osmoregulasi pada ikan nila

8/10/2019 Osmoregulasi Pada Ikan Nila

1/27

1

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Osmoregulasi sangat penting pada hewan air karena tubuh ikan bersifat

permeabel terhadap lingkungan maupun lautan garam. Sifat fisik lingkungan yang

berbeda menyebabkan ada perbedaan proses osmoregulasi antara ikan air tawar

dengan ikan air laut. Cairan tubuh ikan tawar mempunyai tekanan yang lebih

besar dari pada lingkungannya, garam-garam cenderung ke luar. Sebaliknya ikan

yang hidup di laut mempunyai tekanan osmotik yang lebih kecil dari pada

lingkunganya, sehingga terdapat kecenderungan garam-garam masuk ke dalam

tubuh dan air keluar.

Osmoregulasi adalah pengontrolan kadar air dan garam mineral di dalam

darah. Ini merupakan mekanisme homeostatik. Regulasi dari konsentrasi Na+

pada plasma hampir sama konsentrasinya dengan ekskresi regulasi Na+ yang

berhubungan dengan sensor dan efektor yang berbeda-beda (penerima volum)

yang berasal dari keseimbangan air dan osmoregulasi

Tanpa osmoregulasi maka ikan akan mati, ini karena osmoregulasi dapat

mengontrol konsentrasi cairan dalam tubuh. Jika ikan tidak bisa mengatur proses

osmose dalam tubuhnya maka ikan akan mati, karena osmoregulasi sangat

berfungsi dalam aspek kesehatan ikan.

1.2 Tujuan

Tujuan dari praktikum ini adalah mengamati osmoregulasi pada ikan nila(Oreochromis niloticus ).

1.3 Manfaat

Manfaat yang dapat diperoleh pada praktikum kali ini adalah kita dapat

mengetahui osmoregulasi pada ikan nila pada media hidup dengan salinitas yang

bervariasi.


2/27

2

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Ikan Nila

Ikan Nila adalah sejenis ikan konsumsi air tawar. Ikan ini d iintroduksi dari

Afrika pada tahun 1969, dan kini menjadi ikan peliharaan yang populer di kolam-

kolam air tawar dan beberapa waduk di Indonesia. Nama ilmiahnya adalah

Oreochromis niloticus , dan dalam bahasa Inggris dikenal sebagai Nile Tilapia .

Ikan peliharaan yang berukuran sedang, panjang total (moncong hingga ujung

ekor) mencapai sekitar 30 cm. Sirip punggung ( dorsal ) dengan 16-17 duri (tajam)

dan 11-15 jari-jari (duri lunak); dan sirip dubur ( anal ) dengan 3 duri dan 8-11 jari-

jari. Tubuh berwarna kehitaman atau keabuan, dengan beberapa pita gelap

melintang (belang) yang makin mengabur pada ikan dewasa. Ekor bergaris-garis

tegak , 7-12 buah. Tenggorokan, sirip dada, sirip perut, sirip ekor dan ujung sirip

punggung dengan warna merah atau kemerahan (atau kekuningan) ketika musim

berbiak (Wikipedia, 2009).

Ikan nila dilaporkan sebagai pemakan segala (omnivora) , pemakan

plankton, sampai pemakan aneka tumbuhan sehingga ikan ini diperkirakan dapat

dimanfaatkan sebagai pengendali gulma air. Ikan ini sangat peridi, mudah

berbiak. Secara alami, ikan nila (dari perkataan Nile , Sungai Nil) ditemukan mulai

dari Syria di utara hingga Afrika timur sampai ke Kongo dan Liberia.

Pemeliharaan ikan ini diyakini pula telah berlangsung semenjak peradaban Mesir

purba. Karena mudahnya dipelihara dan dibiakkan, ikan ini segera diternakkan di

banyak negara sebagai ikan konsumsi, termasuk di pelbagai daerah di Indonesia.Akan tetapi mengingat rasa dagingnya yang tidak istimewa, ikan nila juga tidak

pernah mencapai harga yang tinggi. Di samping dijual dalam keadaan segar,

daging ikan nila sering pula dijadikan fillet (Wikipedia, 2009). Ikan nila relatif

