laporan-kerja-praktek

LAPORAN KERJA PRAKTEK

DI UPTBALAI LABORATORIUM KESEHATAN PROVINSI BALI

Oleh:

I Made Ogik Indrawan

NIM. 1203051010

JURUSAN ANALIS KIMIAFAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

UNIVERSITAS PENDIDIKAN GANESHA

TAHUN 2015

i

LEMBAR PENGESAHAN

“Dengan ini dinyatakan bahwa laporan kerja praktek telah sah diselesaikan”,

yang diselenggarakan di

UPT BALAI LABORATORIUM KESEHATAN PROVINSI BALI

Oleh:

I Made Ogik Indrawan NIM. 1203051010

Denpasar, 12 Mei 2015Dosen Pembimbing, Pembimbing Lapangan,

Ni Wayan Martiningsih, S.Si., M.Sc. Dra. Rahmawati B.Apt, M.SiNIP. 198603072008122003 NIP.19640410 199403 2 008

Mengetahui,Dekan FMIPA Undiksha, Ketua Jurusan Analis Kimia,

Prof. Dr. Ida Bagus Putu Arnyana, M.Si Dr. I Made Gunamantha., M.MT

NIP. 19581231 198601 1 005 NIP.19680828 200212 1 001

ii

KATA PENGANTAR

Puji syukur penulis panjatkan kehadiran Shang Hyang Widi Wasa, karena atas Asung

Kerta Nugraha-Nya penulis dapat menyelesaikan Laporan KP tepat pada waktunya.

Laporan ini dibuat sebagai tindak lanjut dari kegiatan KP yang telah dilaksanakan

penulis di UPT Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali. Kegiatan ini bertujuan untuk

mengaplikasikan ilmu yang telah dimiliki, sehingga dalam proses penyelesaian laporan ini

penulis ingin mengucapkan terimakasih kepada:

1. Bapak I Made Gunamantha, S.T., M.T. selaku Ketua Jurusan Analis Kimia,

Universitas Pendidikan Ganesha yang telah memberikan dukungan dan pengarahan

dalam pelaksanaan KP.

2. Ibu Dra. Rahmawati, B, Apt., selaku Kepala Seksi Kimia Lingkungan

Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali, atas bimbingan dan bantuannya.

3. Para staf pegawai khususnya diseksi Kimia UPT Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali, atas bimbingan dan bantuannya.

4. Ibu Ni Wayan Martiningsih, S.Si., M.Sc.selaku dosen pembimbing yang telah

memberikan bantuan, pengarahan, dan dukungannya dalam pelaksanaan KP.

5. Panitia pelaksana KP Jurusan Analis Kimia Universitas Pendidikan Ganesha.

6. Serta semua pihak yang telah membantu, yang tidak dapat disebutkan satu persatu.

Penulis tentunya menyadari bahwa laporan KP ini jauh dari kesempurnaan. Oleh

karena itu penulis mengharapkan kritik dan dan saran yang membangun untuk

kesempurnaan laporan ini. Akhir kata semoga laporan KP ini bermanfaat bagi pembaca.

Singaraja,4 Mei 2015

Penulis

iii

DAFTAR ISI

LEMBAR PENGESAHAN................................................................................................ii

KATA PENGANTAR......................................................................................................iii

DAFTAR ISI.....................................................................................................................iv

DAFTAR TABEL..............................................................................................................v

DAFTAR LAMPIRAN.....................................................................................................vi

BAB I PENDAHULUAN......................................................................................................1

1.1 Latar Belakang..............................................................................................................1

1.2 Tujuan Kerja Praktek....................................................................................................2

1.3 Manfaat.........................................................................................................................2

BAB II PROFIL INSTALASI...............................................................................................3

2.1 UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali.....................................................3

2.2 Sejarah UPT. Balai Laboratorium kesehatan Provinsi Bali.........................................4

2.3 Dasar Hukum UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali..............................4

2.4 Visi dan Misi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali...............................4

2.5 Tugas Pokok dan Fungsi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali.............5

BAB III RINCIAN PELAKSANAAN KERJA PRAKTEK.................................................6

3.1 Waktu Pelaksanaan Kerja Praktek................................................................................6

3.2 Tempat Pelaksanaan Kerja Praktek..............................................................................6

3.3 Hubungan/Interaksi dengan Pembimbing Lapangan dan Staf Pegawai.......................6

3.4 Kegiatan Laboratorium.................................................................................................7

3.5 Metode Analisis............................................................................................................7

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN.............................................................................28

4.1 Laboratorium Kimia Kesehatan.................................................................................28

4.2 Laboratorium Bakteriologi Kesehatan Masyarakat...................................................43

4.3 Permasalahan dan Solusi............................................................................................50

BAB V PENUTUP...............................................................................................................51

5.1 Simpulan.....................................................................................................................51

5.2 Saran...........................................................................................................................51

DAFTAR PUSTAKA..........................................................................................................52

LAMPIRAN.........................................................................................................................53

iv

DAFTAR TABEL

Tabel 3.1 Pengenceran BOD................................................................................................13Tabel 3.2 Pengukuran Logam Berat.....................................................................................17Tabel 3.3 Reaksi biokimia pada media selektif....................................................................27Tabel 4.1 Hasil Pemeriksaan Amoniak................................................................................28Tabel 4.2 Data Volume Titrasi Yang Diperlukan Untuk Uji Kesadahan.............................29Tabel 4.3 Hasil Pemeriksaan Kesadahan.............................................................................29Tabel 4.4 Data Volume Titrasi yang diperlukan untuk uji Klorida.....................................30Tabel 4.5 Hasil Pemeriksaan Klorida...................................................................................30Tabel 4.6 Data Volume Titrasi Yang Di Butuhkan Untuk Zat Organik..............................31Tabel 4.7 Hasil Pemeriksaan Zat Organik...........................................................................32Tabel 4.8 Volume Titrasi Yang Diperlukan Untuk Uji COD..............................................32Tabel 4.9 Hasil Pemeriksaan COD......................................................................................33Tabel 4.10 Hasil Pemeriksaan BOD....................................................................................34Tabel 4.11 Hasil Pemeriksaan Besi......................................................................................35Tabel 4.12 Hasil Pemeriksaan Flourida...............................................................................35Tabel 4.13 Hasil Pemeriksaan TDS.....................................................................................36Tabel 4.14 Hasil Pemeriksaan Detergen..............................................................................36Tabel 4.15 Pengukuran Logam Berat...................................................................................37Tabel 4.16 Hasil Pemeriksaan Logam Berat........................................................................37Tabel 4.17 Hasil Pemeriksaan Nitrat...................................................................................38Tabel 4.18 Hasil Pemeriksaan Nitrit....................................................................................39Tabel 4.19 Hasil Pemeriksaan Sulfat...................................................................................40Tabel 4.20 Hasil Pemeriksaan Phospat................................................................................40Tabel 4.21 Hasil Pemeriksaan Sulfida.................................................................................41Tabel 4.22 Hasil Pemeriksaan Zat Padat Tersuspensi..........................................................41Tabel 4.23 Hasil Pemeriksaan Minyak dan Lemak..............................................................42Tabel 4.24 Hasil Pemeriksaan Kekeruhan...........................................................................42Tabel 4.25 Hasil Pemeriksaan Warna..................................................................................43Tabel 4.26 Daftar Tabel MPN 511.......................................................................................45Tabel 4.27 Daftar Tabel MPN 555.......................................................................................46Tabel 4.28 Hasil Pemeriksaan MPN Air..............................................................................47Tabel 4.29 Hasil Pemeriksaan MPN Makanan....................................................................49Tabel 4.30 Hasil Pemeriksaan Biakan Pada Makanan.........................................................49

v

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran 1. Reagen Yang Digunakan Untuk Masing-masing Parameter

Lampiran 2. Daftar Standar Pemeriksaan Air Minum

Lampiran 3. Daftar Standar Pemeriksaan Air Bersih

Lampiran 4. Daftar Standar Pemeriksaan Air Limbah

Lampiran 5. Daftar Standar Pemeriksaan Kolam Renang

Lampiran 6. Daftar Nilai Kerja Praktek

Lampiran 7. Absensi Mahasiswa

Lampiran 8. Laporan Pemantauan Kerja Praktek

Lampiran 9. Daftar Rencana Kerja

vi

BAB 1. BAB I PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Pengetahuan dan keterampilan yang menjurus pada satu bidang pekerjaan yang

diperoleh melalui pendidikan kejuruan, secara khusus memerlukan media yang bersifat

melatih penerapannya dan memperjelas fungsi yang sebenarnya.Hal ini berkaitan dengan

tuntutan agar secara langsung dapat menerapkan teori-teori dan praktek-praktek yang telah

dikuasai sebagai pengetahuan yang dapat bermanfaat bagi orang banyak.Media yang

diprogramkan untuk hal tersebut adalah Kerja Praktek (KP).Pelaksanaan praktek ini tidak

terbatas pada praktek laboratorium saja tetapi juga praktek pengenalan lingkungan kerja

yang sesungguhnya.KP merupakan salah satu persyaratan akademik yang harus dipenuhi

oleh setiap mahasiswa Jurusan Analis Kimia.Selama menjalani masa studinya mahasiswa

dituntut untuk melaksanakan KP yang merupakan tugas wajib akademik setiap mahasiswa

yang dilaksanakan di suatu perusahaan dalam kurun waktu yang telah ditentukan.

