS Tubos 15*125

Gradilla 72 tubosAMILASA Tubos 20*150

Gradilla 40 tubosGEO Tubos 13*100 Numerados en forma progresiva

(1,2,3, etc) de acuerdo a la cantidad de muestras que se van a realizar

Gradilla 90 tubosCLORO Tubos 20*150

Gradilla 40 tubosSODIO Y POTASIO Matraz volumétrico de 50 ml o

de 100 mlVasos de precipitados de 10 ml

13*100 1 para cada determinación.

Nota: La distribución de este material cambiará de acuerdo a las técnicas practicadas en cada unidad y el responsable de la sección dará instrucciones sobre la preparación de material Para el desarrollo de todas las técnicas, se utilizan pipetas y probetas de diversos volúmenes

PIPETAS VOLUMEN PROBETAS VOLUMENSEROLOGICASGRADUADAS

10 ml, 5ml, 2 ml, 1 ml, 0.2 ml, 0.1 ml

GRADUADAS 2,000 ml, 1,000 ml, 500 ml, 250 ml, 100 ml y 50 ml

VOLUMETRICAS 10 ml, 5ml, 2 ml, 1 mlMatraces Erlenmeyer diferentes capacidades.

VolumétricosRedondos de fondo plano

Nota: Todo el material deberá estar perfectamente limpio, seco y caso necesario tapado. Las pipetas deberán estar completas (no despuntadas) y esterilizadas previamente.

D) CENTRIFUGAR Y ORDENAR MUESTRAS.

Para el desarrollo de las técnicas de esta área se necesita suero de la sangre del paciente, por lo que todas las muestras sean centrifugadas durante 15 minutos a 3,000 R.P.M., excepto para CO2, (pH), D-Xilosa, Amonio y en caso de Glucosa, Urea Creatinina y Acido Urico que se procesan en sangre total o plasma y no deben centrifugarse en la misma forma.

I.- Una vez concentradas las muestras y sus correspondientes solicitudes en el departamento se procede a ordenar por número de folio en forma progresiva.

II.- Antes de colocarlas en la centrífuga, deben permanecer durante 30 minutos en estufa o baño de agua a 37 ° C, para obtener una retracción del coagulo. Dicho coágulo se debe despegar de la pared del tubo con un aplicador (1 para cada muestra), para prevenir la hemolización de las muestras.

III.- Después separe los tubos que contengan la misma cantidad de sangre, por pares y los colocará en la centrífuga equidistantes, es decir uno frente al otro, ya que debe estar equilibrado el peso en los cabezales de la centrífuga, de lo contrario se romperán los tubos.

IV.- Terminada la centrifugación de las muestras, el auxiliar separara los sueros de la siguiente forma:

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Ordene las muestras por número de folio en orden progresivo. En una gradilla de alambrón para 90 tubos, coloque tubos de 12*75 o 13*100. Identifíquelos cuidadosamente con el

número de folio con que ha sido tomada la muestra, conservando siempre el orden progresivo. Con una pipeta pasteur para cada muestra, extraiga el suero, cuidando de no levantar los glóbulos y deposítelo en el

tubo 13*/100 previamente identificado, verificando que el número de folio coincida en ambos tubos. Finalmente entregue al Químico o laboratorista para que proceda a la ejecución de los exámenes.

E) AYUDAR A REGISTRAR Y REPORTAR RESULTADOS.

En el área hay un LIBRO DIARIO, en donde se registran los exámenes que se van a realizar y al terminar el análisis, los resultados obtenidos, el auxiliar participa, tanto en su elaboración como en el registro de los resultados, como parte de sus labores diarias. Ejemplo:

# FOLIO NOMBRE DEL PACIENTE GLUCOSA UREA3804 RAFAEL CALDERON 100 253805 ANDRES FRIAS 80 35

F) MEDIR VOLUMENES ORINARIOS.

Para exámenes en orina de 24 horas, para los cuales es necesario obtener el volúmen recolectado durante ese tiempo. El auxiliar tomará dichos volúmenes de la siguiente manera:

Tomar probeta graduada de 2,000 ml ó 1,000 ml, limpia.Vaciar el contenido de la muestraMida el volúmen y anótelo en una etiqueta que contenga los datos del paciente (nombre y número de folio).Coloque la etiqueta en un frasco de vidrio de 125 ml y deposite en él aproximadamente 90 ml de la orina. Tápelo y regrese el resto al recipiente donde recibió la muestra.Enjuague bien la probeta con agua y proceda en la misma forma con la siguiente muestra.

G) LIMPIAR EL EQUIPO. SOL (SEGURIDAD, ORDEN Y LIMPIEZA)

El auxiliar recogerá en todo los momentos posibles las mesas de trabajo y desechar el material que le indiquen, lo cual en este y cualquier otro departamento del área clínica es de vital importancia dada la contaminación que puede existir por las muestras y el tipo de trabajo que aquí se desarrolla.

SEGURIDAD

Conocer el equipo de seguridad y evitar los riesgos existentes, de la siguiente manera:

Usando una buena técnica de trabajo. Tomando precauciones sencillas pero eficientes. Conociendo lo mejor posible su trabajo y las medidas de seguridad. Incendio y explosión por el uso de solventes inflamables

Los solventes deben guardarse en lugares frescos, bien ventilados y a prueba de fuego. No deben manejarse cerca de flamas ni en lugares cerrados, donde los vapores puedan acumularse y formar con él aíre mezclas explosivas. No deben verterse substancias explosivas o volátiles al drenaje, como Acido de Socio, Ether, Acetona, etc. Use agua, glicerina y vaselina como lubricante de uniones de vidrio. Los residuos de sodio y potasio neutralízelos con metanol o etanol (liq).

Reactivos venosos, corrosivos y cáusticos

Algunos compuestos no tienen efecto importante sobre la piel, pero su ingestión es peligrosa, ej. Cianuros, alcohol metílico, compuestos de arsénico, mercurio, bario. Debe insistirse en la importancia de rotular correctamente los frascos del laboratorio y evitar contaminaciones de material. Por su constante uso, estas substancias se manejan sin la debida precaución, las quemaduras con ácidos (agregue bicarbonato de sodio en polvo para neutralizarlo) y bases fuertes (ácido bórico) en líquido; en manos, ojos y cara son las más frecuentes. En casos de quemaduras leves deben seguirse las instrucciones de los marbetes de cada reactivo y en casos extremos atención médica.

Quemaduras y escaldaduras incluyendo choques eléctricos

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Generalmente son causados por objetos calientes y secos, o por exposición prolongada a los rayos ultravioleta o infrarrojos. Los choques eléctricos en el laboratorio son de poca importancia, pero si el contacto accidental es intenso, el choque produce pérdida de conciencia y se debe solicitar atención médica de inmediato.

Heridas causadas por manipulación de vidriería.

Causadas por cortes o laceraciones de cristalería son las más frecuentes. Los fragmentos de vidrio, especialmente el grueso, presentan un borde irregular que produce heridas graves.

Estos accidentes pueden evitarse con la manipulación cuidadosa.

BOLSAS Y CONTENEDORES (NORMA INTERNACIONAL DE SEGURIDAD)

BOLSA NEGRA o verde BOLSA ROJA CONTENEDORESMateriales municipales (plástico). (Papel, gasas y en general cualquier material que no tenga sangre)

Material infecto-contagioso (gasas, corundas, guantes, y toso) aquel material que contenga sangre

Material punzo cortante (agujas)

ORDEN.

Mantener en orden el material, reactivos y demás material ocupado en nuestras áreas de trabajo, respetando las reglas, políticas y/o normas del área. Registrando todas y cada una de las muestras que entren al área.

LIMPIEZA

Efectuará el aseo de las mesas de trabajo con alguna solución antiséptica que el Químico o el Laboratorista designará para este efecto. El material contaminado de desecho, se esterilizará en Autoclave, durante 30 minutos a 15 o 20 libras, e informará al personal de intendencia cuando este listo para su aseo.