cepat beradaptasi terhadap perubahan lingkungan yang baru. Daya adaptasi juga

berbeda antara ikan besar dan ikan kecil. Ikan yang berukuran besar ternyata

kurang cepat beradapasi dibandingkan dengan ikan yang berukuran kecil (Effendi,

2001).
http://id.wikipedia.org/wiki/Ikanhttp://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Ikan_air_tawar&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/wiki/Introduksihttp://id.wikipedia.org/wiki/Afrikahttp://id.wikipedia.org/wiki/Wadukhttp://id.wikipedia.org/wiki/Indonesiahttp://id.wikipedia.org/wiki/Bahasa_Inggrishttp://id.wikipedia.org/wiki/Sentimeterhttp://id.wikipedia.org/wiki/Omnivorahttp://id.wikipedia.org/wiki/Planktonhttp://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Peridi&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/wiki/Syriahttp://id.wikipedia.org/wiki/Kongohttp://id.wikipedia.org/wiki/Liberiahttp://id.wikipedia.org/wiki/Mesirhttp://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Fillet&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Fillet&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Fillet&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/wiki/Mesirhttp://id.wikipedia.org/wiki/Liberiahttp://id.wikipedia.org/wiki/Kongohttp://id.wikipedia.org/wiki/Syriahttp://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Peridi&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/wiki/Planktonhttp://id.wikipedia.org/wiki/Omnivorahttp://id.wikipedia.org/wiki/Sentimeterhttp://id.wikipedia.org/wiki/Bahasa_Inggrishttp://id.wikipedia.org/wiki/Indonesiahttp://id.wikipedia.org/wiki/Wadukhttp://id.wikipedia.org/wiki/Afrikahttp://id.wikipedia.org/wiki/Introduksihttp://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Ikan_air_tawar&action=edit&redlink=1http://id.wikipedia.org/wiki/Ikan


3/27

3

Klasifikasi ikan nila (Trewavas 1982 diacu dalam Shindu 2005) adalah :

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata

Kelas : Osteichtyes

Ordo : Percomorphi

Famili : Cichlidae

Genus : Oreochromis

Spesies : Oreochromis niloticus

Gambar 1. Ikan Nila

Sumber : pena-khadafi.blogspot.com

2.2 Osmoregulasi

Osmoregulasi adalah proses mengatur konsentrasi cairan dan

menyeimbangkan pemasukan serta pengeluaran cairan tubuh oleh sel atau

organisme hidup. Proses osmoregulasi diperlukan karena adanya perbedaan

konsentrasi cairan tubuh dengan lingkungan disekitarnya. Osmoregulasi juga berfungsi ganda sebagai sarana untuk membuang zat-zat yang tidak diperlukan

oleh sel atau organisme hidup.

Osmoregulasi sangat penting pada hewan air karena tubuh ikan bersifat

permeabel terhadap lingkungan maupun lautan garam. Sifat fisik lingkungan yang

berbeda menyebabkan ada perbedaan proses osmoregulasi antara ikan air tawar

dengan ikan air laut. Cairan tubuh ikan tawar mempunyai tekanan yang lebih

besar dari pada lingkungannya, garam-garam cenderung ke luar. Sebaliknya ikan
http://www.google.com/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB0&url=http%3A%2F%2Fpena-khadafi.blogspot.com%2F2014%2F02%2Fmutu-ikan-nila.html&ei=dullVIuTDsm3uASrtIHQBg&psig=AFQjCNEJXl1hFLa9VCAbewT-OLBkqctudQ&ust=1416051425560953http://www.google.com/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB0&url=http%3A%2F%2Fpena-khadafi.blogspot.com%2F2014%2F02%2Fmutu-ikan-nila.html&ei=dullVIuTDsm3uASrtIHQBg&psig=AFQjCNEJXl1hFLa9VCAbewT-OLBkqctudQ&ust=1416051425560953


4/27

4

yang hidup di laut mempunyai tekanan osmotik yang lebih kecil dari pada

lingkunganya, sehingga terdapat kecenderungan garam-garam masuk ke dalam

tubuh dan air keluar.

Osmoregulasi adalah pengontrolan kadar air dan garam mineral di dalam

darah. Ini merupakan mekanisme homeostatik. Regulasi dari konsentrasi Na+

pada plasma hampir sama konsentrasinya dengan ekskresi regulasi Na+ yang

berhubungan dengan sensor dan efektor yang berbeda-beda (penerima volum)

yang berasal dari keseimbangan air dan osmoregulasi (vitamins-guide 2004.) dan

ditambahkan pula oleh Fujaya (1999) bahwa osmoregulasi adalah upaya

mengontrol keseimbangan air dan ion ion antara tubuh dan lingkungannya atau

suatu proses pengaturan tekanan osmose. Hal ini penting dilakukan, terutama oleh

organisme perairan karena;

1. Harus terjadi keseimbangan antara substansi tubuh dan lingkungan;

2. Membran sel yang permeabel merupakan tempat lewatnya beberapa substansi

yang bergerak cepat;

3. Adanya perbedaan tekanan osmose antara cairan tubuh dan lingkungan.

Tanpa osmoregulasi maka ikan akan mati, ini karena osmoregulasi dapat

mengontrol konsentrasi cairan dalam tubuh. Jika ikan tidak bisa mengatur proses

osmose dalam tubuhnya maka ikan akan mati, karena osmoregulasi sangat

berfungsi dalam aspek kesehatan ikan (Fujaya,1999).

Osmoconformer adalah sebutan bagi hewan yang mampu memelihara

keseimbangan antara cairan tubuh dengan keadaan lingkungan sekitar.

Kebanyakan invertebrata laut adalah osmoconformer, dimana cairan tubuh mereka

isotonik dari keadaan lingkungannya. Meskipun konsentrasi relatif dari garam dan

cairan tubuh mereka berubah ubah dibandingkan air laut, dalam kasus ini hewan

juga harus mengatur tingkat ion internal (Djawad, dkk, 2007).