Jurusan Analis Kimia merupakan salah satu jurusan non kependidikan di

Universitas Pendidikan Ganesha.Jurusan Analis Kimia merupakan strata Diploma III yang

memiliki tujuan untuk menghasilkan tenaga kerja professional di bidangnya. Salah satu

cara untuk mencapai tujuan tersebut adalah dengan melaksanakan KP. Melalui KP ini

diharapkan mahasiswa lebih memperdalam kajian teoritis yang telah dipahami, serta lebih

mengenal dunia kerja/usaha yang berhubungan dengan analisis kimia KP ini merupakan

mata kuliah wajib dari jurusan analis kimia yang dilaksanakan pada semester VI dengan

bobot 4 SKS. Dalam hal ini jurusan Analis Kimia memberikan kebebasan mahasiswanya

untuk mencari lokasi dan tempat KP pada instansi-instansi yang terkait dengan analisis

kimia. Salah satu instansi tersebut adalah UPT.Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali.

UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali bertempat di Jalan Angsoka 12,

Denpasar. UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali sebagai tempat KP karena

memiliki fasilitas dan pelayanan yang lengkap salah satunya yaitu Laboratorium Kimia Air

dan Mikrobiologi Kesehatan Masyarakat yang berkaitan dengan mata kuliah yang telah

didapat pada bangku kuliah. Atas dasar tersebut diharapkan dapat meningkatkan

pengetahuan, keterampilan, dan wawasan mahasiswa.

1

1.2 Tujuan Kerja Praktek

Adapun tujuan Kerja Praktek adalah sebagai berikut :

a. Untuk mendapatkan pengalaman kerja dalam rangka menerapkan teori perkuliahan

dalam dunia kerja nyata terutama dalam bidang analisis kimia.

b. Untuk menambah wawasan tentang proses analisis serta jenis pemeriksaan sampel

yang dilakukan di Laboratorium Kimia Kesehatan dan Laboratorium Bakteriologi

Kesehatan Masyarakat,UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

c. Untuk mengetahui peranan Laboratorium Kimia Kesehatan dan Laboratorium

Bakteriologi Kesehatan Masyarakat, UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali

1.3 ManfaatManfaat yang diperoleh dari Kerja Praktek ini adalah sebagai berikut :

1.3.1 Bagi Mahasiswa

a. Mahasiswa mendapatkan pengalaman dalam dunia kerja nyata dalam bidang

pemeriksaan kualitas air.

b. Mahasiswa dapat mengaplikasikan teori pada bangku kuliah dengan dunia kerja.

1.3.2 Bagi Instansi Tempat Kerja PraktekUPT. Balai Laboratoium Kesehatan

Provinsi Bali

a. Dapat mensosialisasikan instansi UPT Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali.

b. Mendapatkan bantuan tenaga sementara.

1.3.3 Bagi Lembaga

a. Dapat mensosialisasikan Jurusan Analis Kimia, Fakultas MIPA, Universitas

Pendidikan Ganesha.

b. Memperoleh input dari mahasiswa sehingga dapat membandingkan keadaan

dunia kerja nyata bagi pengembangan ilmu dan teknologi.

c. Meningkatkan kerjasama dengan UPT Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali.

2

BAB 2. BAB II PROFIL INSTALASI

2.1 UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi BaliPada hakekatnya pelayanan Laboratorium Kesehatan merupakan bagian penting

dalam program dalam pelayanan kesehatan yang pelaksanaannya dilakukan oleh berbagai

tingkat laboratorium baik pemerintah maupun swasta, salah satu diantaranya adalah UPT.

Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali.Balai Laboratoium Kesehatan Provinsi Bali

adalah salah satu laboratorium milik pemerintah yang merupakan laboratorium rujukan

dari laboratorium kesehatan baik yang berstatus pemerintah maupun swasta yang tersebar

di Bali. Peranan UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali tidak dapat dipandang

kecil karena tanpa melalui pemeriksaan laboratorium akan sulit memberikan diagnosa atas

suatu penyakit dan sulit menentukan kualitas air yang sesuai dengan Per.Men.Kes. RI. Hal

ini merupakan salah satu cara untuk mewujudkan kesehatan masyarakat.

Semua ini harus dilakukan secara terpadu, menyeluruh dan

berkesinambungan.Demikian juga mengenai uraian tugasUPT. Balai Laboratorium

Kesehatan Provinsi Bali.Segenap jajaran Laboratorium Kesehatan menyadari bahwa untuk

mewujudkan Bali yang sehat merupakan tugas dan tanggung jawab dari UPT. Balai

Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali , oleh karenanya UPT. Balai Laboratorium

Kesehatan Provinsi Bali selalu berbenah diri untuk meningkatkan sumber daya manusia,

sarana, prasarana maupun peningkatan mutu pelayanan pada masyarakat.

Untuk meningkatkan pengetahuan, keterampilan, wawasan dan disiplin bagi tenaga

UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali dengan menambah mutu pelayanan

laboratorium serta pembinaan IPTEK maka UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali melaksanakan upacara bendera setiap hari, mutasi pegawai, rapat rutin, antara

pemimpin dengan Kepala Seksi dengan Ka.Sub Bag dan Ka.Sub Bag TU serta unsur-unsur

staf ditunjuk sebagai perwakilannya.Disamping itu, mengikutsertakan staf-staf untuk

diklat, lokakarya, seminar dan lain-lain.

Beberapa jenis pemeriksaan yang dapat dilaksanakan di UPT. Balai Laboratorium

Kesehatan Provinsi Bali antara lain :

a. Pemeriksaan Bakteriologi Klinik

b. Pemeriksaan Bakteriologi Kesehatan Masyarakat

c. Pemeriksaan Kimia Kesehatan

d. Pemeriksaan Parasitologi

e. Pemeriksaan Hematologi

3

f. Pemeriksaan Kimia Klinik

g. Pemeriksaan Immunologi

2.2 Sejarah UPT. Balai Laboratorium kesehatan Provinsi Bali

Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali didirikan atas ide dokter I Made

Mardhika yang dibangun pada tahun 1969 dan sudah beroperasi sejak tahun 1971.

Pembangunan Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali dimulai tahun 1969 dan telah

mengalami renovasi pada tahun 1978 dengan penambahan ruangan pemeriksaan kimia dan

toksikologi. Ruang pemeriksaan virology dan ruang pencucuian peralatan dibangun 2

tahun kemudian yaitu pada tahun 1980/1981.

Sejak 2008, UPT.Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali dan mulai tahun

2011 menempati gedung baru di Jalan Angsoka 12 Denpasar (bersebelahan dengan RS

Indera Mata).Penambahan gedung baru yang cukup representatif diharapkan mampu

meningkatkan layanan kepada masyarakat yang membutuhkan layanan cek lab, baik untuk

kebutuhan diagnosa penyakit dalam tahap pengobatan ataupun upaya preventif.

2.3 Dasar Hukum UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

Dasar Hukum UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali adalah sebagai berikut :

a. UU No.23 tahun 1992 tentang Kesehatan.

b. UU No.22 tahun1999 tentang Pemerintahan Daerah.

c. UU No.25 tahun1999 tentang Perkembangan Keuangan Antara Pemerintah Pusat

Dan Pemerintah Daerah.

d. Peraturan Daerah No.4 Tahun 2002 tentang Pembetulan, Susunan Organisasi, dan

Tata Kerja Unit Pelaksana Teknis Dinas.

e. Keputusan Gubernur No.44 Tahun 2002 tentang Uraian Tugas Unit Pelaksana

Teknis Dinas Balai Laboratorium Kesehatan.

2.4 Visi dan Misi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

2.4.1 Visi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

Menjadi Laboratorium Kesehatan yang memberikan pelayanan prima menuju Bali

Mandrara

2.4.2 Misi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

a. Memberikan pelayanan laboratorium kesehatan yang bermutu dan terjangkau.

b. Meningkatkan mutu sumber daya manusia serta sarana dan prasarana laboratorium.

4

c. Mendorong kemandirian masyrakat untuk hidup sehat.

2.5 Tugas Pokok dan Fungsi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

2.5.1 Tugas Pokok UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

Sesuai dengan keputusan Gubenur Bali No.44 tahun 2002 Bab.II, pasal 3 : UPT.

mempunyai tugas pokok melaksanakan pemeriksaan secara laboratorium di bidang

pelayanan kesehatan sesuai dengan peraturan perundang-undangan yang berlaku.

2.5.1 Fungsi UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

Untuk melaksanakan tugas pokok tersebut Unit Pelayanan Teknis Dinas Balai

Laboratorium Kesehatan mempunyai fungsi sebagai berikut.

a. Melaksanakan pemeriksaan laboratorium yang meliputi pemeriksaan Mikrobiologi,

Imunologi, Kimia dan Patologi.

b. Melaksanakan sistem rujukan.