Se ocupará también de la limpieza del equipo que se utilice en su Departamento, solicitando la cooperación del personal de intendencia.

LAVADO DE MATERIALINFECTO-CONTAGIOSO LAVADO DE MATERIAL DE VIDRIO

1.- Desangrar tubos (bolsa roja) 1) Aunque parezca limpio, lávelo con agua de la llave o estilada o agua caliente 60 a 90°C

2.- Enjuagar con agua de la llave 2) Séquelo sobre papel o escurridor.

3.- Lavar con preparación jabonosa de jabón en polvo (Hyclean)

3) Si no queda limpio el material. Use escobillón en detergente. Lávelo con agua destilada y séquelo 2

4.- Sumergir material y lavarlo con escobillón

4) Si persisten impurezas use:Soluciones diluidas de Acido ClorhídricoHidróxido de sodioDisolvente orgánico (acetona o alcohol etílico industrial)Repita desde el paso 3)

5.- Sumergir en Extran 5) Si no ceden al 4), agregue mezcla crómica (caliente).si es necesario) Enfríe y regrese mezcla crómica a su recipiente (rotulado)Proceda como el 3) en adelante.

6.- Enjuagar con agua destilada7.- Deje escurrirEsterilizar en horno para secado de material (10 min.). a 160 o 180°C

PROCEDIMIENTO DE ESTERILIZACION

En el área clínica es de vital importancia la esterilización correcta del material que se va a utilizar, ya que si dicho material está contaminado los cultivos darán resultados erróneos y se perderá tiempo en la iniciación del tratamiento del paciente. El proceso se lleva a cabo en el autoclave.

A continuación se menciona el material que deberá ser preparado y la forma de hacerlo.

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MATERIAL ENVOLTURA TIEMPO PRESION OBSERVACIONESFrascos estériles(Frasco de vidrio de 125 ml con tapa)

Bien tapado, coloque cinta testigo sobre la tapa, bajando hacía el frasco.

20 min. 15Lb Perfectamente limpiosLa cinta testigo servirá como sello para verificar que el frasco no ha sido abierto al momento de usarse.

Tubos de vidrio 13 * 100 con tapón de hule (00 o 000)

Con el tapón puesto, coloque cinta testigo de esterilización alrededor del tapón para fijarlo y evitar que se destape.

20 min. 15Lb Perfectamente limpiosColoque en gradilla para 90 tubos, cubra con papel Kraft en forma envolvente.Los tubos que se destapen durante su esterilización deberán desecharse.

HISOPOSEn un extremo de un aplicador de madera, se toma un poco de algodón, envolviéndolo y apretándolo con los dedos índice y pulgar, de tal forma que quede firme, con un grosor de 3 a 5 mm. Aproximadamente.

Con los tubos bien tapados, envuélvalos en papel Kraft

20 min. 15Lb Perfectamente limpiosColoque en tubos de 12*75 y elabore un tapón de algodón de aproximadamente 2 cm. Introduzca la mitad del tapón del algodón dentro del tubo

Espejos vaginales Se envolverá completamente en papel Kraft, evitando el contacto con el medio ambiente

20 min. 15Lb Perfectamente limpios

Guantes Se procede a envolverlos, colocando un poco de talco en el interior para evitar que se pequen.Coloque un guante separándolo del otro con el papel doblado, procurando evitar el contacto con el medio ambiente.

20 min. 15Lb Previamente lavadosMarque con una etiqueta la medida de los guantes.

Cajas de Petri Con las tapas colocadas en las cajas de petri, envolver en papel Kraft formando paquetes de 5

20 min. 15Lb Revisar que estén perfectamente limpias.

Pipetas de 1 ml, 5 ml y Pasteur

Colocar en el extremo de la boquilla una pequeña porción de algodón, el cual funcionará como filtro.Envolver en papel kraft, formado paquetes con las pipetas de una misma capacidad y marcando el contenido del mismo

20 min. 15Lb Revisar que estén perfectamente limpias y completas (no despuntadas).

Envolver material y sellar con cinta testigo

USO DEL AUTOCLAVE

El autoclave es un aparato cilíndrico ó cuadrangular de dobles paredes, construido en metal para resistir hasta una presión de vapor de 60 libras por pulgada2 aproximadamente.Consta de 3 aditamentos indispensables:

7

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1 Manómetro de presión 1 Termómetro 1 válvula de seguridad

Tiene una entrada y una salida para el vapor y la puerta con cierre hermético.

Los autoclaves utilizados actualmente en la gran mayoría de los laboratorios, cuentas además de los aditamentos mencionados, con otros un tanto más complejos que permiten un mejor control, tanto por las presiones manejadas como por el proceso mismo de esterilización.

En el caso del Autoclave de control Ciclomático, estos aditamentos son:

1.- 1 Indicador y registrador de tiempos y temperaturas

A los que han sido expuestos los materiales en el interior del autoclave.

2.- Reloj regulable Para seleccionar el tiempo adecuado, según el tipo de material a esterilizar.

3.- Manómetros de presión En la chaqueta y camisa del autoclave.4.- Control electromecánico automático Permite elegir entre varios programas de esterilización, el más adecuado

a seguir en relación con el material a esterilizar.5.- Control manual Para abreviar o prolongar cualquiera de los pasos, según sean las

necesidades del caso.6.- Un elemento de protección Interrumpe el proceso en caso de fallas eléctricas o de presión y que

indica que el proceso debe reiniciarse.7.- Válvula de alimentación de vapor Ajustada automáticamente a 15 lbs, en algunos modelos.8.- En algunos modelos 1 válvula de

alimentación de vapor ajustable a presiones bajas o altas

Por ejemplo a 18 a 30 lbs para lograr temperaturas de 121 ° C a 132 °C

9.- Puerta de seguridad con cierre radial Permite hermetización segura y la imposibilidad de abrirla accidentalmente mientras exista presión en la cámara.

10.- Válvula de seguridad de sobre presión De mayor sensibilidad11.- Focos pilotos en el control

ciclomáticoPermite observar en que paso del proceso se encuentra el autoclave

12.- Termómetro indicador al frente y en derivación de la cámara

Permite verificar la temperatura en el indicador de ésta.

Manera de usarse

I.- Abra la válvula de alimentación de vapor y verifique que este calibrada a la presión adecuada para el material que va a esterilizar, de lo contrario ajuste manualmente la válvula alimentadora de vapor.

II.- Seleccione la perilla del control electromecánico, la posición adecuada para el material que va a esterilizar: “Escape rápido y secar”, para material de vidrio ó metal que se requiere seco. “Escape rápido”, para material de vidrio ó metal que no se requiere seco. “Escape lento”, para esterilizar medios de cultivo ó líquidos. “Manual”, para prolongar el proceso o abreviar cualquiera de los pasos del proceso.

III.- Elija el tiempo deseado, de acuerdo al material a esterilizar.IV.- Cierre la puerta de seguridad (asegúrese que cierre herméticamente)V.- Gire la perilla central hasta el punto “esterilizar” en sentido de las manecillas del reloj.VI.- Al terminar el ciclo, automáticamente sonará la alarma, gire la perilla central hasta el punto “parar”.VII.- Verifique que el manómetro indicador de presión en la chaqueta del autoclave, marque “0”.VIII.- Abra la puerta cuidadosamenteNota: La forma de uso del autoclave, cambiará en algunos puntos, dependiendo del modelo que se utilice en cada unidad.

H) PREPARAR MATERIAL ESPECIAL P/ELECTROLITOS Y GASOMETRIAS.

TEMA 2MICROBIOLOGIA

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OBJETIVO

Atender el estudio de los microorganismos y de la respuesta inmune respectivamente.

COMPRENDE.

La microbiología clínica es una parte de la biología que se ocupa del estudio de los microorganismos (virus, bacterias, etc.) y su relación con las enfermedades infecciosas.

EXÁMENES MÁS USUALES.