2.3 Organ Osmoregulasi

Pada organisme akuatik seperti ikan, terdapat beberapa organ yang

berperan dalam proses pengaturan tekanan osmosis atau osmoregulasi agar proes

fisiologis didalam tubuhnya dapat berjalan normal. Pada ikan air laut terjadi


5/27

5

kehilangan air dari dalam tubuh melalui kulit dan kemudian ikan akan

mendapatkan garam-garam dari air laut yang masuk lewat mulutnya. Organ dalam

tubuh ikan menyerap ion-ion garam seperti Na+, K+ dan Cl-, serta air masuk ke

dalam darah dan selanjutnya disirkulasi. Kemudian insang ikan akan

mengeluarkan kembali ion-ion tersebut dari darah ke lingkungan luar.

Osmoregulasi merupakan suatu fungsi fisiologis yang membutuhkan

energi, yang dikontrol oleh penyerapan selektif ion-ion melewati insang dan

beberapa bagian tubuh lainnya dikontrol oleh pembuangan yang selektif terhadap

garam-garam. Kemampuan osmoregulasi bergantung suhu, musim, umur, kondisi

fisiologis, jenis kelamin dan perbedaan genotip.

1. Ginjal

Ginjal merupakan organ ekskresi yang mempunyai peranan di dalam

proses penyaringan (filtrasi). Pada sebagian besar ikan, pronephoros hanya

berfungsi pada stadia awal,yaitu pada stadia embrio/larva. Yang kemudian

fungsinya digantikan oleh mesonephros ketika ikan menjadi dewasa. Ginjal

melakukan dua fungsi utama :

1. Mengeksresikan sebagian besar produk akhir metabolisme tubuh,

2. Mengatur konsentrasi cairan tubuh.

2. Insang

Insang ikan bersifat permeabel terhadap air dan garam. Di dalam laut

salinitasnya lebih besar daripada dalam cairan tubuhnya. Pada lingkungan air

keluar, tetapi garam berdifusi kedalam. Ikan air laut minum air dalam jumlah yang

banyak dan mengeluarkan sedikit urin. Ikan air tawar, garam akan memasuki

insang dan dalam jumlah yang banyak air akan masuk lewat kulit ikan dan insang.

Hal ini karena kadar garam di dalam tubuh ikan (mendekati 0.5%) yang lebih

tinggi daripada konsentrasi air di mana ikan tersebut hidup. Karena tubuh ikan

akan berusaha agar proses difusi antara air kedalam tubuh ikan tetap berlangsung,

sejumlah besar air dikeluarkan oleh ginjal. Sebgai hasilnya bahwa konsentrasi

garam pada urine sangat rendah ( Fujaya,1999).


6/27

6

3. Kulit

Pada ikan teleostei air tawar yang bersifat hiperosmotik terhadap

media/lingkungan hidupnya, masalah utama yang muncul adalah bagaimana

memasukkan air secara osmosis. Peranan kulit dalam penyerapan secara aktif

pada ikan bertulang sejati (teleostei) air tawar menjadi kurang berarti bila

dibandingkan dengan peranan insang. Hal ini dikarenakan insang mempunyai

permukaan yang lebih besar/luas dan didukung dengan permeabilitasnya yang

tinggi sedangkan kulit umumnya memiliki ketebalan yang lebih besar sehingga

bersifat impermeabel. Umumnya kulit berperan dalam proses osmoregulasi pada

jenis ikan-ikan tertentu, terutama pada stadia awal/larva.

4. Saluran Pencernaan

Saluran pencernaan yang berperan dalam osmoregulasi adalah bagian

esofagus dan usus. Pada ikan bertulang sejati air laut, karena

media/lingkungannya bersifat hipertonik, maka tubuh ikan akan kekurangan air.

Oleh karena itu ikan air laut meminum air laut. Pada waktu meminum air laut ion-

ion Na+ dan Cl- akan diserap darah. Air yang diminum masuk kedalam usus telah

mengalami penawaran sehingga mudah diserap usus.

2.4 Tingkat osmoregulasi

Tingkat osmoregulasi dipengaruhi oleh salinitas tertentu dan akan

berpengaruh terhadap tingkat osmolalitas plasma, jika salinitasnya meningkat

maka osmolalitas plasma juga meningkat sedangkan pada kapasitas

osmoregulasinya semakin besar kadar salinitas suatu perairan maka semakin kecil

nilai kapasitas osmoregulasinya.

Dalam osmoregulasi terdapat dua istilah yaitu eurihalin dan stenohalin.

Eurihalin adalah kemampuan suatu organisme terhadap keadaan perubahan

salinitas yang tinggi. Ikan yang tergolong dalam eurihalin adalah salah satunya

ikan nila. Stenohalin adalah tingkat adaptasi yang sempit terhadap salinitas yang

tinggi. Contoh organisme yang bersifat stenohalin salah satunya adalah ikan

nilam.


7/27

7

Dalam responnya terhadap perubahan salinitas, pengaturan air dan ion

paling sedikit terdapat dua fase. Pengaturan segera yaitu ikan mulai atau

menghentikan minum dan meningkatkan atau menurunkan aktivitas transport ion

dan air yang telah ada pada epitel osmoregulasi yang berhadapan dengan

perubahan salinitas lingkungan. Pengaturan jangka panjang melibatkan modifikasi

organ-organ osmoregulasi seperti insang, intestine dan ginjal. Pada level jaringan

dan sel, bila kan berpindah ke lingkungan laut, sel klorida tipe air tawar hilang,

sedangkan sel klorida tipe air laut berdiferensiasi pada insang.