5

BAB 3. BAB III RINCIAN PELAKSANAAN KERJA PRAKTEK

3.1 Waktu Pelaksanaan Kerja Praktek

Kegiatan KP mahasiswa Jurusan Analis Kimia di Balai Laboratorium Kesehatan

Provinsi Bali dilaksanakan selama dua bulan yaitu mulai tanggal 2 Maret sampai dengan 2

Mei 2015 setiap hari Senin-Sabtu dari pukul 08.00-14.00 Wita, kecuali hari Jumat

dilaksanakan pada pukul 07.30-11.00 Wita dan hari Sabtu 08.00-13.00 Wita. Sebelum

pelaksanaan KP dimulai mahasiswa Jurusan Analis Kimia diberikan pembekalan yang

bertujuan untuk memberikan bekal awal yang nantinya dipakai sebagai dasar dan pedoman

bagi mahasiswa saat pelaksanaan KP.

3.2 Tempat Pelaksanaan Kerja Praktek

Pelaksanaan KP bertempat di UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali

yang berlokasi di Jalan Angsoka No. 12 Denpasar. UPT. Balai Laboratorium Kesehatan

Provinsi Bali memiliki beberapa laboratorium diantaranya laboraotium Mikrobiologi,

Kimia Kesehatan dan Pataologi Klinik.Namun, pada program KP tahun ini hanya

dilaksanakan di dua laboratorium, yaitu laboratorium Kimia Kesehatan dan Bakteriologi

Kesehatan Masyarakat

3.3 Hubungan/Interaksi dengan Pembimbing Lapangan dan Staf Pegawai

Di Laboratorium Kimia Lingkungan UPT BLK Propinsi Bali, mahasiswa yang

melakukan KP dibimbing oleh seorang pembimbing lapangan yang bernama Ibu Dra.

Rahmawati, B, Apt.,Interaksi antara mahasiswa dengan pembimbing lapangan serta staf

pegawai UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali selama melakukan KP terjalin

dengan sangat baik. Ini dibuktikan dengan banyaknya masukan-masukan yang diberikan

oleh staf di sana serta sering diadakannya diskusi pada berbagai kesempatan. Selain itu,

Pembimbing lapangan dan staf pegawai juga sangat ramah terhadap mahasiswa peserta

KP, sehingga mahasiswa tidak merasa takut bertanya kepada Pembimbing lapangan dan

staf di Laboratorium Kimia Lingkungan dan Laboratorium Kesehatan Masyarakat.

6

3.4 Kegiatan Laboratorium

Pelaksanan pemeriksaan Laboratorium di UPT. Balai Laboratorium Kesehatan

Provinsi Bali dilaksanakan untuk :

a. Mendukung program kesehatan yaitu program pelayanan kesehatan masyarakat,

program kesehatan rujukan dan rumah sakit, program pencegahan dan

pemberantasan penyakit, program penyediaan dan pengolahan air bersih, program

penyehatan lingkungan pemukiman.

b. Melayani permintaan masyarakat untuk pemeriksaan laboratorium kesehatan

masyarakat yang terdiri dari pemeriksaan di bidnag kimia klinik, hematologi,

parasitologi, imunologi, mikrobiologi dan kimia lingkungan.

3.5 Metode Analisis

Pemeriksaan yang dilakukan di UPT.Balai Laaboratorium Kesehatan Provinsi Bali

menggunakan metode analisis yang tertera pada PERMENKES RI dan menyesuaikan

dengan kepurluan masing-masing laboratorium penguji. Berikut akan dijelaskan tentang

prosedur pengambilan sampel dan pemeriksaan sampel yang dilaksananakan di

Laboratorium Kimia Kesehatan dan Laboratorium Bakteriologi Kesehatan Masyarakat.

3.5.1 Prosedur Kerja di Laboratorium Kimia Kesehatan Provinsi Bali

3.5.1.1 Pengambilan Sampel

Bahan dan alat yang perlu disiapkan sebelum pengambilan sampel ke lokasi antara

lain : botol steril, tisu, alkohol, pinset, korek api, label, alat tulis, dan surat

pengantar sampel air bakteriologi. Cara pengambilan sampel air sebagai berikut :

1. Air Kran

Kran dibersihkan dari setiap benda yang menempel yang mungkin dapat

mengganggu (seperti kotoran dan debu) dengan menggunakan kain bersih,

kemudian kran diputar hingga air mengalir secara maksimal dan dibiarkan mengalir

selama 1-2 menit. Selanjutnya tali pengikat dibuka dan kertas pembungkus botol

juga dibuka. Sambil tutup dipegang, air kran ditampung hingga ¾ bagian botol

agar air dapat dikocok sebelum dianalisa. Suhu air dicatat. Selanjutnya botol

ditutup dengan rapat, diberi label dan dimasukkan ke dalam cool box.

2. Air Sumur

Tutup botol dibuka, kemudian water sampler digunakan untuk mengambil sampel

air sumur, kemudian dengan posisi mulut botol menghadap ke atas botol diulurkan

7

ke dalam sumur secara perlahan-lahan, jangan sampai botol menyentuh dinding

sumur. Seluruh permukaan botol dicelupkan ke dalam air sumur hingga mencapai

dasar. Setelah penuh dengan air botol ditarik dan dituangkan hingga ¼ bagian dari

air yang ada dalam botol tersebut, suhu air dicatat dan botol ditutup kembali.

Selanjutnya botol diberi label dan dimasukkan ke dalam cool box.

3. Air dari sumber air terbuka seperti danau dan sungai

Botol dipegang pada bagian bawah kemudian dicelupkan ke dalam air hingga

mencapai kedalaman ±20 cm dengan leher botol yang menghadap miring ke

bawah, kemudian botol diangkat dengan mulut botol menghadap ke atas. Mulut

botol diusahakan berhadapan dengan arah aliran air. Setelah botol terisi penuh,

botol ditutup kembali. Selanjutnya botol diberi label dan dimasukkan ke dalam cool

box.

3.5.1.2 Penanganan dan Pengambilan Sampel

Pengiriman spesimen dilaksanakan secepatnya dalam waktu kurang dari 24

jam.Sebelum dikirim, sampel air disimpan dalam refrigerator.

Apabila perjalanan diperkirakan akan memakan waktu lebih dari 3 jam,

spesimen harus dikirim dalam suasana dingin, pada suhu 4 – 100C. Sampel air

yang akan dikirim, harus dikemas terlebih dahulu. Wadah sampel air diberi label

yang mencantumkan nama sampel, alamat yang dituju dengan jelas. Pengiriman

spesimen dilakukan dengan memperhatikan sungguh- sungguh syarat pengiriman

spesimen, dan dalam pengiriman spesimen, diperlukan surat pengantar.

Pemeriksaan sampel air terdiri dari 2 pemeriksaan yaitu pemeriksaan

Kimia dan Pemeriksaan Fisika.

A. Pemeriksaan Kimia

Pemeriksaan Kimia yang dilaksanakan untuk pemeriksaan sampel air, sebagai

berikut.

1. Amoniak

a. Prinsip :

Pembentukan kompleks yang ditandai oleh perubahan warna kuning –

coklat antara ion ammonium dengan larutan Nessler. Warna yang muncul

8

kemudian diukur absorbansinya menggunakan spektrofotometer dengan panjang

gelombang 400-425 nm.

b. Metode : Spektrofotometri

c. Alat dan Bahan :

Alat dan bahan yang digunakan yaitu,1 buah pipet volume 25 ml, 1 buah

pipet ukur 10 ml, 1 buah pipet ukur 5 ml, tabung Nessler, spektrofotometer, ball

pipet, sampel air yang akan diuji, larutan K.Na Tartrat 5%, larutan Nessler.

d. Prosedur Kerja :

Sampel sebanyak 25 mL diambil dengan menggunakan pipet volume 25

mL, dan dimasukkan ke dalam tabung Nesler. Kemudian ditambahkan 1 mL

larutan K.Na Tartrat 5% dan 0,5 mL larutan Nessler. Penambahan K-Na tartrat

dimaksudkan untuk menghilangkan pengaruh akan kehadiran ion Cl- dan Mg2+

dalam air.Diamkan 10 – 30 menit agar terjadi reaksi sempurna pembentukan

warna.Setelah didiamkan selama 10- 30 menit, dibaca absorbansinya dengan

panjang gelombang 400 – 425 nm. Jika sampel yang diperiksa berupa air limbah

yang pekat dan berbau, maka perlu dilakukan pengenceran.

2. Kesadahan

a. Prinsip :

Bila etilendiamin tetra asam asetat(EDTA) dan garam Natriumnya

ditambahkan ke dalam suatu larutan dari kation logam tertentu, maka akan

membentuk kompleks khelat yang mudah larut. Bila sejumlah kecil zat warna

seperti Eriochrome Black T atau Calmagite ditambahkan pada larutan air yang

mengandung ion kalsium dan magnesium pada pH 10,0 ± 0,1 maka larutan akan

menjadi berwarna merah anggur. Apabila Ethylene Diamine Tetra Acetic Acid

(EDTA) ditambahkan pada larutan tersebut, kalsium dan magnesium

akandikomplekskan, maka larutan akan berubah dari merah anggur menjadi biru

menandakan titik ekivalen titrasi. Reaksinya adalah sebagai berikut:

Ca2+ + EBT Ca2+ EBT

Ca2+ EBT + EDTA Ca2+ EDTA

b. Metode : Titrimetri

9

c. Alat dan Bahan :

Alat dan bahan yang digunakan yaitu, 1 buah pipet volume 50 mL, 1 buah

pipet ukur 5 mL, 1 buah Erlenmeyer 250 mL, 1 buah buret 50 mL, ball pipet,

sampel air yang akan diuji, indikator EBT, Buffer Hardness, EDTA

d. Prosedur Kerja :

Sebanyak 50 mL sampel dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 250 mL.

