Analisis kualitatif karbohidrat. Karbohidrat merupakan senyawa metabolit primer selain protein dan lipid. Karbohidrat mempunyai peranan yang penting dalam kehidupan manusia, antara lain adalah sebagai sumber tenaga dan penghasil panas tubuh. Adanya karbohidrat dapat diidentifikasi dengan menggunakan berbagai macam metode. Inilah teori beberapa metode analisis kualitatif karbohidrat.

1. Uji MolischUji Molisch merupakan uji yang paling umum untuk karbohidrat. Uji Molisch sangat efektif untuk senyawa-senyawa yang dapat didehidrasi oleh asam pekat menjadi senyawa furfural yang terubstitusi, seperti hidroksimetilfurfural.

Warna yang terjadi disebabkan oleh kondensasi furfural atau derivatnya dengan alfa-naftol menghasilkan senyawa kompleks berwarna merah-ungu.

Thymol dapat dipakai sebagai pengganti alfa-naftol. Ia juga lebih stabil daripada alfa-naftol dan pada penyimpanan yang lama tidak berubah warna.

2. Uji BenedictUji Benedict dan uji Barfoed keduanya berdasarkan resuksi Cu2+ menjadi Cu+. Pada proses reduksi kupri dalam suasana alkalis biasanya ditambahkan zat pengompleks

seperti sitrat pada larutan Benedict atau tartrat pada larutan Fehling, hal ini dilakukan untuk mencegah pengendapan CuCO3 dalam larutan natrium karbonat pada Benedict, sedangkan pada Fehling untuk mencegah pengendapan Cu(OH)2 atau CuO dalam larutan natirum hidroksida. Produk oksidasi karbohidrat dalam larutan alkalis sangat kompleks dan banyak jumlahnya, belum semuanya dapat diidentifikasi yaitu berwarna hijau, merah, oranye, dan pembentukan endapan merah bata. Tidak seperti maltosa dan laktosa, sukrosa tidak dapat mereduksi Benedict, karena ia tidak memiliki gugus aldehida atau gugus keto bebas.

3. Uji BarfoedDengan menggunakan reagen Barfoed yang mengandung koper asetat di dalam asam asetat, maka kita dapat membedakan monosakarida dan disakarida dengan jalan mengontrol kondisi-kondisi seperti pH dan waktu pemanasan.

4. Uji SeliwanoffReaksi spesifik lainnya untuk uji karbohidrat tertentu adalah uji Seliwanoff dan uji Foulger. Reaksi Seliwanoff disebabkan perubahan fruktosa oleh asam klorida panas menjadi asam levulinat dan hidroksimetilfurfural. Selanjutnya kondensasi hidroksimetilfurfural dengan resorsinol menghasilkan senyawa kompleks berikut yang berwrna merah:

Sukrosa yang mudah dihidrolisis menjadi glukosa dan fruktosa, memberi reaksi positif dengan uji Seliwanoff. Pada pendidihan lebih lanjut, aldosa-aldosa memberikan warna merah dengan reagen Seliwanoff, karena aldosa-aldosa tersebut diubah oleh HCl menjadi ketosa.

5. Uji FenilhidrazinKarbohidrat (kecuali manosa) yang memiliki gugus fungsional aldehid atau keton, membentuk osazon dengan fenilhidrazin. Glukosa dan fruktosa memberikan osazon yang sama karena monosakarida-monosakarida tersebut tidak mempunyai letak susunan gugus -H dan -OH yang sama pada atom akrbon 3, 4, 5, dan 6. Manosa tidak membentui osazon di dalam larutan air, tetapi mebentuk fenilhidrazin yang tidak larut.

6. Uji IodinUji iodin dapat digunakan untuk membedakan amilum dan glikogen. Iodin dapat bereaksi dengan amilum membentuk kompleks berwarna biru atau ungu.

Sumber : http://www.ilmukimia.org/2012/12/teori-analisis-kualitatif-karbohidrat.html