Tidak ada organisme yang hidup di air tawar tidak melakukan

osmoregulasi. Sedangkan pada ikan air laut, beberapa diantaranya hanya

melakukan sedikit upaya untuk mengontrol tekanan osmose dalam tubuhnya.

Semakin jauh perbedaan tekanan osmose antara tubuh dan lingkungan, semakin

banyak energy metabolisme yang dibutuhkan untuk melakukan osmoregulasi

sebagai upaya adaptasi, namun tetap ada batas toleransi.

a. Kapasitas osmoregulasi > 1 disebut Hiperosmotik.

b. Kapasitas osmoregulasi = 1 disebut Isoosmotik.

c. Kapasitas osmoregulasi < 1 disebut hipoosmotik.

Untuk ikan-ikan potadrom yang bersifat hiperosmotik terhadap

lingkungannya dalam proses osmoregulasi, air bergerak ke dalam tubuh dan ion-

ion keluar ke lingkungan dengan cara difusi. Keseimbangan cairan tubuhnya

dapat terjadi dengan cara meminum sedikit air atau bahkan tidak minum sama

sekali. Kelebihan air dalam tubuhnya dapat dikurangi dengan membuangnya

dalam bentuk urin. Untuk ikan-ikan oseanodrom yang bersifat hipoosmotik

terhadap lingkungannya, air mengalir secara osmose dari dalam tubuhnya melalui

ginjal, insang dan kulit ke lingkungan, sedangkan ion-ion masuk ke dalam

tubuhnya secara difusi. Sedangkan untuk ikan-ikan eurihalin, memiliki

kemampuan untuk dengan cepat menyeimbangkan tekanan osmotik dalam

tubuhnya dengan media (isoosmotik), namun karana kondisi lingkungan perairan

tidak selalu tetap, maka proses ormoregulasi seperti halnya ikan potadrom dan

oseanodrom tetap terjadi.


8/27

8

2.5 Sistem Osmoregulasi

Sistem Osmoregulasi ialah sistem pengaturan keseimbangan tekanan

osmotik cairan tubuh (air dan darah) dengan tekanan osmotik habitat (perairan).

Tekanan osmotik adalah tekanan yang diberikan pada larutan yang dapat

menghentikan perpindahan molekul-molekul pelarut ke dalam larutan melalui

membran semi permeabel (proses osmosis).

Osmoregulasi pada ikan air tawar

Gambar 2. Osmoregulasi Ikan Nila

Sumber : www.jenjet.com

Ikan air tawar cenderung untuk menyerap air dari lingkungannya dengan

cara osmosis, terjadi sebagai akibat dari kadar garam dalam tubuh ikan yang lebih

tinggi dibandingkan dengan lingkungannya. Insang ikan air tawar secara aktifmemasukkan garam dari lingkungan ke dalam tubuh. Ginjal akan memompa

keluar kelebihan air sebagai air seni. Ikan air tawar harus selalu menjaga dirinya

agar garam tidak melarut dan lolos ke dalam air.

Ginjal mempunyai glomeruli dalam jumlah banyak dengan diameter besar.

Ini dimaksudkan untuk lebih dapat menahan garam-garam tubuh agar tidak keluar

dan sekaligus memompa air seni sebanyak-banyaknya. Ketika cairan dari badan

malpighi memasuki tubuli ginjal, glukosaakan diserap kembali pada tubuli
http://www.jenjet.com/alat/alat-penangkapan-ikan-laut.htmlhttp://www.jenjet.com/alat/alat-penangkapan-ikan-laut.html


9/27

9

proximallis dan garam - garam diserap kembali pada tubuli distal. Dinding tubuli

ginjal bersifat impermiable (kedap air, tidak dapat ditembus) terhadap air.

Ikan mempertahankan keseimbangannya dengan tidak banyak minum air,

kulitnya diliputi mucus, melakukan osmosis lewat insang, produksi urinnya encer,

dan memompa garam melalui sel-sel khusus pada insang. Secara umum kulit ikan

merupakan lapisan kedap, sehingga garam di dalam tubuhnya tidak mudah bocor

kedalam air. Satu-satunya bagian ikan yang berinteraksi dengan air adalah insang.


10/27


11/27

11

3. Hand counter, untuk menghitung buka tutup operculum

4. DO meter untuk menghitung oksigen yang terlarut dalam air

5. Stop watch / jam tangan, untuk menghitung waktu

6. pH meter, untuk mengukur pH air


12/27

12

7. Termometer, untuk mengukur suhu air

8. Timbangan elektrik, menimbang ikan dan pakan

9. Beaker glass, melarutkan garam ikan

10. Refraktosalinometer, mengukur salinitas air


13/27


14/27

14

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

4.1.1 Hasil Pengamatan Kelompok

Tabel 1. Laju Pertumbuhan Harian

Ikan

Ke

Hari Pertama Hari Kelima Laju Pertumbuhan

Bobot

Ikan

(gram)

Panjang

Ikan (cm)

Bobot

Ikan

(gram)

Panjang

Ikan (cm)