Kemudian ditambahkan 2 mL larutan buffer hardness dan indicator EBT

secukupnya , larutan menjadi berwarna kemerahan. Setelah itu dititrasi dengan

EDTA secara perlahan hingga menghasilkan warna biru yang stabil. Volume

titrasi dicatat, kemudian dilakukan perhitungan untuk memperoleh hasil

pemeriksaan. Perhitungan untuk memperoleh hasil pemeriksaan kesadahan

sebagai berikut :

mg/L = Volume titrasi x Faktor (EDTA) x 1000

Volume sampel yang diambil

Keterangan : Faktor EDTA : 1,015

3. Klorida

a. Prinsip :

Dalam larutan netral atau sedikit basa, kalium kromat dapat menunjukkan

titik akhir titrasi Klorida dengan perak nitrat (AgNO3).Perak klorida yang

terbentuk diendapkan secara kuantitatif sebelum warna merah perak kromat

terbentuk.

b. Metode : Argentometri

c. Alat dan Bahan :

Alat dan bahan yang digunakan yaitu,1 buah pipet volume 50 ml, 1 buah

pipet ukur 5 mL, 1 buah erlenmeyer 250 mL, 1 buah buret 50 mL, ball pipet,

sampel air yang akan diuji, larutan K2CrO4, titran baku AgNO3.

d. Prosedur Kerja :

Sebanyak 50 mL sampel dimasukkan kedalam Erlenmeyer 250 mL dan

ditambahkan 1 mL larutan K2CrO4. Kemudian dititrasi dengan titran baku

AgNO3hingga terbentuk warna kuning kemerahan/merah bata.Perhitungan untuk

memperoleh hasil pemeriksaan klorida sebagai berikut :

mg/L= Volume titran x faktor AgNO3 x BM Cl- x 1000


10

Keterangan : Faktor AgNO3 = 0,0188

BM Cl- = 35,45

4. Zat Organik

a. Prinsip :

Zat organik (ZO) dapat dioksidasi dengan KMnO4 dalam suasana asam dan

pemanasan.Sisa KMnO4 direduksi oleh asam oksalat berlebih.Kelebihan asam

oksalat dititrasi dengan KMnO4 kembali.

b. Metode : Titrimetri

c. Alat dan Bahan :

Alat dan bahan yang digunakan yaitu,1 buah pipet volume 50 mL, 1 buah

pipet ukur 10 mL, 1 buah Erlenmeyer 250 mL, 1 buah buret 50 mL, ball pipet,

pemanas/kompor listrik, sampel air yang akan diuji, larutan H2SO4 4 N, larutan

KMnO4 0,01 N, larutan H2C2O4 0,01 N.

d. Prosedur Kerja :

Sebanyak 50 mL sampel dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 250 mL

kemudian ditambahkan 10 mL H2SO4 4 N dan 10 mL KMnO4 0,01 N . Campuran

tersebut dipanaskan dan dibiarkan mendidih selama ± 10 menit.Setelah itu

ditambahkan asam oksalat 10 mL dan dipanaskan hingga warna KMnO4 hilang,

kemudian dititrasi kembali dengan KMnO4 0,01 N dalam keadaan panas hingga

terbentuk warna merah muda.Perhitungan untuk memperoleh hasil pemeriksaan

zat organik sebagai berikut :

mg/L = [ (10 + a) x f – 10 ] x 0,316 x 1000

b

keterangan : a : Volume dari KMnO4 yang digunakan

b : Volume sampel

c : faktor dari KMnO4 0,01 N (1)

5. COD

a. Prinsip :

Kebutuhan oksigen kimiawi digunakan untuk menentukan banyaknya

oksigen yang sesuai dengan kandungan kadar zat organik dalam contoh yang dapat

dioksidasi oleh oksidator kuat. Kebanyakan zat- zat organik terurai pada

pemanasan dengan campuran kalium bikromat dan asam sulfat.

11

b. Metode : Titrimetri (Refluk Tertutup)

c. Alat dan Bahan :


tabung COD, 7 buah batu didih, COD reactor, ball pipet, 2 buah pipet ukur 5 mL,

1 buah Erlenmeyer, sampel air yang akan diuji, larutan AgSO4 . H2SO4 ,larutan

K2CrO7 0,025 N, Indikator Ferroin, larutan FAS (Ferro Ammonium Sulfat).

d. Prosedur Kerja :

1) Standarisasi FAS

Sebanyak 18 mL aquadest dimasukkan ke dalam Erlenmeyer dan

ditambahkan 3 mL asam sulfat, kemudian ditambahkan 2 mL K2CrO7 dan 3 tetes

indikator ferroin. Campuran tersebut kemudian di titrasi dengan larutan Ferro

Ammonium Sulfat (FAS) hingga berwarna merah bata. Volume yang di peroleh di

catat, kemudian dicari normalitas FAS, dengan menggunakan rumus:

N1.V1 = N2.V2

2) Pemeriksaan COD

Tabung COD dicuci dengan H2SO4 20% sebelum digunakan untuk

mencegah kontaminasi, kemudian dimasukkan 2 mL sampel ke dalam tabung

COD dan ditambahkan 3 mL reagen sulfat, 2 mL K2CrO7 0,025 N dan juga batu

didih. Botol COD kemudian ditutup dan dikocok hingga homogen.Kemudian

tabung COD dimasukkan ke dalam COD reactor dan dipanaskan pada suhu 1500C

selama 2 jam.Setelah itu didinginkan dan dimasukkan kedalam Erlenmeyer.

Campuran kemudian ditambahkan 3 tetes indicator ferroin dan dititrasi dengan

larutan FAS 0,025 N hingga terjadi perubahan warna dari hijau, menjadi biru,

kemudian menjadi coklat kemerahan / merah bata.

6. BOD

a. Prinsip :

Kebutuhan oksigen biokimia (BOD) adalah jumlah oksigen yang

dibutuhkan untuk menguraikan zat organik secara biokimia selama inkubasi

dalam waktu tertentu. Penentuan BOD pada dasarnya adalah pengukuran selisih

kadar oksigen terlarut segera (DO) dan kadar oksigen terlarut sesudah inkubasi 5

hari pada suhu 20°C (DO5)

b. Metode :Winkler

12

c. Cara Kerja :

1) Pengenceran sampel : sebelum melakukan pengenceran, diukur dahulu DO

segera dari sampel. Penentuan DO segera dilakukan dengan cara sampel

segera diperiksa dengan memindahkan sampel kedalam botol winkler dan

ditambahkan 1 mL MnSO4 dan 1 mL Alkali Iodida. Diamkan beberapa saat

hingga terjadi proses pengendapan. Tmbahkan 1 mL H2SO4 dan dikocok,

kemudian sampel dititrasi dengan menggunakan Natrium Tiosulfat. Volume

titrasi yang diperoleh kemudian dihitung dengan menggunakan rumus

berikut:

DO 0 =Vol. Titrasi x N NatriumTiosulfat x 8 x1000

Vol Sampel

Dari hasil pemeriksaan DO segera digunakan sebagai besarnya pengenceran

yang harus dilakukan.Pengenceran dapat dilakukan langsung dalam botol

BOD atau dalam gelas ukur, kemudian dipindahkan dalam botol

BOD.Untuk jumlah pengenceran dapat dilihat dalam tabel 3.1

Tabel 3.1 Pengenceran BOD

DO air kotor segera mg/O2 n x tingkat pengenceran8,0 – 9,0 1 X6,0 – 8,0 2 – 5 X5,0 – 6,0 5 – 10 X3,0 – 5,0 10 – 15 X1,0 – 3,0 15 – 20 X0,0 – 1,0 20 – 25 X0,0 – 0,1 25, 30, 50, 100 X

(sumber : Depkes RI pusat laboratorium kesehatan,1991)

2) Pembuatan Air Pengencer

Pebuatan air pengecer dilakukan dengan perbandingan 1:1.Pembuatan air

pengencer 1 Litter dilakukan dengan penambahan masing-masing 1 mL

CaCl2, FeCl2, Dapar Fosfat dan MgSO4 dalam 1 Litter aquades, kemudian

diaerasi minimal 30 menit.

3) Pengenceran dalam botol BOD

Isi botol BOD diukur terlebih dahulu.Contoh diukur dengan pipet volume

sesuai dengan pengenceran, masukkan ke dalam botol yang telah diketahui

isinya, tambahkan air pengencer. Penentuan DO segera = DO mula-mula –

DO0 hari.

13

4) Penentuan DO 5

Penentuan DO5 ditentukan dengan mengikubasi sampel yang telah

diencerkan pada suhu 20°C ± 1°C.Setelah 5 hari sampel diperiksa DO5nya.