Hemocultivo Espermocultivo Exudado nasal Bacilos de ácido alcohol resistentes (BAAR) en: expectoración, orina, LER, jugo gástrico, líquido pleural, o algún tipo de exudado.

Coprocultivo Exudados diversos (oído, oculares, heridas, etc.)

Exudado cérvico vaginal

Urocultivo Cultivo de líquido céfalo raquídeo

Exudado uretral

Exudado faríngeo Cultivo de exudados diversos para aeróbicos y anaerobios

Exudado prostato-vesicular


A) TOMA DE MUESTRAS.

La primera actividad que realizará en el inicio de sus labores, será tomar las muestras que le sean asignadas. Material: La toma se realizará en tubo seco o vacutainer, tubos, liga, corunda, marcador.

B) RECOGER MUESTRAS Y SOLICITUDES.

Recoger de los cubículos de tomas o del lugar convenido en cada unidad, las muestras con sus correspondientes solicitudes, marcando aquellas que sean solicitadas a enfermos de VIH.

MUESTRA FORMAHemocultivo Tubo especial para hemocultivo con medio de cultivo y sangreCoprocultivo Muestra de materia fecal o hisopo con muestra de materia fecal.Urocultivo Frasco estéril con muestra de orina o bolsa de plástico adhesiva (en caso de que los

pacientes sean niños pequeños)Exudado faríngeo y nasal Hisopo estéril en medio de transporte.Exudado cérvico vaginal Hisopos estériles en medio de transporte.Exudado uretral Hisopo estéril en medio de transporteExudado próstato vesicular (Cinética de postatitis), 3 muestras de orina en frasco estéril y 1 muestra de semen.Espermocultivo Muestra de semen en frasco estéril.Exudados diversos Hisopo estéril en medio de transporte.LCR líquido céfalo raquídeo Tubos de vidrio estériles con tapón.BAAR Muestra de expectoración en frasco estéril.

Muestra de orina en frasco estérilMuestra LCR en tubo estérilMuestra de exudado en hisopo o recipiente estéril.

C) PREPARAR Y DSIPONER MEDIOS DE CULTIVO Y MATERIAL EN LAS MESAS DE TRABAJO.

El auxiliar cuidará de colocar los medios de cultivo adecuados para cada uno de los exámenes que se van a practicar, en cantidad suficiente. Dichos medios, se encuentran generalmente en refrigeración, por lo que deberá sacarlos por lo menos media hora antes de que vayan a utilizarse, pues se requiere que estén a temperatura ambiente en el momento de la siembra.

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El material constará de: pipetas serológicas graduadas estériles de 1 ml, 5 ml, 10 ml, pipetas pasteur estériles, puntas para pipeta automática estériles y tubos de vidrio de 13*100 estériles con tapón de hule u deberá estar colocado en las gavetas destinadas para ello.

D) ORDENAR MUESTRAS Y NUMERAR

El auxiliar procede a separarlas por tipo de exámenes solicitado, basándose en las solicitudes médicas.

Enseguida ordenará las muestras requeridas por número de folio en forma progresiva, en la misma forma que las solicitudes.

Si la cantidad de las muestras que se van a procesar son numerosas, es conveniente ordenarlas por número progresivo, verificando que el número de folio y el nombre del paciente sea el mismo en la solicitud que en la muestra.

# FOLIO NOMBRE DEL PACIENTE # PROGRESIVO3806 13820 23824 3

Ya ordenadas y numeradas las muestras, procederá a identificar las cajas de petri con medio de cultivo que se utilizarán en cada uno de los cultivos que se van procesar.

E) AYUDAR A REGISTRAR Y REPORTAR RESULTADOS EN EL LIBRO DIARIO

Después de ordenar, disponer del material necesario y medios de cultivo suficientes, procederá a registrar las solicitudes en los libros indicados para ello.

# PROGRE # FOLIO TIPO EXAMEN NOMBRE PAC RESULTADOS1 3806 UROCULT2 3820 EXUDADO F3 3824 COPRO

El proceso de la mayoría de los cultivos llevan de 24 a 72 horas.

Una vez que el químico o laboratorista han informado los resultados en las solicitudes médicas, el auxiliar transcribirá dichos resultados en el libro de registro, en los renglones destinados para ello.

F) ELABORACION DE MEDIOS DE CULTIVO.

Es una de las principales funciones del auxiliar en el departamento de microbiología; existen una gran variedad de medios de cultivo como son:

De transporte Enriquecimiento Diferenciales Selectivos Con antibióticos Otros

Que pueden ser a su vez:

Líquidos(caldo) Sólidos (Con Agar) Semisólidos (baja concentración de agar)

1.- Para una buena preparación de medios de cultivo, es fundamental el empleo de material de vidrio limpio, sin residuo de detergentes. De preferencia deben usarse tubos con tapón de rosca.

2.- Para preparar u medio de cultivo correctamente, deberán seguirse las instrucciones exactas indicadas en la etiqueta del frasco (generalmente vienen en forma deshidratada y con sus respectivas indicaciones).

3.- Pesar exactamente la cantidad necesaria de medio, independientemente del tipo de balanza que se utilice, antes de proceder a pesar, deberá verificarse que la balanza esté sujetada a “0”, o de no ser así, cada balanza contiene este aditamento especial para lograr dicho ajuste.

4.- Una vez ajustada la balanza se procederá a pesar la cantidad necesaria y medir el volúmen de agua destilada adecuado, Se sugiere colocar primero, aproximadamente la mitad del volúmen de agua (en un matraz Erlenmeyer o redondo con fondo plano de la capacidad adecuada para la cantidad de medio a preparar).

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5.- Enseguida colocar el medio y finalmente el resto del agua destilada, enjuagando las paredes del matraz. (Para algunos medios se requiere agua destilada).

6.- Si se trata de un medio que contiene Agar, se deben mezclar después de la esterilización, ello dará consistencia uniforme al medio para ser vaciado en cajas de Petri o tubos.

La esterilización de los medios, puede efectuarse de diferentes maneras: por calor, filtración o por medios químicos.

El medio más usual es el calor húmedo, es decir, vapor a presión en autoclave. La mayoría se esterilizan durante 15 min. a 15 lbs. (121°C)

A veces es necesario una presión inferior, como en la esterilización por calor de algunos hidratos de carbono, en cuyo caso se utilizará una presión de 10 a 12 lbs (de 115 a 118°C).

CONSERVACION DE LOS MEDIOS DE CULTIVO

Los medios comunes, se guardan en el refrigerador para evitar su deterioro.

Los medios preparados en tubos, sobre todo los que tienen tapa de rosca apretadas, se pueden guardar durante períodos prolongados a temperatura ambiente, pero es recomendable también guardarlos en refrigeración.

Los medios de cajas de petri, que se resecan fácilmente deben mantenerse al vacío y en refrigeración dentro de bolsas de plástico selladas.Finalmente, los medios refrigerados, se deben dejar a temperatura ambiente por lo menos media hora antes de su uso.

LOS MEDIOS DE CULTIVO POR SU USO

Hemocultivo Coprocultivo Urocultivo Exudado faríngeoCaldo Cerebro Corazón (CCC)

EMB (Eosina Blue Metileno)Agar

Gelosa Sangre Gelosa sangre

Caldo Soya Tripticasa (CST) Salmonella Shigella Agar (SS) (color rosa en caja de petri)

Gelosa Sangre con Azida EMB

Caldo Tioglicolato Agar Verde Brillante EMB LoefflerVacutainer: Bacto Peptona suplementado

Agar Sulfito de Bismuto Border Gengou

Agar XLD SabouraudAgar MacConkey

Exudado nasal Exudado cérvico uterino Exudado uretral Exudado próstato vesicularGelosa Sangre Thayer Martin Thayer Martin Thayer MartinEMB Agar Chocolate Gelosa chocolate Gelosa chocolate

Gelosa sangre Gelosa Sangre EMBMycosel y/o Sabouraud

Espermocultivo Exudados diversos Cultivo p/investigación de anaerobios (ex.diver)

Antibiograma

Thayer Martin Gelosa chocolate Caldo Tioglicolato Muller HintonGelosa chocolate Gelosa Sangre Caldo Tioglicolato

suplementadoGelosa Sangre EMB Hemina Menadiona

Sabouraud Hemina Menadiona/Kenamicina

Medio de transporte Cultivo para Mycobacterium Cultivo micológico Cultivo de LERStuart Lownstein Jensen con y sin

glicerolMycosel Gelosa chocolate

BHI Lownstein Jensen con antifímicos

Sabouraud Gelosa Sangre

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Lownstein Jensen con cloruro de sodio al 5%

EMB

SabouraudLowstein Jensen

Medios para bioquímicaSIM Agar de FenilalaninaMIO Caldo manitolCitrato de Simmons CoagulasaAgar de Hierro y Lisina (LIA)

Otros

Agar UreaAgar de hierro de Kligler o TSI

SIEMBRA DE MEDIOS

Tomar muestra con hisopo y depositarla cortésmente en el medio (cajas de petri), con el mechero encendido. Luego esterilizar.