Analisa kualiatif karbohidrat.1. Uji Molisch- Prinsip reaksi ini adalah dehidrasi senyawa karbohidrat oleh asam sulfat pekat.- Dehidrasi heksosa menghasilkan senyawa hidroksi metil furfural, sedangkan dehidrasi pentosa menghasilkan senyawa fulfural.- Uji positif jika timbul cincin merah ungu yang merupakan kondensasi antara furfural atau hidroksimetil furfural dengan alpha-naftol dalam pereaksi molish.2. Uji Seliwanoff- merupakan uji spesifik untuk karbohidrat yang mengandung gugus keton atau disebut juga ketosa- Jika dipanaskan karbohidrat yang mengandung gugus keton akan menghasikan warna merah pada larutannya.3. Uji Benedict- merupakan uji umum untuk karbohidrat yang memiliki gugus aldehid atau keton bebas- Uji benedict berdasarkan reduksi Cu2+ menjadi Cu+ oleh gugus aldehid atau keton bebas dalam suasana alkalis- biasanya ditambahkan zat pengompleks seperti sitrat atau tatrat untuk mencegah terjadinya pengendapan CuCO3- uji positif ditandai dengan terbentuknya larutan hijau, merah, orange atau merah bata serta adanya endapan.4. Uji Barfoed- Digunakan untuk menunjukkan adanya monosakarida dalam sampel- Uji positif ditunjukkan dengan terbentuknya endapan merah orange5. Uji Iodin- Digunakan untuk menunjukkan adanya polisakarida- Amilum dengan iodine dapat membentuk kompleks biru- Amilopektin dengan iodin akan memberi warna merah ungu- sedangkan dengan glikogen dan dekstrin akan membentuk warna merah coklat6. Uji Fehling- Digunakan untuk menunjukkan adanya karbohidrat pereduksi (monosakarida, laktosa, maltosa, dll)- Uji positif ditandai dengan warna merah bata

Sumber : http://biologi.blogsome.com/2011/02/07/karbohidrat-dan-uji-karbohidrat/

http://sri-rahayu-kimia.blogspot.com/2012/04/laporan-praktikum-karbohidrat.html

 Didalam dunia hayati kita mengenal berbagai jenis karbohidrat, baik yang berfungsi

sebagai pembangun  struktur maupun yang berperan fungsional dalam proses metabilisme.

Berbagai uji telah dikembangkan untuk analisis baik kualitatif maupun kuantitatif terhadap

keberadaan karbohidrat. Mulai dari yang membedakan karbohidrat dari senyawa lain

sampai pada yang mampu membedakan jenis-jenis karbohidrat secara spesifik.

            Uji molisch tidak spesifik terhadap karbohidrat, akan tetapi hasil yang

negatif  menunjukkan bahwa larutan yang diperiksa tidak mengandung karbohidrat.

Pereaksi molisch terdiri dari larutan 5% ά-naftol dalam alkohol 95%. Pereaksi ini

berdasarkan pembentukan furfural atau turunan-turunan dari karbohidrat yang dihedratasi

oleh asam pekat. Reaksi yang terjadi dengan ά-naftol akan membentuk persenyawaan

berwarna.

            Uji benedict merupakan larutan-larutan tembaga yang basa, yang bila direduksi oleh

karbohidrat yang mempunyai gugus aldehid atau keton bebas akan membentuk kupri

oksida. Pembentukan senyawa ini dapat dilihat pada pembentukan warna hasil reaksi.

            Uji barfoed digunakan untuk membedakan monosakarida dengan disakarida.

Karbohirdrat didalam suasana asam lemah akan mengalami perubahan reaktivitas.

Karbohidrat dengan reaktivitas rendah akan menghilangkan daya reduksinya, sedangkan

karbohidrat dengan reaktivitas tinggi akan mempertahankan daya reduksinya.

            Uji fermentasi. Pada suasana anaerob, karbohidrat akan dicerna dan dirubah

bentuknya menjadi etilalkohol (C2H5OH) dan gas karbondioksida (CO2) oleh ragi.

            Uji selliwanof spesifik untuk ketosa. Uji ini berdasarkan reaksi atas pembentukan  4-

hidroksi metil furfural yang membentuk senyawa berwarna dengan adanya resorsionol atat

1.3-dihidroksi benzen.

            Uji osazon, Aldosa atau ketosa dapat bereaksi dengan hidrazin membentuk suatu

hidrazon. Hidrazin yang berlebih dengan hidrazon akan membentuk suatu osazon. Uji

tauber, pentosa dengan bendizin didalam asam asetat glasial akan membentuk suatu

senyawa. Sedangkan pada uji iod. Iodium dengan pati dapat membentuk suatu ikatan

kompleks yang berwarna biru.

Tujuan Percobaan

            Percobaan bertujuan untuk mengamati struktur beberapa karbohidrat melalui sifat

reaksinya dengan beberapa reagen uji.

Alat dan Bahan

            Alat yang digunakan adalah tabung reaksi, pipet, pipet tetes, penangas air, mortar,

tabung fermentasi, inkubator, papan uji dan mikroskop.