Penentuan DO5 dilakukan dengan menambahkan 1 mL MnSO4 dan 1 mL

Alkali Iodida dan diamkan beberapa saat hingga terjadi proses

pengendapan. Tmbahkan 1 mL H2SO4 dan dikocok, kemudian sampel

dititrasi dengan menggunakan Natrium Tiosulfat. Dari volume titrasi yang

diperoleh kemudian ditentukan DO5 dari sampel dengan menggunakan

perhitungan sebagai berikut:

DO 0 =Vol. Titrasi x N NatriumTiosulfat x 8 x1000

Vol Sampel

5) Penentuan BOD

Nilai BOD dari sampel diperoleh dari hasil penentuan DO0 dan DO5.Berikut

merupakan rumus untuk menentukan nilai BOD.

Perhitungan :

BOD = ( D0−D 5 )−( Selisih AP ) xFaktor Pengenceran

P

Keterangan : D1 = Nilai DO0 (mg/L)

D2 = Nilai DO5 (mg/L)

P = Faktor hubungan waktu dengan suhu

7. Besi

a. Prinsip :

Zat pada besi (Fe(OH)3, Fe2O3) yang dipanaskan dalam suasana asam dan

adanya hidroksilamin direduksi menjadi ion Ferro. Ferro dengan Fenantrolin pada

pH 3,2- 3,3 membentuk senyawa khelat Ferro-Fenantrolin yang berwarna merah

jingga, reaksinya adalah sebagai berikut :

+ Fe2+

14

Warna yang terbentuk dibandingkan dengan warna baku yang sudah diketahui

kadarnya secara spektrofotometri pada panjang gelombang 510 nm. Kadar

maksimum yang dapat diukur yaitu 10 µg/L.

b. Metode : Fenantrolin

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 25 mL sampel ditambahkan dengan 1 mL HCl pekat dan 0,5

Hidroksilamin. Kemudian dipanaskan sampai volume larutan ± 15 mL, larutan

tersebut kemudian didinginkan. Pengenceran dilakukan dengan menggunakan

aquades hingga volume 25 mL, setelah itu ditambahkan larutan buffer Fe

sebanyak 5 mL dan 2 mL fenontrolin. Larutan dimasukkan kedalam kuvet dan

diukur serapannya menggunakan spektrofotometer dengan panjang gelombang

510 nm.

8. Flourida

a. Prinsip :

Ion zirkonium dengan alizarin membentuk senyawa zirconium alizarin yang

berwarna kemerah-merahan dengan adanya ion fluorida, maka intensitas warna

akan berkurang karena terbentuknya ion kompleks ZrF62-. Pengurangan intensitas

warna sebanding dengan kadar ion fluorida dan dapat diukur secara visual atau

secara spektrofotometri pada panjang gelombang 520-550 nm.

b. Metode : Alizarin

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 10 mL sampel dan blanko dalam erlenmeyer, masing-masing

ditambahkan 2 mL reagen Spands Reagen For Fluoride, dan dikocok, kemudian

larutan dituang kedalam kuvet dan diukur serapannya dengan spektrofotometer

pada panjang gelombang 580 nm.

9. Jumlah Zat Padat Terlarut (TDS)

a. Prinsip : -

b. Metode : Elektroda

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 100 mL sampel dimasukkan ke dalam erlenmeyer kemudian

elektroda dimasukkan ke dalam sampel dan hasilnya dicatat.

15

10. Uji Detergen

a. Prinsip :

Senyawa aktif methylen biru (MBAS) Methylene Blue Aktife Substances,

memindahkan senyawa biru methylen dari larutan ke dalam suatu organik.Terjadi

pembentukan pasangan ion antara anion senyawa aktif methylen blue dan kation

methylen blue.Jadi warna biru yang dihasilkan dalam lapisan organik diukur

sebagai senyawa aktif methylen blue.

b. Metode : Methylene blue

c. Alat dan Bahan :


gelas ukur, 1 buah pipet ukur 10 mL, 1 buah pipet ukur 50 mL, labu ukur 50 mL, 2

buah pipet ukur 5 mL, sampel air yang akan diuji, koroform, larutan methylen blue,

larutan pencuci.

d. Prosedur Kerja :

Sebanyak 100 mL sampel diambil dan dimasukkan kedalam gelas ukur

kemudian ditambahkan 2 mL metylen blue dan 10 mL kloroform. Setelah itu

dikocok selama ± 30 detik.Apabila terbentuk endapan biru, maka hasilnya

positif.Larutan kemudian disaring hingga menghasilkan residu dan filtrat. Residu

hasil penyaringan tersebut kemudian dicuci dengan 50 mL ammonium hydrogen

fosfat , sedangkan filtratnya diekstraksi sebanyak dua kali dengan kloroform. Hasil

dari pencucian residu dan ekstraksi filtrat kemudian dicampur dan diencerkan

kembali menjadi 100 mL dan dibaca absorbansinya dengan menggunakan

spektrofotometer dengan panjang gelombang 625 nm.

11. Logam Berat

a. Prinsip :

Metode ini didasarkan pada pengukuran serapan dari radiasi optikal oleh

atom dalam keadaan gas, dimana teknik ini digunakan untuk pengukuran secara

kualitatif dari elemen dalam sebuah sampel.Fungsi penambahan asam nitrat pada

analisis logam berat ini bertujuan untuk melarutkan analit logam dan

menghilangkan zat- zat pengendap yang terdapat dalam sampel uji pada sampel air

dengan bantuan pemanas listrik yang kemudian diukur dengan AAS menggunakan

16

gas asetilen (C2H2). Untuk panjang gelombang setiap pemeriksaan logam berat

dapat dilihat pada tabel 3.2

Tabel 3.2 Pengukuran Logam Berat

Logam BeratPanjang Gelombang

(nm)Cu 324,8Zn 213,9Pb 283,3Cd 228,8


b. Metode : AAS

c. Alat dan Bahan :

Alat dan bahan yang digunakan yaitu, beker gelas 100 mL, pipet volume 50

mL, pipet ukur 5 mL, pemanas listrik, batu didih, sampel air yang akan di uji, asam

nitrat, akuades.

d. Prosedur Kerja :

Sebanyak 50 mL sampel dimasukkan ke dalam gelas beker 100 mL yang

telah diisi dengan batu didih. Kemudian dilakukan penambahan asam nitrat

sebanyak 2,5 mL lalu dipanaskan hingga volumenya menjadi 5mL. Setelah itu

didinginkan dan di encerkan kembali dengan cara menambahkan aquades hingga

volume kembali mencapai 50 mL. Dibaca dengan AAS.

12. Nitrat

a. Prinsip :

Ion nitrat direaksikan dengan Brusin dalam larutan asam sulfat membentuk

warna kuning yang dapat diukur serapannya secara spektofotometri pada panjang

gelombang 410 nm

b. Metode : Brusin

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 10 mL sampel dimasukkan ke dalam erlenmeyer 50 mL

kemudian ditambahkan 2 mL larutan NaCl. Larutan dimasukkan kedalam penangas

air dingin dan ditambahkan 10 mL larutan H2SO4 dan dibiarkan sampai dingin.

Setelah dingin, ditambahkan larutan brusin asam sulfanilat dan diaduk. Larutan

dipanaskan diatas penangas air pada suhu tidak lebih dari 95°C selama 20 menit

17

dan setelah itu didinginkan. Larutan dituangkan kedalam kuvet dan serapannya

diukur pada spektrofotometer pada panjang gelombang 410 nm.

13. Nitrit

a. Prinsip :

Ion nitrit dalam suasana asam pada pH 2-2,5 bereaksi dengan sulfanilamid

yang di azotisasikan dengan N-(1naftil)-etilendiamin dihidroklorida membentuk

warna ungu kemerahan. Warna yang terbentuk diukur serapannya diukur dengan

spektrofotometer pada panjang gelombang 543 nm.

b. Metode : Kalorimetri

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 50 mL sampel dalam erlenmeyer 100 mL ditambanhkan dengan 2

mL reagen.Kemudian ditunggu selama 10 menit-2 jam.Larutan diukur serapannya

pada spektofotometer pada panjang gelombang 543 nm.

14. Sulfat

a. Prinsip :

Ion sulfat diendapkan dalam suatu medium asam asetat dengan barium

klorida sehingga terbentuk kristal barium sulfat dengan ukuran yang sama.

Reaksinya adalah sebagai berikut :

SO42- + Ba+ BaSO4

Serapan suspensi barium sulfat diukur dengan spektrofotometer dan konsentrasi ion

sulfat ditetapkan dengan membandingkannya dengan kurva kalibrasi

b. Metode : Turbidimetri

c. Prosedur Kerja :

Sampel sebanyak 25 mL ditambahkan buffer sulfat sebanyak 5 mL dan

BaCl2 sebanyak 0,05 gram kemudian diaduk dan serapannya diukur dengan


Perhitungan :

C= Hasilpembacaanstandar

X faktor sulfat

15. Phospat

a. Prinsip :

18

Pada larutan ortophosfat dalam suasana asam bereaksi dengan Ammonium

Molybdat menjadi Molybdofosforic acid. Dengan adanya vanadium akan terjadi

vanadomolybdofosforic acid yang berwarna kuning, intensitas warna ini

menunjukkan adanya fosfat.

b. Metode :vanadomolybdofosforic acid-kolorimetri.