Sacarlos y dejar reproducir Poner rehilete en la caja de petri y esperar

GRAM + GRAM -ESTAFILOCOCOS AUREUS------------------------ CAPITITIS------------------------ MIRABALES---------------------------- SIMULANSESTREPTOCOCOS

ESCHERICHIA COLLIPSEUDOMUNAKLEIBSIELLAENTREBACTERPROTEUS

G) TINCIONES

Otra función importante del auxiliar en laboratorio, bajo la vigilancia del químico o laboratorista, en el departamento de microbiología, son la elaboración de las tinciones.

En un frotis bien coloreado, podrán observarse los diferentes tipos de microorganismos(bacilos, cocos, etc), que orientarán al Q ó L en el procedimiento a seguir, y al médico tratante en algunos caso, le ayuda a determinar el diagnóstico y el tratamiento inmediato del paciente. Las tinciones más usuales en este departamento son: Gram, Ziehl Neelsen y Wright-Giemsa, entre otras.

GRAM

La coloración de Gram, es de las más importantes para la diferenciación de microorganismos, ya que permite distinguir entre diferentes bacterias que pueden mostrar una morfología similar, desarrollo de GRAM + y -.

TECNICA

MATERIAL METODOOrina o sangre 1. Frotis en portaobjetoPuente para tinción 2. Coloque las laminillas en el puente sobre la tarja y cúbralas con violeta de

genciana o cristal violeta durante 1 minuto. Lave con agua corriente.Pipetas serológicas ó pizetas 3. Cubra la laminilla con lugol durante 1 minuto. Lave con agua corriente.Violeta de Genciana o Cristal violeta

4. Agregue alcohol-Acetona aprox. Durante 10..15 segundos para decolorar. Lave con agua corriente.

Lugol 5. Finalmente cúbrala con Safranina durante 1 minuto. Lave con agua corrienteAlcohol-Acetona 6. Dejar secar y entregue las laminillas al Q ó L para su observación.Safranina 7. Tiempo total=3.15 min.

ZIEHL NEELSEN

Otra técnica de coloración diferencial que depende de la composición química de la célula bacteriana, es la coloración de Básilo Alcohólicos Acidos Resistentes, que se emplea en la tinción de bacilos tuberculosos y otras microbacterias (tuberculosis).

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TECNICAMATERIAL METODOOrina o sangre 1. Frotis en portaobjetoPlatina caliente 2. Coloque las laminillas sobre la platina caliente regulando la temperatura

(aproximadamente a la mitad de la escala del regulador) y cúbralas con Fucsina

Pipetas serológicas ó pizetas 3. Espere que exista desprendimiento de vapor y deje de 5 a 8 minutos, cuidando de que no hierva el colorante ni se seque, agregando más colorante. Lave con agua corriente.

Fucsina 4. Coloque las laminillas sobre un puente y cúbralas con mezcla de alcohol Acido (HCl al 3% en alcohol de 96° al 3%), hasta obtener una coloración rosa pálido o 20 segundos. Lave con agua corriente.

Alcohol Acido 5. Cubra las laminillas con azul de metileno durante 25 seg. Lavar con agua corriente.

Azul de metileno 6. Dejar secar y entregue las laminillas al Q ó L para su observación.

7. Tiempo total=9.15 min.

WRIGHT-GIEMSA

La coloración Wright-Giemsa, se utiliza para investigación de plasmodio, algunos frotis de LER, de raspados de conjuntiva, etc.

Para efectuar esta tinción se utiliza la misma técnica Wrigth-Giemsa, que se efectúa para la tinción de frotis de sangre periférica y médula ósea en el departamento de hematología.

TECNICAMATERIAL METODOSangre o LER 1. Frotis en portaobjetoCanastilla para tinción 2. Coloque las laminillas en una canastilla para tinción e introdúzcala en el

recipiente con colorante de Wright durante 15 min.Cajas de Cristal para tinción o vasos de Coplin

3. Sáquela y enjuague bien en otro recipiente con agua o bien con agua corriente. Déjela estilar.

Colorante de wright 4. Colóquela en el recipiente que contiene la mezcla de colorante Giemsa – solución amortiguadora (tampón) durante 15 min.

Colorante Giemsa 5. Retírela del colorante y enjuague con agua corriente.Solución amortiguadora (tampón) 6. Dejar secar y entregue las laminillas al Q ó L para su observación.

7. Tiempo total=9.15 min.

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TEMA 3PARASITOLOGIA

OBJETIVO

Ciencia biológica que se ocupa del estudio de la morfología y evolución de los parásitos,

COMPRENDE

Análisis de muestras fecales para ayudar al diagnóstico de las enfermedades parasitarias.

EXAMENES MAS USUALES

Coproparasitoscópico (Técnica de Faust ó de Flotación en sulfato de Zinc modificada)Coprológico GeneralInvestigación de ameba en fresco Raspado Anal (Técnica de Graham)

En algunos laboratorios, el auxiliar en laboratorio interviene en la preparación de las muestras para la observación de parásitos ó alguna reacción química, cuya ejecución será efectuada por el Q o L.

COPROPARASITOSCÓPICO (TÉCNICA DE FAUST Ó DE FLOTACIÓN EN SULFATO DE ZINC MODIFICADA)

Está es una de las más usuales dentro del laboratorio para determinar la concentración de parásitos en materia fecal:

TECNICA

MATERIAL METODOTubo de vidrio 13*100 1.- Preparar una suspensión de materia fecal, en un frasco de vidrio con una

cantidad de heces fecales de aproximadamente el tamaño de una nuez y 10 a 15 ml de agua, mezclando con 1 ó 2 aplicadores de madera hasta obtener la suspensión

1 probeta 2.- Filtrar este material a través de 2 hojas de gasa (colocando esta sobre el embudo) en un tubo de 13*100, llenando hasta 2 ó 3 ml del borde superior y centrifugar durante un minuto a 2300 RPM.

Embudo de polietileno de 7.5 cms. De diámetro.

3.- Decantar (vaciar) el líquido sobrenadante.4.- Llenar el tubo con agua y volver a efectuar la suspensión del sedimento

agitándolo con un aplicador. Centrifugar 1 min. 2300 RPM.Aplicadores de madera o agitadores de vidrio.

5.- Decantar el agua, agregar 2 a 2 ml. De solución de Sulfato de Zinc, volver a suspender el sedimento con un aplicador y llenar el tubo con solución de Sulfato de Zinc hasta 0.5 cm del borde superior.

Gasa 6.- Centrifugar durante 1 a 2 minutos a 2500 RPM. No “frenar” la centrifuga, sino dejar que los tubos se detengan sin que haya interferencia o vibración.