Bobot

Ikan

(gram)

Panjang

Ikan

(cm)

1 5.26 7 5.49 7.2 1.74 0.2

2 5.72 6.2 5.92 6.5 0.48 0.3

3 4.38 6.3 4.65 6.5 1.92 0.2

4 4 6.5 4.05 6.7 1.5 0.2

5 4.45 6.2 6.56 6.3 1.75 0.1

23.81 32.2 26.67 33.2 7.39 1

Rata-

rata

4.8 6.44 5.3 6.64 1.48 0.2

Perhitungan Laju Pertumbuhan Harian

G =

=

=

= 37,6 %


15/27

15

Tabel 2. Hasil Pengamatan Sub Lethal dan Lethal kelompok

Tanggal Waktu

Sub Lethal Lethal

MukosaTL

Renang

TL

Makan

BT.

Operculum

Berat

(g)SR

6/11/201413.00 - Aktif Lahap 132 4,76

19.00 Sedikit Aktif Lahap 114 -

7/11/2014



13.00Cukup

banyak Aktif Lahap 133 -

8/11/2014 13.00Cukup

banyakAktif Lahap 140 -

9/11/2014 13.00 Banyak

Tidak

terlalu

aktif

Tidak

terlalu

lahap

130 -

10/11/2014 13.00 Banyak

Tidak

terlalu

aktif

Tidak

terlalu

lahap

141 -

11/11/2014 13.00 Banyak

Tidak

terlalu

aktif

Tidak

terlalu

lahap

153 6,64 100 %

Tabel 3. Hasil Pengamatan Kualitas Air Kelompok

Tanggal WaktuKualitas Air

Suhu

Salinitas(ppt)

DO(mg/L) pH

6/11/201413.00 25 10 1,7 6,64

19.00 25 10 1,3 6,72

7/11/201401.00 25 10 1,4 6,8307.00 25 10 1,2 6,46


16/27

16

13.00 24 10 1,6 6,758/11/2014 13.00

23,910

1,9 6,189/11/2014 13.00 23 10 1,4 6,90

10/11/2014 13.00 25 10 1,6 6,53

11/11/2014 13.00 25 10 1,7 6,87

4.1.2 Hasil Pengamatan Kelas

Tabel 4. Hasil Pengamatan Sub Lethal dan Lethal kelas (Lab FHA, Akuakultur,

MSP)

Lab Kelompok

Sub Lethal Lethal

MukosaTl

Renang

Tl

Makan

BT.

OperculumSR

FHA

1 Sedang Tenang Aktif 143 100 %

2 Sedikit Aktif Aktif 128 100 %

3Cukup

Banyak

Cukup

AktifAktif 135 100 %

4 SedikitKurang

aktif

Tidak

langsung

dimakan

152 100 %

5Banyak

busa

Kurang

aktif

Kurang

aktif140 0 %

Lab Kelompok

Sub Lethal Lethal

MukosaTl

Renang

TlMakan

BT.Operculum

SR

Akua-

kultur

1

2 Sedikit AktifKurangnapsumakan

125 100 %


17/27

17

3 SedikitKurang

aktif

Kurangnapsumakan

173 100 %

4 SedikitKurang

aktif

Kurangnapsumakan

153 100 %

5

Lab Kelompok

Sub Lethal Lethal

MukosaTl

Renang

TlMakan

BT.Operculum

SR

MSP

1 SedangTidakAktif

TidakHabis

156 100 %

2 SedangTidakBegituAktif

Kurangnapsumakan

144 100 %

3 SedikitKurang

aktif

Kurangnapsumakan

135 100 %

4Cukup

banyakAktif Lahap 126 100 %

5 BanyakTidakAktif

TidakHabis

135 100 %


18/27

18

Tabel 5. Hasil Pengamatan Kualitas Air Kelas (Lab FHA, Akuakultur, MSP)

Lab Kelompok

Kualitas Air LajuPertumbuhan

Suhu

( )pH

Salinitas

(ppt)

DO

(mg/L)

Awal

(gr)

Akhir

(gr)

FHA

1 25 7.04 0 2.2 5.22 5.22

2 25 6.84 5 1.87 5.8 5.23

3 25 6.72 10 1.81 5.21 5.32

4 25 6.66 15 1.77 10.79 10.845 25 6.13 20 1.9 4.26 0

Lab Kelompok

Kualitas AirLaju

Pertumbuhan

Suhu

( )pH

Salinitas

(ppt)

DO

(mg/L)

Awal

(gr)

Akhir

(gr)

Akua-

kultur

12 25 6.76 5 1.54 4.78 7.78

3 24 6.57 10 1.8 8.3 7.7

4 25 6.63 15 1.56 4.8 3.15

5

Lab Kelompok

Kualitas AirLaju

Pertumbuhan

Suhu

( )pH

Salinitas

(ppt)

DO

(mg/L)

Awal

(gr)

Akhir

(gr)

MSP

1 25 6.79 0 1.6 11.33 11.51

2 25 6.51 5 1.78 6.33 6

3 25 6.66 10 1.51 4.76 6.64

4 25 6.67 15 1.75 4.94 4.55

5 25 6.57 20 1.82 9.78 10.58


19/27

19

4.2 Pembahasan

4.2.1 Pembahasan Data Kelompok

Praktikum kali ini yaitu mengenai Osmoregulasi pada ikan nila. Pada

praktikum ini dilakukan beberapa pengamatan. Pengamatan pertama yaitu

pengamatan sub lethal yang mencakup pengamatan jumlah mukosa, tingkah laku

(gerak) renang dan makan, buka tutup operculum serta pertumbuhan harian.