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 25 mL sampel ditambahkan 1 mL H2SO4 (1:1) dan 0,5 gram

kaliumperoxodisulfat, kemudian dipanaskan sampai volume yang tersisa ± 15 mL

dan didinginkan. Diencerkan dengan menggunakan akuades hingga volume 25 mL

setelah itu ditambahkan 5 mL reagen Buffer Phosfat, kemudian diukur dengan


16. Sulfida

a. Prinsip :

Metode ini berdasarkan atas reaksi sulfida, asam sulfat dan potassium

dikhromat yang menghasilkan warna biru metil.Intensitas warna yang terbentuk

diukur dengan spektrofometer pada panjang gelombang 665 nm dengan lintasan

cahaya 1 cm.


c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 25 mL sampel ditambahkan reagen I sebanyak 3 tetes dan reagen

II sebanyak 3 tetes dan diaduk, setelah itu dibaca serapannya dengan


17. Zat Padat Tersuspensi (TSS)

a. Prinsip :

Sampel yang telah dihomogenkan diukur serapannya pada spektrofotometer

dengan panjang gelombang 810 nm.

b. Metode : Photometrik

c. Prosedur Kerja :

Sebanyak 100 mL dimasukkan ke dalam blender dan diputar selama 2

menit, Kemudian larutan dimasukkan ke dalam kuvet dan diukur dengan

spektrofotometer dengan panjang gelombang 810 nm.

19

18. Minyak & Lemak

a. Prinsip :

Identifikasi minyak dan lemak pada air limbah dilakukan dengan

menghitung massa dari lemak yang terdapat setelah ekstraksi sampel menggunakan

n-hexana dan diuapkan.

b. Metode : Gravimetri

c. Alat dan bahan : Cawan porselin, corong pemisah, corong pisah, kertas saring, n-

hexana

d. Prosedur kerja :

Cawan porselin yang akan digunakan ditimbang terlebih dahulu untuk

memperoleh massa cawan kosong. Kemudian masukkan 50 mL sampel ke dalam

corong pisah dan ditambahkan 20 mL n-hexana lalu dikocok hingga homogen. Saat

terbentuk dua lapisan, lapisan atas dan bawah dipisahkan dengan cara ekstraksi.

Ekstraksi dilakukan minimalkan sebanyak 3 kali. Setelah diekstraksi, uap dari

filtrat diuapkan, apabila air sudah hilang dari cawan porselin, keberadaan minyak

dan lemak dicek dengan cara meraba cawan porselin. Apabila terasa licin maka

terdapat minyak dan lemak dalam sampel. Untuk mengetahui massa dari lemak

tersebut, cawan porselin yang sudah diuapkan kemudian ditimbang kembali dan

hasilnya dikurangi dengan massa cawan kosong.

B. Pemeriksaan Fisika

Pemeriksaan Kimia yang dilaksanakan untuk pemeriksaan sampel air, sebagai

berikut.

1. Kekeruhan

a. Prinsip :

Pengukuran kekeruhan dengan kemampuan mengukur baik menggunakan detektor

cahaya terpencar 900 atau menggunakan set detektor (rasio) yang lengkap.

b. Metode : Spektrofotometer

c. Alat dan Bahan :

20

Alat dan bahan yang digunakan yaitu, kuvet, spektrofotometer, sampel yang akan

diuji.

d. Prosedur Kerja :

Sampel dimasukkan kedalam kuvet hingga mencapai batas, kemudian diukur

menggunakan alat spektrofotometer dan dicatat hasilnya.

2. Warna

a. Prinsip :

Pemeriksaan warna dilakukan dengan membandingkan warna dari contoh

dengan larutan baku warna dengan diukur dengan spektrofotometer.


c. Prosedur Kerja :

Sampel dan blanko diambil sebanyak 10 mL dan dimasukkan ke dalam

kuvet, dan diukur serapannya dengan spektrofotometer dengan panjang gelombang

425 nm.

3.6.2 Prosedur Kerja di Laboratorium Bakteriologi Kesehatan Masyarakat

3.6.2.1 Pengambilan sampel

Bahan dan alat yang perlu disiapkan sebelum pengambilan sampel ke lokasi antara

lain : botol steril, tisu, alkohol, pinset, korek api, label, alat tulis, dan surat

pengantar sampel air bakteriologi. Cara pengambilan sampel air sebagai berikut :

1. Air Kran

Kran dibersihkan dari setiap benda yang menempel yang mungkin dapat

mengganggu (seperti kotoran dan debu) dengan menggunakan kain bersih,

kemudian kran diputar hingga air mengalir secara maksimal dan dibiarkan mengalir

selama 1-2 menit. Selanjutnya mulut kran disterilkan dengan cara membakar

dengan kapas yang telah dicelupkan dalam alkohol 70%, kemudian tali pengikat

dibuka dan kertas pembungkus botol juga dibuka. Sambil tutup dipegang, air kran

ditampung hingga ¾ bagian botol agar air dapat dikocok sebelum dianalisa. Suhu

air dicatat. Selanjutnya botol ditutup dengan rapat, diberi label dan dimasukkan ke

dalam cool box.

2. Air Sumur

21

Bungkus botol yang telah steril dibuka dan dibilas dengan alkohol 70%, kemudian

botol diikat dengan tali untuk mengambil air di dalam sumur. Dengan posisi mulut

menghadap ke atas, botol tersebut diulurkan ke dalam sumur secara perlahan-lahan,

jangan sampai botol menyentuh dinding sumur. Seluruh permukaan botol

dicelupkan ke dalam air sumur hingga mencapai dasar. Setelah penuh dengan air

botol ditarik dan dituangkan hingga ¼ bagian dari air yang ada dalam botol

tersebut, suhu air dicatat dan botol ditutup kembali. Selanjutnya botol diberi label

dan dimasukkan ke dalam cool box.

3. Air dari sumber air terbuka seperti danau dan sungai

Botol dipegang pada bagian bawah kemudian dicelupkan ke dalam air hingga

mencapai kedalaman ±20 cm dengan leher botol yang menghadap miring ke

bawah, kemudian botol diangkat dengan mulut botol menghadap ke atas. Mulut

botol diusahakan berhadapan dengan arah aliran air. Setelah botol terisi penuh,

botol ditutup kembali. Selanjutnya botol diberi label dan dimasukkan ke dalam cool

box.

3.6.2.2 Penanganan dan Pengiriman Sampel

Pengiriman spesimen dilaksanakan secepatnya dalam waktu kurang dari 24

jam.Sebelum dikirim, sampel air disimpan dalam refrigerator.

Apabila perjalanan diperkirakan akan memakan waktu lebih dari 3 jam,

spesimen harus dikirim dalam suasana dingin, pada suhu 4 – 100C. Sampel air

yang akan dikirim, harus dikemas terlebih dahulu. Wadah sampel air diberi label

yang mencantumkan nama sampel, alamat yang dituju dengan jelas. Pengiriman

spesimen dilakukan dengan memperhatikan sungguh- sungguh syarat pengiriman

spesimen, dan dalam pengiriman spesimen, diperlukan surat pengantar.

Pemeriksaan yang dilakukan berupa pemeriksaan Most Probable Number

(MPN). Pemeriksaan ini dapat dilakukan untuk pemeriksaan kualitas air minum,

air bersih, air badan air, air pemandian umum, air kolam renang. Bahan yang

digunakan untuk pemeriksaan ini adalah media Lactose Broth (LB), dan media

Brilliant Green Lactose Bile Broth (BGLB).Alat yang digunakan adalah tabung

burham, pipet tetes 10 mL, tabung reaksi, penutup tabung reaksi, rak tabung

reaksi, pembakar Bunsen, ball pipet, dan pensil crayon.

Pemeriksaan dengan metode MPN terdiri dari dua uji, yaitu uji perkiraan

(Presumtive Test) dan uji penegasan (Confirmative Test).Metode MPN memiliki 2

22

ragam yaitu metode MPN 5 1 1 untuk spesimen yang sudah diolah, atau angka

kumannya diperkirakan rendah dan metode MPN 5 5 5 untuk spesimen yang

belum diolah atau angka kumannya diperkirakan tinggi (misalnya air sumur, air

sungai, air mata air).

Untuk sampel berupa makanan, berbeda cara pengambilannya dengan

sampel air. Untuk makanan padat, cara pengambilannya yaitu, makanan yang akan

diperiksa dipotong dengan pisau steril pada berbagai bagian dan mencangkup

setiap komponen dari makanan tersebut. Kemudian contoh makanan yang telah

dipotong- potong sekurang- kurangnya 200 gram dikumpulkan dengan alat yang

steril.Setelah itu masukkan ke dalam botol steril atau kantong plastic steril yang

bertutup.Apabila menggunakan kantong plastik steril, membukanya tidak boleh

ditiup.Untuk makanan cair, yang pertama kali dilakukan adalah kocok botol atau

wadah berisi makanan cair atau minuman, setelah itu sampel makanan cair atau

minuman dituangkan ke dalam wadah atau botol steril menggunakan sendok steril

kurang lebih 200 mL.

1. Pemeriksaan air metode MPN 511

Alat dan Bahan :

Tabung reaksi, rak tabung reaksi, lampu Bunsen, pipet tetes 10 mL, ball pipet,

media Lactose Broth (LB), Brilliant Green Lactose Bile Broth (BGLB).