            Bahan yang digunakan adalah pereaksi molisch, pereaksi benedict, pereaksi

barfoed, pereaksi selliwanof, fenil hidrazin Na asetat kering, pereaksi tauber, iod encer,

larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%, asam

sulfat pekat, fosfomolibdat, ragi roti, NaOH 10%, arabinosa 1%, gum arab 1%, tepung gum

arab dan tepung pati.

Metode

            Uji molisch dilakukan dengan cara mencampurkan 5 ml bahan yang akan diperiksa

dengan 2 tetes pereaksi molisch, lalu diaduk kemudian ditambah 3 ml asam sulfat pekat

melalui dinding tabung reaksi. Bahan diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa

1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%.

            Uji benedict dilakukan dengan cara mula-mula dimasukkan 5 ml pereaksi benedict

dalam tabung reaksi lalu ditambah dengan  8 tetes bahan yang akan diuji yang kemudian

diaduk dan didihkan diatas penangas air selama 5 menit lalu didinginkan dan diamati

endapan serta warna yang terjadi. Bahan diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%,

sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%.

            Uji barfoed dilakukan dengan cara mencampurkan 1 ml pereaksi barfoed dengan

bahan yang akan diuji, lalu dipanaskan pada air mendidih selama 3 menit kemudian

didinginkan dan ditambahkan 1 ml fosfomolibdat. Dikocok dan diamati warna yang terjadi.

Bahan diuji adalah larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%,

pati 2%.

            Ui fermentasi. Mula-mula digerus campuran 20 ml larutan bahan dengan 2 gram

ragi roti sampai terjadi suspensi yang homogen, kemudian suspensi teresbut dimasukkan

dalam tabung fermentasi, lalu tabung tersebut dimasukkan dalam incubator dengan suhu

36oC dan diperiksa setiap selang 30 menit selama 3 kali. Bahan yang digunakan adalah

larutan glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%.

            Uji selliwanof dilakukan dengan memasukkan 5 ml pereaksi selliwanof dalam

tabung reaksi dan ditambahkan beberapa tetes bahan yang akan ditambah, lalu dididihkan

selama 30 detik dan diamati warna yang terbentuk. Bahan yang diuji adalah larutan glukosa

1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%.

            Uji osazon dilakukan dengan mencampurkan fenil hidrazin Na asetat kering dengan

5 ml larutan percobaan, lalu dikocok dan dipanaskan didalam penangas air, kemudian

didinginkan dan diperiksa endapan dibawah mikroskop. Larutan yang diuji adalah larutan

glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, laktosa 1%, maltosa 1%, pati 2%.

            Uji tauber dilakukan dengan memasukkan satu tetes larutan uji dan 2 ml pereaksi

tauber, lalu dipanaskan sampai mendidih dan didinginkan dengan cara direndam dalam air

dingin, kemudian ditambahkan sejumlah air untuk memperjelas warna. Larutan bahan yang

diuji adalah glukosa 1%, fruktosa 1%, arabinosa 1% dan gum arab 1%.

            Uji pati dilakukan dengan memasukkan sedikit tepung pati dalam papan uji,

kemudian ditambah sedikit larutan iod encer dan diamati warna yang terjadi. Uji ini juga

dilakukan terhadap larutan gum arab.

http://monruw.wordpress.com/2010/03/12/uji-molisch/

http://nikku92.wordpress.com/2010/11/19/uji-identifikasi-karbohidrat/

Karbohidrat adalah polihidroksi aldehida atau keton dengan rumus empirik (CH2O)n, dapat diubah

menjadi aldehida dan keton dengan cara hidrolisis, disusun oleh dua sampai delapan monosakarida

yang dirujuk sebagai oligosakarida. Karbohidrat tersebar luas baik dalam jaringan hewan maupun

jaringan tumbuh-tumbuhan. Dalam tumbuh-tumbuhan, karbohidrat dihasilkan oleh fotosintesis dan

mencakup selulosa serta pati. Pada jaringan hewan, karbohidrat berbentuk glukosa dan glikogen.

Fungsi karbohidrat yaitu, untuk sumber energi, pemanis pada makanan, penghemat protein, pengatur

metabolisme lemak, penawar racun, baik untuk yang terkena konstipasi (sembelit), dan masih banyak

lagi manfaat-manfaat yang lainnya.