Pengamatan kedua yaitu pengamatan lethal dengan membandingkan jumlah ikan

yang hidup pada pengamatan hari terakhir dengan jumlah ikan yang hidup pada

hari pertama pengamatan (Effendi,1997). Ketiga yaitu pengamatan kualitas air.

Indikator yang diamati untuk kualitas air yaitu salinitas yang diukur dengan

menggunakan alat refraktosalinometer, Dissolved oxygen (DO) yang diukur

dengan menggunakan DO Meter, Suhu yang diukur dengan termometer dan pH

yang diukur dengan menggunakan pH meter.

Pengamatan pertama yaitu mengenai pengamatan sublethal. Dari hasil

pengamatan yang tertera pada tabel 1.2 dapat diketahui bahwa kadar mukosa yangterdapat pada ikan semakin hari semakin banyak. untuk tingkah laku renang ikan

semakin hari semakin pasif atau tidak terlalu aktif bergerak. Dalam responnya

terhadap perubahan salinitas, pengaturan air dan ion paling sedikit terdapat dua

fase. Pengaturan segera yaitu ikan mulai atau menghentikan minum dan

meningkatkan atau menurunkan aktivitas transport ion dan air yang telah ada pada

epitel osmoregulasi yang berhadapan dengan perubahan salinitas lingkungan.

Pengaturan jangka panjang melibatkan modifikasi organ-organ osmoregulasiseperti insang, intestine dan ginjal. Pada level jaringan dan sel, bila ikan

berpindah ke lingkungan yang bersalinitas tinggi, sel klorida tipe air tawar

berkurang, sehingga kadar mukosa semakin meningkat.

Osmoregulasi memiliki hubungan dengan pertumbuhan dalam hal

penggunaan energi dimana hubungan tersebut bersifat berbanding terbalik.

Meningkatnya penggunaan energi untuk osmoregulasi akan menurunkan porsi

energi untuk pertumbuhan. Hal ini terkait kecenderungan bahwa osmoregulasi


20/27

20

mutlak harus dipenuhi terlebih dahulu sebelum digunakan untuk tumbuh. Maka

dari itu pertumbuhan akan maksimal pada kondisi salinitas yang optimal sehingga

laju pertumbuhan rata-rata bobot ikan dapat meningkat 1,48 gram. Begitupula

dengan laju pertumbuhan panjang ikan mengalami rata-rata penambahan panjang

0,2 cm. Indikator sublethal yang selanjutnya yaitu buka tutup operculum. Pada

setiap pengamatan jumlah buka tutup operculum berbeda-beda, hal ini terjadi

karena faktor lingkungan ikan seiring dengan penambahan dan penurunan suhu.

Indiktor yang terakhir yaitu laju pertumbuhan harian, dari hasil perhitungan

didapatkan bahwa laju pertumbuhan harian pada ikan tersebut yaitu 37,6 %.

Grafik 1. Jumlah BT. Operculum Pada Tiap Pengamatan

Pengamatan kedua yaitu pengamatan lethal, pengamatan ini dihitung

dengan cara membandingkan jumlah ikan yang hidup pada hari pertama dengan

jumlah ikan yang hidup pada hari kelima. dari hasil pengamatan didapatkan bahwa nilai kelangsungan hidup ikan sebesar 100 %. Ikan nila dapat dinyatakan

sebagai ikan eurihalin karena dapat bertahan hingga salinitas 10 ppt.

Pengamatan ketiga yaitu pengamatan kualitas air, indikator yang diamati

pertama yaitu suhu, suhu relatif tidak bervariasi dengan kisaran 23-25 .

Lingkungan tumbuh (habitat) yang paling ideal adalah perairan air tawar yang

memiliki suhu antara 14C 38C, atau suhu optimal 25C 30C. Keadaan suhu

yang rendah yaitu suhu kurang dari 14C ataupun suhu yang terlalu tinggi di atas

132

114128

142133

140130

141153

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

1 2 3 4 5 6 7 8 9

B u

k a T u t u p O p e r c u

l u m

Pengamatan ke-


21/27

21

30C akan menghambat pertumbuhan nila. Ikan nila memiliki toleransi tinggi

terhadap perubahan lingkungan hidup. Batas bawah dan batas atas suhu yang

mematikan ikan nila berturut-turut adalah 11-12C dan 42C (Rukmana,1997).

Grafik 2. Nilai Suhu Pada Tiap Pengamatan

Indikator yang kedua yaitu Dissolved Oxygen (DO). DO sangat berperan

dalam respirasi,DO yang terukur bervariasi berkisar 1,2-1,9 mg/L. DO yang ada

di akuarium disuplai dengan menggunakan bantuan aerator. Dengan adanya

aeratoor sangat membantu terhadap respirasi dan osmoregulasi ikan.