Prosedur :

Alat dan bahan yang diperlukan serta sampel air yang akan diuji disiapkan

terlebih dahulu. Tabung yang telah berisi tabung durham dengan posisi terbalik

dan 10 mL media LB diambil sebanyak tujuh buah dan diletakkan di rak tabung

reaksi. Tabung pertama diberi label berupa tanggal pengerjaan dan nomor

sampel, kemudian botol sampel dikocok terlebih daluhu agar sampel air

menjadi homogen. Setelah itu, sampel dipipet sebanyak 10 mL untuk lima

tabung pertama, 1 mL untuk tabung ke enam dan 0,1 mL untuk tabung ketujuh.

Tabung- tabung tersebut kemudian dikocok secara perlahan agar sampel air

menyebar rata keseluruh bagian media.Kemudian sampel diinkubasi kedalam

inkubator pada suhu 37oC selama 24 – 48 jam.

Setelah 24 – 48 jam, masing- masing tabung diamati untuk melihat ada atau

tidak adanya gas.Untuk memperjelas terlihatnya gas, tabung dikocok secara

perlahan apabila terlihat gelembung halus, maka tabung dianggap positif. Tes

perkiraan yang positif ditandai dengan terbentuknya gelembung gas, tetapi hal

23

ini belum bisa digunakan sebagai hasil akhir dari pemeriksaan adanya Coliform

dalam air, karena Lactose Broth dapat juga difermentasi oleh bakteri lain selain

Coliform. Oleh sebab itu, uji perkiraan yang positif dilanjutkan dengan uji

penegasan yaitu dengan cara dari tiap- tiap tabung yang dinyatakan positif,

dipindahkan 1 – 2 ose kedalam tabung konfirmatif yang berisi 10 mL media

BGLB. Dari masing- masing tabung presumtif diinokulasikan kedalam dua

tabung BGLB yang nantinya akan masing- masing akan diinkubasi kedalam

inkubator dengan suhu 37oC dan 44oC selama 24 – 48 jam. Pembacaan kembali

dilakukan setelah 24 – 48 jam dengan melihat jumlah tabung BGLB yang

menunjukkan positif gas.

2. Pemeriksaan air metode MPN 555

Alat dan Bahan :

Tabung reaksi, rak tabung reaksi, lampu Bunsen, pipet tetes 10 mL, ball pipet,

media Lactose Broth (LB), Brilliant Green Lactose Bile Broth (BGLB).

Prosedur Kerja :

Alat dan bahan yang diperlukan serta sampel air yang akan diuji disiapkan

terlebih dahulu. Tabung yang telah berisi tabung burham dengan posisi terbalik

dan 10 mL media LB diambil sebanyak lima belas buah dan diletakkan di rak

tabung reaksi. Tabung pertama diberi label berupa tanggal pengerjaan dan

nomor sampel, kemudian botol sampel dikocok terlebih daluhu agar sampel air

menjadi homogen. Setelah itu, sampel dipipet sebanyak 10 mL untuk lima

tabung pertama, 1 mL untuk lima tabung kedua dan 0,1 mL untuk lima tabung

ketiga. Tabung- tabung tersebut kemudian dikocok secara perlahan agar sampel

air menyebar rata keseluruh bagian media.Kemudian sampel diinkubasi

kedalam inkubator pada suhu 37oC selama 24 – 48 jam.

Setelah 24 – 48 jam, masing- masing tabung diamati untuk melihat ada atau

tidak adanya gas.Untuk memperjelas terlihatnya gas, tabung dikocok secara

perlahan apabila terlihat gelembung halus, makan tabung dianggap positif. Tes

perkiraan yang positif ditandai dengan terbentuknya gelembung gas, tetapi hal

ini belum bisa digunakan sebagai hasil akhir dari pemeriksaan adanya Coliform

dalam air, karena Lactose Broth dapat juga difermentasi oleh bakteri lain selain

Coliform. Oleh sebab itu uji perkiraan yang positif dilanjutkan dengan uji

penegasan yaitu dengan cara dari tiap- tiap tabung yang dinyatakan positif,

dipindahkan 1 – 2 ose kedalam tabung konfirmatif yang berisi 10 mL media

24

BGLB. Dari masing- masing tabung presumtif diinokulasikan kedalam dua

tabung BGLB yang nantinya akan masing- masing akan diinkubasi kedalam

inkubator dengan suhu 37oC dan 44oC selama 24 – 48 jam. Pembacaan kembali

dilakukan setelah 24 – 48 jam dengan melihat jumlah tabung BGLB yang

menunjukkan positif gas.

3. Pemeriksaan mikrobiologi pada makanan

Alat dan Bahan :

Tabung reaksi, ball pipet, pipet tetes 10 mL, lampu bunsen, inkubator 37oC,

reagen buffer phosphate 9 mL, buffer phosphate 90 mL, pepton, tiosulfat, LB,

selenite.

Prosedur Kerja :

Untuk sampel makanan padat, spesimen yang diterima dihancurkan dengan

menggunakan blender atau dapat dihancurkan dengan pinset steril.Sampel

tersebut kemudian ditimbang 10 gram kemudian dimasukkan ke dalam botol

yang berisi 90 mL buffer phospat.Untuk sampel makanan cair, dipipet sebanyak

10 mL kemudian dimasukkan kendalam botol yang berisi 90 mL buffer

phospat.Sampel kemudian dikocok agar homogen dan didiamkan beberapa saat.

Untuk pemeriksaan TPC, Vibrio Colera, Stapillococus aerus,Coliform, E.Coli,

Salmonella dan Shigella disiapkan tabung reaksi yang masing- masing berisi

buffer phosphate 9 mL, Peptop 9 mL, Tiosulfat 9 mL, media LB 9 mL

sebanyak tujuh buah tabung, dan Salenit. Buffer phospat yang telah berisi

sampel makanan dan telah homogen kemudian di pipet dan dimasukkan ke

dalam reagen buffer phosphate 9 mL, pepton dan tiosulfat masing- masing

sebanyak 1 mL, untuk nantinya diadakan pemeriksaan lanjutan pemeriksaan

TPC, Vibrio Colera, Stapillococus aerus, Salmonella dan Shigella dan dipipet

ke media LB dengan metode MPN 5 1 1 untuk pemeriksaan Coliform dan

E.Coli.

Pemeriksaan TPC pada prinsipnya dilakukan dengan cara menumbuhkan sel

mikroorganisme yang masih hidup pada media agar, sehingga

mikroorganisme akan berkembang biak dan membentuk koloni yang dapat

dilihat langsung dan dihitung dengan mata tanpa menggunakan mikroskop.

Metode ini merupakan metode yang paling sensitif untuk menentukan

jumlah mikroorganisme. Dengan metode ini, kita dapat menghitung sel yang

masih hidup, menentukan jenis mikroba yang tumbuh dalam media tersebut

25

serta dapat mengisolasi dan mengidentifikasi jenis koloni mikroba tersebut.

Metode ini dilakukan dengan metode pengenceran atau penipisan.Sebelum

mikroorganisme ditumbuhkan dalam media, terlebih dahulu dilakukan

pengenceran sampel menggunakan larutan buffer.Tahapan pengenceran dimulai

dari mengambil 1 mL larutan buffer yang telah diisi sampel makanan tadi dan

dimasukkan ke dalam 9 mL larutan buffer yang baru sehingga didapatkan

pengenceran 10-2 diambil lagi 1 mL dan dimasukkan ke dalam tabung reaksi

yang berisi 9 mL larutan buffer sehingga didapatkan pengenceran 10 -3, begitu

seterusnya sampai mencapai pengenceran yang kita harapkan.Setelah dilakukan

pengenceran, kemudian dilakukan penanaman media ke lempeng agar

kemudian diinkubasi ke dalam inkubator dengan suhu 37oC selama 24-48

jam.Setelah diinkubasi, koloni masing- masing cawan diamati dan dihitung.

Sifat- sifat yang perlu diperhatikan pada koloni yang tumbuh dipermukaan

media berupa: besar kecilnya koloni, bentuk koloni, kenaikan permukaan

koloni, halus kasarnya permukaan koloni, wajah permukaan koloni, warna

koloni, dan kepekatan koloni.Uji TPC menggunakan media padat dengan hasil

akhir berupa koloni yang dapat diamati secara visual dan dihitung. Jumlah

koloni bakteri yang tumbuh pada lempeng agar dihitung setelah inkubasi

pada suhu dan waktu yang sesuai. Perhitungan dilakukan terhadap petri

dengan jumlah koloni bakteri antara 30-300. TPC dinyatakan sebagai jumlah

koloni bakteri hasil perhitungan dikalikan faktor pengencer. Berikut

perhitungan untuk menentukan jumlah kolini untuk pemeriksaan TPC

Angka Kuman = (Jumlah Koloni yang memenui syarat pada masing-masing

pengenceran – jumlah kolini pada control)

Jumlah Pengenceran

Untuk pemeriksaan biakan, dengan menggunakan ose steril, dari masing-

masing broth diambil 1 ose dan ditanam pada masing-masing media selektif

yang sesuai. Media pepton ditanam pada TCBS Agar, media tiosulfat

ditanamkan pada Blood Agar dan media selenit ditanam pada Mac Conkey

Agar.Media selektif yang telah ditanamai diinkubasi pada suhu 37oC. Koloni

yang tumbuh pada masing-masing media selektif diobservasi dengan

mencocokan reaksi biokimia yang terjadi sesuai dengan tabel 3.3

26

Untuk pemeriksaan biakan, dengan menggunakan ose steril, dari masing-

masing broth diambil 1 ose dan ditanam pada masing-masing media selektif

yang sesuai. Media pepton ditanam pada TCBS Agar, media tiosulfat

ditanamkan pada Blood Agar dan media selenit ditanam pada Mac Conkey

Agar. Media selektif yang telah ditanamai diinkubasi pada suhu 37oC. Koloni

yang tumbuh pada masing-masing media selektif diobservasi dengan

mencocokan reaksi biokimia yang terjadi sesuai dengan tabel 3.3

Tabel 3.3 Reaksi biokimia pada media selektif

NO Jenis Kuman Sifat Koloni1 E.Coli Koloni merah jingga atau

pik- hitam metalik Besar, smooth cembung,

mengkilat2 Salmonella, Shigella Koloni opaque, transparan,

jernih, tidak berwarna3 Vibrio Cholera Koloni kuning, sedang atau

besar, smooth, keeping(sumber : Depkes RI pusat laboratorium kesehatan,1991)

27

BAB 4. BAB IVHASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Laboratorium Kimia Kesehatan

4.1.1 Pemeriksaan Kimia

A. Amoniak

Hasil Pemeriksaan amoniak disajikan dalam tabel 4.1.