Sulfato de Zinc al 33% (densidad 1.18.. 1.80)

7.- Retirar los tubos de la centrifuga con todo cuidado y colocarlos en una gradilla

(suspensión 330 gr. En un litro de agua). Centrifugar 180 RPM * 1 MIN. Hasta Densidad 1.80)

8.- Entregar al Q ó L para que efectúen el exámen microscópico

Lugol (agregar una gota de lugol al portaobjeto y cubrir)Nota: Se deberá examinar el material obtenido con el método de flotación en Sulfato de Zinc a los pocos minutos de efectuada la preparación. El contacto prolongado con la solución, provocará la deformación de los microorganismos.

Una solución al 33 %, generalmente se aproxima a la densidad correcta, pero debe ser ajustada a la densidad 1.18 agregando Sulfato de Zinc o agregando agua.

COPROLÓGICO GENERAL Ó COMPLETO.

Es la investigación de sangre oculta en heces (SOH) y de grasas en heces. El auxilio en la preparación de estas muestras consiste en:

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MATERIAL METODOTubo de vidrio 13*100 1. Preparar una suspensión de materia fecal, en un frasco de vidrio con una

cantidad de heces fecales de aproximadamente el tamaño de una nuez y 10 a 15 ml de agua, mezclando con 1 ó 2 aplicadores de madera hasta obtener la suspensión

Aplicadores de madera o agitadores de vidrio.

2. Colocar este material en 2 tubos de 13*100 (1 para investigación de SOH y otro para exámen coprológico completo)

3. Entregar al Q ó L para que efectúen el exámen microscópico

INVESTIGACIÓN DE AMEBA EN FRESCO

La investigación de ameba en fresco, es una prueba para detectar Trofositos por medio de la observación inmediata de una muestra. Esta prueba puede efectuarse en diferente tipo de muestras como son: materia fecal, tejidos y heridas infectadas.

Las muestras fecales pueden ser obtenidas directamente de la región anal o por medio de una evacuación reciente.

La toma directa se efectúa más frecuentemente en niños pequeños y la forma de obtenerla es la siguiente:

MATERIAL METODOCucharilla o hisopo estéril 1. Introduzca una cucharilla o un hisopo estéril en la región anal, con

movimiento rotatorio (cuidando de no romper el hisopo).Tubo con 2 ml de solución salina a 37°C

2. Coloque el hisopo o el contenido de la cucharilla en la solución salina a 37°C.

3. Entréguelo al Q ó L para su observación inmediata.

RASPADO ANAL (TÉCNICA DE GRAHAM)

Es una prueba para la investigación de Oxiuros. Las nuestras deben obtenerse pocas horas después de haberse acostado, a las 10 u 11 de la noche; de no ser posible, deberá tomarse a primera hora de la mañana, antes de defecar o ir al baño.

La técnica para obtenerse este tipo de muestras es la siguiente:

MATERIAL METODOPortaobjetos 1. Preparar un portaobjetos con una tira de celulosa de aproximadamente 10 cm

de largo de tal forma que los extremos puedan adherirse en la cara posterior del portaobjetos

Abatelenguas 2. Despegar un extremo de la cinta celulosa y adherirla en un abatelenguas de madera, cuidando que la parte engomada de la cinta quede en el exterior

Cinta celulosa (diurex) 3. Presione la superficie engomada sobre varias áreas de la región perianalGasa 4. Vuelva a colocar la cinta en el portaobjetos, tomándola cuidadosamente por

los extremos.5. Una vez colocada la cinta sobre el portaobjetos, alise suavemente la

superficie con una gasa. No olvide de identificar la laminilla.6. Entréguelo al Q ó L para su observación inmediata.

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TEMA 4INMUNOLOGIA

OBJETIVO

Las reacciones inmunológicas son los procesos mediante los cuales el organismo viviente se defiende contra el ataque de bacterias o substancias extrañas que penetran en el cuerpo.

EXÁMENES MÁS USUALES.

Los exámenes que más usualmente se realizan en este departamento son los siguientes:

Factor reumatoide Antiestreptolisinas Proteína c. Reactiva V.D.F..L Reacciones febriles


A) ACTIVIDADES DEL AUXILIAR EN ESTE DEPARTAMENTO

Las actividades del auxiliar como en los otros capítulos, van desde la toma de muestras, recoger las muestras y sus correspondientes solicitudes médicas, concentrarlas en su sección y ordenarlas por número de folio en forma progresiva.

En este departamento las solicitudes médicas utilizadas son generalmente las de “Otros Estudios” (amarillas) y los tubos de las muestras de sangre que las contienen son de 13*100 sin anticoagulante ó Vacutainer (tapón rojo), los cuales identificará fácilmente y los recogerá de los cubículos de tomas o del lugar convenido en cada unidad.

También lleva acabo la centrifugación de las muestras; pero como se utiliza el suero, se usa el mismo procedimiento de centrifugación que en el departamento de Química clínica por lo que todas las muestras son centrifugadas durante 15 minutos a 3,000 R.P.M. y se sigue el mismo procedimiento VER TEMA 1

B) PREPARAR Y DISPONER EL MATERIAL Y REACTIVOS EN LAS MESAS DE TRABAJO

En esta sección del laboratorio, el material que el auxiliar deberá preparar generalmente es el siguiente:

Tipo de examen MATERALFactor Reumatoide Placas de vidrio para pruebas de aglutinaciónAntiestreptolisinas 1 gradilla de alambrón para 90 tubos con tubos de vidrio

13*100Proteína C. Reactiva Tubos capilares o placas de vidrio para pruebas de

aglutinaciónReacciones Febriles Placas de vidrio para pruebas de aglutinaciónV.D.R.L Placas de vidrio con concavidades.

Además deberá colocar en las mesas de trabajo, los reactivos, los cuales generalmente se encuentran en refrigeración.

Cuidará de preparar las pipetas serológicas graduadas de 0.1, 0.2, 1, 2, 5 y 10ml., dichas pipetas deberán estar estériles, completas (no despuntadas) y colocadas en las gavetas destinadas para ello.

C) AUXILIAR EN EL INFORME Y REGISTRO DE LOS RESULTADOS.

Modificando el libro diario:# FOLIO NOMBRE PACIENTE TIPO EXAMEN RESULTADOS4019 VDRL 166 U.T.4024 ANTIESTREPT. 200 U.T

D) LIMPIEZA DEL EQUIPO

El auxiliar cuidará de recoger y limpiar las mesas de trabajo; desechar el material que le indiquen, entregándolo a su vez al personal de intendencia para su aseo; así como de solicitarlo al mismo, limpio y seco para ser utilizado nuevamente.

Se ocupará también de la limpieza del equipo que se utilice en su departamento, solicitando la cooperación del personal de intendencia.

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TEMA 5HORMONAS


A) ACTIVIDADES DEL AUXILIAR EN ESTE DEPARTAMENTO

Las actividades del auxiliar como en los otros capítulos, van desde la toma de muestras, recoger las muestras y sus correspondientes solicitudes médicas, concentrarlas en su sección y ordenarlas por número de folio en forma progresiva y las numerara en número progresivo.

En este departamento las solicitudes médicas utilizadas son generalmente las de “Otros Estudios” (amarillas) los cuales identificará fácilmente y los recogerá de los cubículos de tomas o del lugar convenido en cada unidad.

B) PREPARAR Y DISPONER EL MATERIAL Y REACTIVOS EN LAS MESAS DE TRABAJO

En esta sección del laboratorio, el material que el auxiliar deberá preparar generalmente es el siguiente:

Peras de decantación Matraz Erlenmeyer 125 ml y 150 ml.

Matraz volumétrico de 50, 100, 200 y 250 ml, 500, 1000 y 2000 ml.

Vasos de precipitados de 50, 100, 200 y 250 ml, 500, 1000 y 2000 ml.

Pipeta serológica graduada de 0.1, 0.2, 1, 2, 5 y 10ml.

Pipeta volumétrica de 1, 2, 5, 10, 25, y 50ml.

Pipeta automática con punta de 0.1, 0.2, 0.5, y 1 ml.

Tubos de 20*150 y 16*100

Tubos de 50ml. Fondo redondo con tapón esmerilado

Pipetas de 12*75 y 13*100 limpias y completas

Una vez lavado el material debe enjuagarse 2 veces con agua bidestilada. El material radioactivo deberá ser manejado por Q ó L autorizados.