Grafik 3. Nilai DO Pada Tiap Pengamatan

25 25 25 25

24 23.9

23

25 25

22

22.5

23

23.5

24

24.5

25

25.5

1 2 3 4 5 6 7 8 9

S u h u

Pengamatan ke-

1.7

1.31.4

1.2

1.6

1.9

1.4

1.61.7

0

0.2

0.4

0.6

0.8

1

1.2

1.4

1.6

1.8

2

1 2 3 4 5 6 7 8 9

D i s s o

l v e

d O

x y g e n

Pengamatan ke-


22/27

22

Indikator terahir yang diamati yaitu pH air. pH yang didapat berkisar 6,1-

6,9 sehingga masih dapat ditoleransi oleh ikan nila. Keadaan pH air antara 5 11

dapat ditoleransi oleh ikan nila, tetapi pH yang optimal untuk pertumbuhan dan

perkembangbiakkan ikan ini adalah 7- 8. Ikan nila masih dapat tumbuh dalam

keadaan air asin pada salinitas 0-35 ppt. Oleh karena itu, ikan nila dapat

dibudidayakan di perairan payau, tambak dan perairan laut, terutama untuk tujuan

usaha pembesaran (Rukmana, 1997). Semakin aktif ikan bergerak maka semakin

sedikit jumlah mukosa yang dikeluarkan ini berbanding lurus dengan pH yang

didapat dalam praktikum kali ini. Jika pH semakin bertambah maka mukosa

semakin bertambah pula, ini dikarenakan mukosa diperlukan untuk melindungi

dan menjaga kstabilan tubuh ikan .

Grafik 4. Nilai pH Pada Tiap Pengamatan

4.2.2 Pembahasan Data Kelas

Pengamatan yang dilakukan oleh beberapa kelompok dengan perlakuan

(salinitas) yang berbeda menghasilkan perbedaan dalam hasil yang cukup

signifikan. Pada pengamatan pertama mengenai pengamatan Sub Lethal dan

Lethal, dalam pengamatan mukosa rata-rata julah mukosa semakin hari semakin

sedikit karena ikan cenderung pasif. Mukosa yang dihasikan digunakan untuk

mempertahanan diri dari lingkungan sekitar. Selain pengamatan mukosa,

pengamatan bobot ikan pada tiap kelompok ada yang mengalami peningkatan dan

6.646.72

6.83

6.46

6.75

6.18

6.9

6.53

6.87

5.8

6

6.2

6.4

6.6

6.8

7

1 2 3 4 5 6 7 8 9

p H

Pengamatan ke-


23/27

23

adapula yang mengalami penurunan (lihat grafik 5). Peningkatan bobot ikan yang

paling besar yaitu kelompok 2 Lab Akuakultur dimana pertambahan bobotnya

sebesar 3 gram dengan tingkah laku ikan yang aktif, menyebabkan ikan

membutuhkan lebih banyak energi yang didapatkan dari pakan. Peningkatan

bobot ikan dapat disebabkan oleh daya cerna ikan terhadap pakan sangat tinggi

sehingga pakan yang dicerna dapat digunakan untuk pertumbuhan. Pada beberapa

kelompok bobot ikan mengalami penurunan. Hal ini dapat disebabkan oleh

tingginya salinitas air yang menyebabkan osmoregulasi yang dilakukan ikan

sangat tinggi sehingga energi yang didapatkan dari pakan digunakan untuk

metabolisme dan mempertahankan diri bukan untuk pertumbuhan.

Grafik 5. Bobot awal dan Bobot Akhir Pengamatan Kelas

Pengamatan kedua yaitu mengenai pengamatan kualitas air, pada hasil

pengamatan pH (lihat grafik 6) didapatkan bahwa pH berada pada kisaran 6-7.Keadaan pH air antara 5 11 dapat ditoleransi oleh ikan nila, tetapi pH yang

optimal untuk pertumbuhan dan perkembangbiakkan ikan ini adalah 7- 8

(Rukmana, 1997). PH air mempengaruhi tingkat kesuburan perairan karena

mempengaruhi kehidupan jasad renik. Perairan asam kurang produktif malah

dapat membunuh hewan budidaya. Pada pH rendah (keasaman yang tinggi)

kandungan oksigen terlarut berkurang, sebagai akibatnya oksigen menurun,

aktifitas pernapasan naik, serta makan akan berkurang. Hal sebaliknya terjadi

0

2

4

6

8

10

12

14

1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5

Bobot Awal

Bobot Akhir


24/27

24

pada suasana basa. Sebagian besar biota aquatic sensitive terhadap perubahan PH

dan menyukai nilai PH sekitar 7 - 8,5. Nilia PH sangat mempengaruhi proses

biokimia perairan misalnya, proses nitrifikasi akan berakhir jika PH

rendah (Novontny and Olem, 1994 dalam Kordi, 2009).