Pada umumnya karbohidrat merupakan zat padat berwarna putih yang sukar larut dalam pelarut

organik tetapi larut dalam air (kecuali beberapa polisakarida). Karbohidrat dibagi dalam tiga golongan

yaitu :

1. Monosakarida; adalah karbohidrat yang tidak dapat dihidrolisis menjadi bentuk yang lebih

sederhana lagi, dapat dibedakan berdasarkan banyaknya atom C pada molekulnya, dan gugus aldehid

atau keton yang dikandung berubah menjadi aldosa dan ketosa. Monosakarida merupakan gula

sederhana yang memiliki satu atom karbon asimetrik, contoh : glukosa, galaktosa, fruktosa, manosa,

dan ribosa.

2. Oligosakarida; adalah karbohidrat yang tersusun dari dua sampai sepuluh molekul monosakarida

yang digabungkan oleh ikatan kovalen. Biasanya dikenal dengan disakarida, contoh : maltosa, laktosa,

dan sukrosa.

3. Polisakarida; adalah karbohidrat yang mengandung lebih dari sepuluh monosakarida yang

berikatan. Bila dihidrolisis dapat menghasilkan lebih dari 6 molekul monosakarida, contoh : glikogen

dan amilum (pati) merupakan polimer glukosa. Berfungsi untuk penyimpanan karbohidrat.

Ada beberapa metode uji kualitatif karbohidrat :

1. Uji Molisch

Adalah uji untuk membuktikan adanya karbohidrat. Uji ini efektif untuk berbagai senyawa yang dapat

di dehidrasi menjadi furfural atau substitusi furfural oleh asam sulfat pekat. Senyawa furfural akan

membentuk kompleks dengan α-naftol yang dikandung pereaksi Molisch dengan memberikan warna

ungu pada larutan.

2. Uji Benedict

Adalah uji untuk membuktikan adanya gula pereduksi. Gula pereduksi adalah gula yang mengalami

reaksi hidrolisis dan bisa diurai menjadi sedikitnya dua buah monosakarida. Karateristiknya tidak bisa

larut atau bereaksi secara langsung dengan Benedict, contohnya semua golongan monosakarida,

sedangkan gula non pereduksi struktur gulanya berbentuk siklik yang berarti bahwa hemiasetal dan

hemiketalnya tidak berada dalam kesetimbangannya, contohnya fruktosa dan sukrosa. Dengan prinsip

berdasarkan reduksi Cu2+ menjadi Cu+ yang mengendap sebagai Cu2O berwarna merah bata. Untuk

menghindari pengendapan CuCO3 pada larutan natrium karbonat (reagen Benedict), maka

ditambahkan asam sitrat. Larutan tembaga alkalis dapat direduksi oleh karbohidrat yang mempunyai

gugus aldehid atau monoketon bebas, sehingga sukrosa yang tidak mengandung aldehid atau keton

bebas tidak dapat mereduksi larutan Benedict.

3. Uji Barfoed

Adalah uji untuk membedakan monosakarida dan disakarida dengan mengontrol kondisi pH serta

waktu pemanasan. Prinsipnya berdasarkan reduksi Cu2+ menjadi Cu+. Reagen Barfoed mengandung

senyawa tembaga asetat.

4. Uji Seliwanoff

Prinsipnya berdasarkan konversi fruktosa menjadi asam levulinat dan hidroksimetil furfural oleh asam

hidroklorida panas dan terjadi kondensasi hidroksimetilfurfural dengan resorsinol yang menghasilkan

senyawa berwarna merah, reaksi ini spesifik untuk ketosa. Sukrosa yang mudah dihidrolisis menjadi

glukosa dan fruktosa akan memberikan reaksi positif dengan uji seliwanoff yang akan memberikan

warna jingga pada larutan.

5. Uji Hidrolisis Pati

Pati dan iodium membentuk ikatan kompleks berwarna biru. Pati dalam suasana asam bila dipanaskan

dapat terhidrolisis menjadi senyawa yang lebih sederhana, hasilnya diuji dengan iodium yang akan

memberikan warna biru sampai tidak berwarna dan hasil akhir ditegaskan dengan uji Benedict.

http://dianafatihatul.blogspot.com/2013/02/normal-0-false-false-false-en-us-x-none.html

http://journalbiologi.blogspot.com/2012/08/uji-karbohidrat.html

http://alexschemistry.blogspot.com/2012/09/uji-kulaitatif-untuk-identifikasi.html

http://jusakben.blogspot.com/2012/04/uji-kualitatif-karbohidrat.html

http://helida-hatta.blogspot.com/2011/11/analisis-karbohidrat.html

http://warnawarnikampus.blogspot.com/2012/11/1-november-2012-uji-kualitatif.html