El material radioactivo será manejado por los Q ó L.

C) MEDIR VOLÚMENES URINARIOS (SEPARACION DE ALICUOTAS POR CADA ESTUDIO SOLICITADO).

En este departamento, algunas determinaciones se efectúan en orina para lo cual es necesario obtener el volumen recolectado.

Una de las actividades del auxiliar, es la de tomar dichos volúmenes y podrá efectuarlos de la siguiente manera:

MATERIAL TECNICAProbeta graduada 1000 ó 2000 ml

En una probeta graduada, limpia, vacíe el contenido de la muestra; mida el volúmen y anótelo en una etiqueta que contenga los siguientes datos:Número de folioTipo de exámenes que se van a procesarVolúmen en 24 horasNombre del paciente (iniciales)

Frasco de vidrio o plástico de 125 ml.

Coloque la etiqueta en un frasco de vidrio o plástico de 125 ml y deposite en él aproximadamente 125 ml de orina. Tápelo (en las muestras para determinación de estrógenos, será necesario conservar aprox. 200 ml. De orina)

Tubo de 13*100 Regrese el resto de la orina al recipiente en que se recibió la muestra. Tire el resto de la muestra separando en un tubo de 13*100 una alicuota para creatinina.

D) AUXILIO EN EL INFORME Y REGISTRO DE RESULTADOS

El Q ó L responsable del departamento se encargará de registrar los resultados e informarlos en las solicitudes médicas

# FOLIO # PROGRE NOMBRE PACIENTE

MEDICO SOLIC.

SERVICIO DIAGNOSTICO

TIPO DE ESTUDIO

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E) LIMPIEZA DEL EQUIPO

El auxiliar cuidará de recoger y limpiar las mesas de trabajo; desechar el material que le indiquen, entregándolo a su vez al personal de intendencia para su aseo; así como de solicitarlo al mismo, limpio y seco para ser utilizado nuevamente.

Se ocupará también de la limpieza del equipo que se utilice en su departamento, solicitando la cooperación del personal de intendencia.

F) INFORMACION GENERAL DE LAS TECNICAS

EXAMENMATERIAL BIOLOGICO MATERIAL PROCEDIMIENTO

Creatinina en orina de 24 hrs.

Orina de 24 horas Tubos de ensaye 18*150Pipetas serológicas graduadasCeldillas para espectrofotómetro

Pruebas de embarazo (determinación de Gonadotrofinas en orina exámen cualitativo)

Equipos:GRAVINDEX PREGNOSTICON (detectan la presencia de Gonadotropina coiónica humana)

MaterialGradilla especial con espejo inferiorPipetas serológicas graduadas de 1 ml.

Al hacer la prueba en el GRAVINDEX, los resultados positivos pueden considerarse válidos. Si el resultado es negativo, pero se sospecha que el embarazo existe, se deberá repetir después de algunos días, ya que durante el embarazo, la hormona GCH, comienza aproximadamente 20 días después del periodo menstrual y alcanza sus niveles máximos en aproximadamente 56-72 días (8ª y 9ª semana)

En el caso del PREGNOSTICON, es posible identificar el embarazo desde 10 días después de la fecha en que se esperaba la menstruación, lo que indica que esta prueba tiene mayor sensibilidad.

Observaciones importantes:

La lectura debe hacerse a las 2 horas.Para limpiar las pipetas, no deben emplearse jabones ni detergentes, puesto que aún restos de éstos productos podrían dar resultados erróneos. De preferencia se utilizara Solución de Acido Crómico y enjuagar muy bien con agua bidestilada.Los tubos deben colocarse en un lugar completamente libre de vibraciones, también debe evitarse el calentamiento durante el período de espera.

EXAMENMATERIAL BIOLOGICO MATERIAL PROCEDIMIENTO

GRAVINDEX ORINA (1ra. De la mañana)

Incluido en el equipoFrasco anti-gonadotrofina CH (conejo)Frasco antígeno gravindexPipetas plástico desechablesBulbo de hule (usadas conjuntamente con las pisetasPalillos mezcladoresPlaca de cristal (portaobjetos)

PREGNOSTICON ORINA (1ra. De la mañana)

GONADOTROFINA CORIONICA

ORINA DE 24 HORAS

Gradilla tubos de 13*100Tubos de ensayo 13*100Pipeta serológica graduada de 1 mlEquipo gravindex y pregnosticon

ACIDO VANIL MANDELICO

Orina 24 horas con separación de alicuota

Tubos de 50 ml.Pipetas 5 y 10 ml graduadasPipetas serológicas

Ac. 5 hidroxi-indol-acético Orina 24 horas con Tubos de 13*100

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separación de alicuota

Pipetas 5ml graduadasPipetas serológicasPapel para film cortado

17=cetoesteroides17=cetogénicos

Orina 24 horas con separación de alicuota

Tubos de centrifuga 50ml de fondo redondo con tapónGradilla tubos 50mlPipetas 5 y 10 ml graduadasPipetas serológicas

Catecolaminas Orina 24 horas con separación de alicuota

Tubo 50 ml. Fondo redondo y tapón esmeriladoProbetas 25 ml.Vasos de precipitación 40ml.Pipetas 40 ml graduadasGradillas tubos 50mlTubos 18*150Gradillas para tubos 18*150Pipetas 5 graduadasPapel film cortado

Hb glicolisada Sangre con EDTA Tubos especiales del equipoGradilla del equipoVasos de precipitadosTubos 12*75Papel film

En las unidades donde se cuente con metodología de radioinmunoanálisis tendrá que auxiliar en la numeración de tubos y de viales, tomará muestras de sangre para los estudios por radioinmunoanálisis y preparará el material para la toma de muestras referente a los mismos.

TEMA 6

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HEMATOLOGIA (cuestionario)

1.- ¿Cómo se llama al sistema encargado de abastecer de materia prima y 02 a las células de nuestro organismo?Sistema circulatorio (corazón, venas y arterias)

2.- ¿En este sistema por donde corre la sangre?Por venas, arterias y vasos linfáticos

3.- ¿Cuál es la función de la sangre?Transportar nutrientes a los tejidos, defensa, nivelas el ph y temperatura corporal del cuerpo, etc.

4.- ¿De que se compone?Plasma (mezcla de proteínas, aminoácidos, hidratos de carbono, lípidos, etc) y elementos formes.

5.- ¿Qué es un elemento forme?Son células que flotan en plasma (eritrocitos “hematies o glóbulos rojos” leucocitos “glóbulos blancos y plaquetas “trombocitos”)

6.- ¿Cómo son llamados también los glóbulos rojos, en donde se producen y su N?Eritrocitos ó hematies; médula o sea N=400,000 a 600,000 mm3 del totalSangre arteria =oxigenada (roja)Sangre venosa=1/2 oxígeno(púrpura)

7.- ¿Cómo están formados los hematies?Membrana (intercambio)Enzimas (producir ATP)Pigmento rojo hemoglobina (h.b.), determina la presencia de oxígeno, sino sería púrpura.

8.- Dibuje una célula de h.b. y explíquela4 polipéptidos 2 alfa y 2 beta

9.- ¿Duración de vida de los eritrocitos y por que mueren?Viven 120 días y mueren por envejecimiento de enzimas y permeabilidad la célula hasta que se eliza; los residuos son devorados por los macrófagos (monocítos maduros)

10.- ¿Que es un reticulocito y su N?Es un eritrocito joven fabricado por la médula ósea 1.- Normoblasto2.- De 24 a 48 horas reticulocito medular3.- De 48 a 72 horas reticulocito circulante (torrente sanguíneo)4.- Después pierde el retículo de cromatina y se llena de h.b. N=0.5 a 2.0 % del total

11.- ¿Qué significa eritropoyesis?Formación de eritrocitos

12.- ¿Que es hemolisis?Destrucción de eritrocitos?