Grafik 6. pH pengamatan Kelas

Salinitas merupakan salah satu parameter lingkungan yang mempengaruhi

proses biologi dan secara langsung akan mempengaruhi kehidupan organisme

antara lain yaitu mempengaruhi laju pertumbuhan, jumlah makanan yang

dikonsumsi, nilai konversi makanan, dan daya kelangsungan hidup (Andrianto,

2005). Tingkah laku ikan nila ketika diberi salinitas antara 5 ppt sampai 20 ppt

masih normal. Ikan nila juga masih mampu bertahan hidup. Begitu pula dengan

tingkat kelangsungan hidup ikan nila sampai pada 20 ppt masih tinggi. Jika diberi perlakuan dengan media hidup dengan salinitas 20 ppt maka tingkat kelangsungan

hidup ikan nila rendah bahkan 0%. Hal ini menunjukkan bahwa ikan nila hanya

dapat mentolerir salinitas air sampai sekitar 20 ppt. Ini didukung oleh pendapat

William (1979) dalam Anggraeni (2002) yang menyatakan bahwa seluruh

organisme memilki beberapa kisaran salinitas dan apabila kisaran tersebut

terlampaui maka organisme tersebut akan mati atau pindah ke tempat lain.

7.04

6.846.72

6.66

6.13

6.76

6.576.63

6.79

6.51

6.66 6.67

6.57

5.6

5.8

6

6.2

6.4

6.6

6.8

7

7.2

1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5

pH


25/27

25

Dissolved Oxygen (DO) yang terdapat pada hasil pengamatan berkisar

antara 1,5-2,2 mg/L. DO berbanding terbalik dengan salinitas, pada salinitas yang

tinggi, kandungan oksigen terlarutnya rendah, namun pada pengamatan ini

didapatkan hasil bahwa pada salinitas yang tinggi (20 ppt) memiliki kadar DO

yang lebih tinggi dibandingkan dengan salinitas yang lebih rendah. Hal ini bisa

disebabkan oleh adanya penumpukkan amonia ataupun pakan yang terendam

dalam air yang menyebabkan kadar amonia tinggi dan kadar oksigen terlarut

rendah.

Grafik 7. Dissolved Oxygen (DO) hasil Pengamatan Kelas

2.2

1.87 1.81 1.771.9

1.54

1.8

1.56 1.61.78

1.51

1.75 1.82

0

0.5

1

1.5

2

2.5

1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5

Dissolved Oxygen


26/27

26

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

Pemberian media dengan salinitas yang berbeda-beda pada media hidup

ikan nila memberikan hasil pengamatan osmoregulasi yang berbeda-beda

Pada pengamatan sub lethal dan lethal, mukosa yang terdapat pada ikan

semakin hari semakin sedikit, ikan semakin pasif dan buka tutup

operculum bervariasi

Pada pengamatan kualitas air, pH berkisar antara 6-7. Pada kisaran ini ikan

nila dapat hidup dengan baik karena masih dapat mentolerir pH antara 6-8.

Suhu yang didapat berkisar antara 23-25C. Salinitas yang digunkan mulai

dari 0-20 ppt.

Pada salinitas 20 ppt ikan ada yang mengalami kematian, sehingga dapat

diketahui bahwa ikan nila bisa mentolerir salinitas sampai 20 ppt.

DO sangat dibutuhkan untuk proses respirasi dan osmoregulasi. DO yang

tercatat berkisar antara 1,5-2,2 mg/L.

5.2 Saran

Untuk pengamatan lebih lanjut diharapkan dalam pengamatan dilakukan

oleh satu orang saja, karena untuk pengamatan sub lethal setiap orang memiliki

pendapat/ pernyataan yang berbeda-beda.


27/27

DAFTAR PUSTAKA

Anonim.2012.Hubungan Parameter Kualitas Air Dalam Budidaya Ikan Nilahttps://www.academia.edu/3250891/HUBUNGAN_PARAMETER_KUALITAS_AIR_DALAM_BUDIDAYA_IKAN_NILA diakses 19

November 2014 Pukul 22.47 WIB

Anonim.2013.Laporan Praktikum Fisiologi Hewan Airhttp://himbiounpad.files.wordpress.com/2013/06/fisiologi-hewan-air.pdfdiaskes 19 November 2014 Pukul 22.51 WIB

Jenie.2012.Osmoregulasihttp://jeniewulandari.wordpress.com/2012/10/05/osmoregulasi/ diakses19 November 2014 Pukul 22.49 WIB
https://www.academia.edu/3250891/HUBUNGAN_PARAMETER_KUALITAS_AIR_DALAM_BUDIDAYA_IKAN_NILAhttps://www.academia.edu/3250891/HUBUNGAN_PARAMETER_KUALITAS_AIR_DALAM_BUDIDAYA_IKAN_NILAhttp://himbiounpad.files.wordpress.com/2013/06/fisiologi-hewan-air.pdfhttp://jeniewulandari.wordpress.com/2012/10/05/osmoregulasi/http://jeniewulandari.wordpress.com/2012/10/05/osmoregulasi/http://himbiounpad.files.wordpress.com/2013/06/fisiologi-hewan-air.pdfhttps://www.academia.edu/3250891/HUBUNGAN_PARAMETER_KUALITAS_AIR_DALAM_BUDIDAYA_IKAN_NILAhttps://www.academia.edu/3250891/HUBUNGAN_PARAMETER_KUALITAS_AIR_DALAM_BUDIDAYA_IKAN_NILA

osmoregulasi pada ikan nila

Documents