13.- ¿Como son llamados también los glóbulos blancos y su N?Leucocitos N=5000 a 10000 mm3. Están encargados de la defensa del organismo (son de 6 tipos, incoloros y menos numerosos que los eritrocitos.

14.- ¿Como se hallan (experimento en laboratorio)?Por frotis en portaobjeto (técnica de Wright) y observación al microscopio.Material biológico: sangre con EDTAExtendido de sangreAñadir colorante de wright con una piseta o pipeta por 5 min. Lavar al chorro de aguaAgregar buffer por 5 min.. Lavar al chorro de agua.Dejar secar sobre papel. Secar exceso con un algodónPoner aceíte de inmersión.Observar y contar por un grupo de 100 células (ayudándose con el piano “contador de células sanguíneas”)Comparar con el método automático “Coulter”Apuntar resultados en el cuaderno del laboratorio.

15.- ¿Qué es un diferencia?Recuento de los leucocitos, tomando en cuenta su porcentaje dentro de la sangre. Ó conteo en % de los leucocitosEj.Neutrofilos Segmentados 50-70% Banda 1-3%Linfocitos 20-30%

Fe++ centro Globina (proteína)

tetrapirol

25

Monocitos 1-4%Basófilos 0-1% Eosinófilos 1-3%

16.- ¿Cúal es la función , tamaño y N de las plaquetas o trombocitos?Coagulación de la sangre, 2 a 4 micras N=2000000 a 4000000 mm3 Tienen mitocóndria y enzimas.

17.- ¿Que es la hemostasia y los elementos que llevan a cabo el proceso?Proceso donde intervienen los elementos que no permiten la perdida por extravación de la sangre.PlaquetasFibrinógeno (coágulo de fibrina, coagulación del plasma)Sistema fibrionolítico (remover fibrina)

18.- ¿Cuales son las fase de la coagulación?Fase de coagulación:Vascular – vasoconstricciónPlaquetaria – creación de plaquetas (tapón)Coagulación – intervienen los factrores de coagulación del plasma

19.- Mencione como se llama a las moléculas que actúan en la coagulaciónSon los llamados factoresFibrinógeno, Protombina, Tromboplastina Tisular, Calcio, Proacelerina, Proconvertina, Antihemofílico, stuart, Rosenthall (TPT) Estabilizante de fibrina.

20.- ¿Qué es un inhibidor de la coagulación y de 3 ejemplos?Aquel que no permite realizar las funciones de los coagulantes; ej, inhibidor C1, antitrombina III, Alfa 1-Antitripsina.

21.- ¿Qué es un órgano hematopolletico y donde se encuentra?Lugar donde se realiza el remplazo de células sanguíneas.Se le localiza en la médula ósea (órgano primario), esternón, clavícula, omóplatos, vértebras, huesos ílicacos, epifiasis.

22.- ¿como se llama a las células que pueden fabricar el hematocrito y donde se encuentra?Se les llama células CEPAS OMNIPOTENTES y se encuentran en la médula ósea. Las inmunocompetentes=luecocitos y copetentes=eritrocitos, plaquetas ó megacariócitos.

23.- Mencione los tipos de sangre y a quién pueden dar o recibirSe consideran 4 tipos (A, B, AB Y O)y un factor rh

GrupoAglutinogenoGlóbulo rojo

Aglutamina en plasmaDonante a Receptor de

A A B A, AB O, AB B A B, AB O, B

AB A Y B Ninguno AB O, A, B, ABO Ninguno solo factor rh A y B O, A, B, AB O

MUERE VIVE MUERE VIVE0=donador universal AB=receptor universal En una placa para aglutinar agregar por cada cámara una gota de sangre de un solo pacienteAgregar una gota de antígeno (suero hemoclasificador, suero tipo o antisueros) A,B OEsperar y donde aglutine será el grupo al que pertenece ese paciente, si no aglutine en ninguno será O-24.- ¿Que es la anemia, anemia aplástica?

La primera es un estado patológico, donde se disminuye el aporte de oxigeno a los tejidos por la sangre.Y el segundo es la destrucción de los hematies.

25.- Mencione el método de contaje de las célulasDepositar sangre en placas micrograbadas y llenar subdivisionesRecubrirla con un portaobjetosExaminar varias veces al microscopio y contar número de células varias veces en cada divisiónHacer los cálculos.

26.- ¿Que la Biometria hemática y sus parámetros N?Es el contaje del paquete de células sanguíneas, expresado por cada elemento formeEritrocitos 400,000 600,000 MM3 Hemoglobina 12-15 gr-dlLeucocitos 5,000 10,000 MM3 VGM 80-94 gr dlPlaquetas 200,000 400,000 MM3 CMHb 30-37 gr-dlHTO (HEMTOCRITO) 42-50% VSG 0-13 mm/hora

27.- ¿De que color son los tubos de ensaye y para que se ocupan?Tubo con tapón Contienen Usado en... Usado para...

OA O

A OOAB

AB

26

Rojo Gel Química sanguínea (Q.S)Para suero; separar paquete sanguíneo sin anticoagulante.

Violeta EDTA (Etil Diamino Tetra Acético) Biometria Hemática (B.h) Para el estudio del plasma.

Azul Citrato de sodio Tiempos de coagulación Para el estudio del plasma.Naranja EDTA Para banco de sangre Para determinar cruce y Q. S

(Ponerlo en baño María 10 min.)Tubo seco 10 * 10

Se hace preparación del gel o EDTA con 1/10 por 9/10 de muestraNOTA: Teniendo precaución de marcar aquellas que sean solicitadas a enfermos de VIH.28.- ¿Qué es una química sanguínea (QS) y parámetros N?

Estudio del suero de la sangre (centrifugación 2 veces por 5 minutos a 3000RPM).Glucosa=70-100 mg/dl

Urea 20-40 mg/dl Creatinina .6-10 mg/dl

Acido urico hasta 7.0 mg/dl

Colesterol hasta 200 mg/dl

Triglicérido 150 mg/dl

29.- Método de punción

30.- Mencione 5 anticoagulantes usados en el laboratorioEDTA Etil Diamino Tetra Acético Citrato de sodio

(Qs, Bh, tiempo coagulación)

Citrato dextrosaCitrato fosfato dextrosaCitrato fosfato dextrosa adenina

21 días ocupados en sangre congelada o plasma21 días35 días

31.- Mencione como se le llama a la disminución o aumento de:Eritrocitos +policitemia - anemiaLeucocito +leucocitosis -leucocitopeniaPlaquetas +trombositosis -trombositopenia

32.- ¿Como se determinan los reticulocitos?Frotis en portaobjeto ,añadiendo solución salina 1 a 1, 1 gota de cresil brillante o azul de metileno y una gota de sangre EDTA, a baño hirviente, a temperatura ambiente por 15 min y observación al microscopio

33.- Dibuja un tubo de wintrobe y como se lee

10 0

40 10

34.- ¿Como se lee la tabla de VSG CORREGIDA?

35.- Cuales son los métodos modernos para la determinación de B.h., Q.s. y tiempos de coagulación? Coulter B.h, y tiempos de coagulaciónVitilab selectra Q.s.

36.- ¿Cuales son las formulas para una Bh.Formula blancaFormula roja

37.- ¿Cuales son los parámetros de un B.h incompleta?

38.- ¿Cuáles son los tiempo de refrigeración y congelación de los medios?

39.- ¿Cuales son los diámetros de las agujas usadas para la extracción de muestras sanguíneas?

GLOSARIO DE TERMINOS TECNICOS

HTO VSG

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PALABRA CONCEPTOAbsorción Acción de absorber líquidos u otras sustancias por la piel, superficies mucosas o vasos absorbentes.Adsorción Capacidad de ciertas sustancias para incorporar líquidos por un proceso diferente al de atracción capilar.Adyuvante Sustancia que acelera la producción de anticuerpos

A/G Abreviatura para la relación entre albúminas y las globulinasAgamaglobulina Falta completa en la producción de anticuerpos

Agar Sustancia solidificante que consiste de una mezcla de carbohidratos extraídos de algunas algas marinas, se emplea con frecuencia como base para medios bacteriológicos

Alicuota Parte representativa de un volumen total conocidoAnálisis Separación de una sustancia o cosa en sus partes o elementos

Anticoagulante Que impide la coagulación de la sangreAnticuerpo Seroglobulina modificada que se forma en respuesta a un estímulo antigenico y que reacciona en vivo o in vitro en

el antígeno homologoAntígeno Sustancia que despierta una respuesta inmunológica como la producción de un anticuerpo específico para una

sustanciaAntisuero Suero que contiene uno o más anticuerposAutoclave Aparato para esterilizar objetos por medio del vapor bajo presión.

Benzal Polvo amargo, aromático, blanco o blanco amarillento utilizado localmente en solución como agente antibacteriano

Bilirrubina Es el principal pigmento de la bilis y se forma por reducción de la biliverdina. Presencias de bilirrubina en la orina

Bilirrubinemia Presencia de bilirrubina en la sangreCatelocolamina Compuesto de 3 substancias (epinefrina, norepinefrina y la dopamina), se encuentra alterada en la hipertensión

arterialCentrífuga Instrumento para separar substancias de distintas densidades mediante la fuerza centrífuga.

5 fidroxí indol acético

Conocido domo serotina. Es un potente vasoconstrictor aislado del cerebro y las plaquetas sanguíneas, actúa como agente neurohumoral.

Citología hemática Estudio científico del origen, estructura y funciones de las células de la sangreCoagulación Acción o efecto de coagular o coagularseColorimetría Ciencia que determina y define los colores, se usa en análisis químicos mediante el uso de un colorímetroColorímetro Instrumento para determinar la intensidad del colorCoprocultivo Estudio bacteriológico de las heces (materia fecal)

Cuantificación Es el proceso mediante el cual se mide la cantidad exacta de un compuesto presente en el organismoDecantación Acto de separar de un sedimento el líquido claro sobrenadanteDesímetro Aparato usado para determinar la densidad o un peso específico de un líquidoDilución Acción y efecto de disolver y desunir las partes de algunos cuerpos por medio de un líquido, es decir

disminuyendo la concentración de una solución por el agregado de un líquido.Edema Acumulación excesiva de un líquido en los espacios tisulares debido a un aumento de la trasudación de líquido a

partir de los capilares sanguíneos.Electronegatividad Sirve para medir la tendencia de un átomo de un elemento a atraer electrones en un enlace covalenteEspectrofotómetro Aparato que mide la pérdida de la intensidad de una radiación al atravesar un medio absorbente, es decir que mide

el paso de energía radiante, a través de una substancia que esta en estudio y medir su intensidad.Esterilización Destrucción completa de los microorganismos por medios físicos o químicos

Exudado Producto de una exudaciónExudación Salida desde un vaso o un reservario de una substancia que se deposita en los tejidos o sobre ellos como

consecuencia de un proceso vital o de una enfermedadFlamómetro Instrumento para la determinación cuantitativa de Sodw, Potasio y Cloro mediante una flama

Fibrina Proteína fibrosa insoluble formada por la interacción de la trombina y el fibrinógenoFluorescencia Propiedad que poseen ciertas substancias que al ser iluminadas irradian una luz de longitud de onda diferente

Glucemia Presencia de glucosa en la sangreGlucosuria Presencia de glucosa en la orinaHematoma Seudotemor que contiene sangre acumulada

Hematopoyesis Formación y evolución de las células sanguíneasHemocultivo Cultivo bacteriológico de la sangre

Hemólisis Destrucción de glóbulos rojos con la consecuente liberación de h.b.Hisopo Aplicador de madera con algodón en lino de los extremos para toma de productos bacteriológicos de mucosa

Hormona Sustancia química secretada por la glándula endócrina que transportada por el torrente sanguíneo ejerce una acción específica sobre las funciones de otros órganos

Huésped Cuerpo orgánico en el que habita un parásitoInfección Invasión del cuerpo por agentes patógenos y reacción de los tejidos frente aquellos y a las toxinas que producenJeringa Aparato comúnmente de cristal o plástico, que se ajusta perfectamente con una aguja de metal hueca, empleada

para aspirar o inyectar líquidos con propósitos diagnósticos o terapéuticosLanceta Pequeña cucharilla quirúrgica puntiaguda, de doble filoLigadura Compresión del antebrazo en su tercio superior, para reducir la velocidad de la sangreLinfocito Célula formada principalmente en el tejido linfático de muchas partes del cuerpo como los ganglios linfáticos,

bazo, amígdalasMacrófago Célula fagocitaria que pertenece al sistema reticuloendotelial (sistema monocluear fagocítico)

Manipulación Tratamiento experto o diestro con la mano, es decir ejecución de las operaciones manualesMaterial radiactivo Es aquel capaz de emitir radiaciones, es decir que contiene radioactividad

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Mol Cantidad gramo que contiene un # de Avogadro de unidad formula, sin importar la naturaleza de las unidadesOrina Líquido excretado por los riñones almacenado en la vejiga y descargado por la uretra

Precipitación Reacción de combinación de iones en solución para formar una fase sólida. El sólido insoluble que se separa de la solución se llama precipitado

Probeta Tubo de vidrio o plástico abierto, que se emplea para medir o transferir cantidades medidas de líquidoPunción Agujero hecho mediante un instrumento punzocortante.Plasma Porción líquida de la sangre que está constituida por unas mezcla de muchas proteínas y que contiene el

fibrinógenoProteinuria Presencia de proteínas en la orina

Quiste Espacio cerrado dentro de un tejido en órgano revestido de epitelio generalmente lleno de líquido u otro materialRadioactividad Fenómeno presentado por ciertos elementos químicos que se transmiten espontáneamente y emiten radiaciones

Rayos infrarrojos Son las radiaciones caloríficas invisibles, que presentan acción calorífica (7700 y 500000 A°)Rayos ultravioleta Son las radiaciones invisibles del espectro luminoso que se extienden a continuación del color violáceo

Reactivo Sustancia que se emplea en química para reconocer la naturaleza de ciertos cuerpos por medio de la acción que produce sobre ellos, o sea es una substancia que se utiliza para investigar o reconocer otra por la reacción que con ella produce

Sangre total Tejido fluido que circula a través del corazón, las arterias, los capilares y las venas, que provee de oxigeno y sustancias alimenticias a los tejidos del cuerpo y remueve de ellos el bióxido de carbono y los productos de desecho metabólico

Solubilidad Cantidad de substancia que se disuelve en una cantidad determinada de solvente a una temperatura específicaSolución Mezcla homogénea formada por un sólido, líquido o gas son otras substancias sólidas, líquidas o gaseosas

distintas y que no son diferenciales entre si una vez que forman parte de la mezclaSolución

amortiguadoraSolución que se resiste a cambiar el pH cuando se le agregan pequeñas cantidaddes de ácido o base

Soluto Substancia disuelta en el solventeSolvente Dícese especialmente del componente que se encuentra en mayor proporción de una solución o sea es una

substancia que disuelve o es capaz de disolverseSuero Líquido sin células ni fibrinógeno que queda tras de la coagulación de la sangre

Tinción Coloración producida por la absorción de o contacto con substancias extrañasTorniquete Instrumento usado para evitar o detener una hemorragia o con el propósito de controlar e impedir el acceso de

sangre a una zona determinadaTorunda Tapón de algodón o de gasa en acciones esterilizadas, que se utiliza para detener hemorragiasToxina Substancia venenosa formada por células vegetales o animales

Transaminasa Una de las enzimas que catalizan la transferencia del grupo de un aminoácido a un cetoácido para formar otro aminoácido

Uremia Anomalía bioquímica en caso de insuficiencia renalUrocromo Pigmento amarillo de la orinaUrocultivo Estudio bacteriológico de la orinaVolumen Espacio ocupado por una masa o cuerpo

curso para auxiliar de lab oratorio

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