Tabel 4.4 Hasil Pemeriksaan Amoniak

Keterangan : BL = Blangko

PMI = Standar

M (17) = Sampel air minum dengan kode sampel 17

L 38 = Sampel air limbah dengan kode sampel 38

(5x) = Pengenceran sebanyak 5x

Dari hasil pemeriksaan yang telah dilakukan, untuk sampel air minum kadar amoniak

masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan

menurut Per.Men.Kes. RI. No. 492/Menkes/Per/IV/2010 dan Per.Men.Kes. RI. No.

736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 1,5 mg/L, sedangkan untuk air limbah/buangan

28

SampelHasil Pengukuran

(mg/L)

BL 0.000

PMI 0.807

M 17 0.0460

M18 0.0520

M19 0.0570

M20 0.0310

L 38 (5x) 1.783

L158 (5x) 9.280

kadar amoniak melebihi batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang

diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 0.2910 mg/L.

B. Kesadahan

Hasil Pemeriksaan kesadahan disajikan dalam tabel 4.2 dan 4.3.

Tabel 4.5 Data Volume Titrasi Yang Diperlukan Untuk Uji Kesadahan

No. Sampel Volume titrasi (mL)1. M 28 7.22. M 29 6.33. M 30 6.54. B 42 (5x) 3.65. B 43 (5x) 2.6

Perhitungan:

Dengan menggunakan rumus :

mg/L = Volume titrasi x Faktor (EDTA) x 1000


Ket: Faktor EDTA = 0,9569

diperoleh hasil pada tabel di bawah ini.

Tabel 4.6 Hasil Pemeriksaan Kesadahan

Keterangan : M 28 : sampel air minum dengan kode sampel 28

B 42 : sampel air bersih dengan kode sampel 42

(5x) : pengenceran sebanyak 5x

Dari hasil pemeriksaan yang telah dilakukan, kadar kesadahan yang terukur pada

sampel air minum masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum

yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes. RI. No. 492/Menkes/Per/IV/2010 dan

Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 500 mg/L, sedangkan untuk

air bersih juga masih dalam batas normal yaitu sebesar 500 mg/L menurut Per.Men.Kes. RI

No. 416/Menkes/Per/IX/1990.

C. Klorida

29

NO. Sampel Volume titrasi (mL)Hasil Perhitungan

(mg/L)1. M 28 7.2 146.162. M 29 6.3 127.893. M 30 6.5 131.954. B 42 (5x) 3.6 365.45. B 43 (5x) 2.6 263.9

Hasil Pemeriksaan klorida disajikan dalam tabel 4.4 dan 4.5

Tabel 4.7 Data Volume Titrasi yang diperlukan untuk uji Klorida

No. Sampel Volume titrasi (mL)1. M 28 2.562. M 29 2.703. M 30 2.904. B 42 (5x) 5.685. B 43 (5x) 3.93

Perhitungan :

Dengan menggunakan rumus :

mg/L = Volume titran x faktor AgNO3 x BM Cl- x 1000


Keterangan:

Faktor AgNO3 = 0,0188

BM Cl- = 35,45

Berdasarkan hasil pemeriksaan sampel air minum yang telah dilakukan, kadar

klorida yang didapat masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar

maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes. RI. No. 492/Menkes/Per/IV/2010

dan Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 250 mg/L, sedangkan

untuk air bersih juga masih dalam batas normal yaitu sebesar 600 mg/L menurut

Per.Men.Kes. RI No. 416/Menkes/Per/IX/1990. Untuk hasil pemeriksaan klorida dapat

dilihat pada tabel di bawah ini.

Tabel 4.8 Hasil Pemeriksaan Klorida

NO. SampelVolume titrasi

(mL)Hasil Perhitungan

(mg/L)1. M 28 2.56 22.32322. M 29 2.70 23.5443. M 30 2.90 25.2884. B 42 (5x) 5.68 247.6485. B 43 (5x) 3.93 171.348




30

Pada pemeriksaan klorida, kadar klor dalam sampel diukur dengan cara

mereaksikannya dengan AgNO3 sehingga terbentuk endapan AgCl yang berwarna putih.

Indikator yang digunakan dalam pengukuran klorida ini adalah kalium bikromat yang

berbentuk endapan Ag2CrO4 yang berwarna merah bata. Adapun reaksi yang terjadi

adalah:

Cl- + Ag+ AgCl

CrO42- + Ag+ Ag2CrO4

Pada awal titrasi adanya kandungan Cl akan membentuk endapan putih AgCl dengan

ion Ag yang ditambahkan. Setelah Cl dalam larutan habis bereaksi, maka kan membentuk

endapan Ag2CrO4 yang berwarna merah bata.

D. Zat Organik

Hasil Pemeriksaan zat organik disajikan dalam tabel 4.6 dan 4.7

Tabel 4.9 Data Volume Titrasi Yang Di Butuhkan Untuk Zat Organik

Sampel Hasil Pengukuran (mL)B 48 2.5B 49 2.3B 50 2.2B 51 0.8B 52 0.9

Perhitungan

Dengan menggunakan rumus

mg/L = [ (10 + a) x f – 10 ] x 0,316 x 1000

b

Keterangan :

a = Volume dari KMnO4 yang digunakan

b = Volume sampel

f = faktor dari KMnO4 0,01 N (1)

Berdasarkan hasil pemeriksaan yang telah dilakukan, kadar zat organik yang terukur

pada sampel air bersih masih dalam batas normal dan juga masih terdapat sampel yang

melebihi batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan

menurut Per.Men.Kes.RI No.416/Menkes/Per/IX/1990 yaitu sebesar 10 mg/L. Hasil

pemeriksaan zat organik disajikan dalam tabel 4.7

31

Tabel 4.10 Hasil Pemeriksaan Zat Organik


(mL)Hasil Perhitungan

(mg/L)B 48 2.5 15.8B 49 2.3 14.536B 50 2.2 13.904B 51 0.8 5.056B 52 0.9 5.688

Keterangan : B 48 : sampel air bersih dengan kode sampel 48

Zat Organik (ZO) dioksidasi dengan KMnO4 dalam suasana asam dengan

pemanasan.Sisa KMnO4 direduksi oleh asam oksalat berlebih dan kelebihan asam oksalat

dititrasi kembali dengan KMnO4.Reaksi yang terjadi adalah reaksi redoks.

Reduksi : MnO4- + 8H+ + 5e Mn2+ + 4H2O x2

C2O42- 2CO2 + 2e x5

2MnO4- + 16 H+ + 5 C2O4

2- 2Mn2+ + 8 H2O+ 10 CO2

Pemeriksaan ZO sebaiknya segera dilakukan setelah pengambilan sampel (tidak

lebih dari 24 jam).Apabila tidak segera dilakukan pemeriksaan maka sampel diawetkan

terlebih dahulu dengan H2SO4 sampai pH 2.Ion- ion sulfida, nitrit, dan hidrogen dapat

dihilangkan dengan mendidihkan sampel dan kemudian ditambah dengan H2SO4.

E. COD

Hasil Pemeriksaan COD disajikan dalam tabel 4.8 dan 4.9

Tabel 4.11 Volume Titrasi Yang Diperlukan Untuk Uji COD

Perhitungan :

Dengan menggunakan rumus,

VB – Vs x N FAS x 8000

V sampel

Keterangan:

32

Sampel Volume titrasi (mL)BL 20.3PMI 16.9

L 107 19.5L 108 20.5L 109 19.1L 110 20.6

VB = Volume titran yang digunakan untuk titrasi blanko

VS = Volume titran yang digunakan untuk titrasi sampel

N FAS = Normalitas FAS (0,0025 N)

Diperoleh hasil perhitungan yang disajikan pada tabel di bawah ini.

Tabel 4.12 Hasil Pemeriksaan COD

Keterangan : BL : blangko

PMI : standar

L 107 : sampel air limbah dengan kode sampel 107

Dari hasil perhitungan kadar COD pada air buangan/limbah yang telah dilakukan,

kadar COD masih dalam cukup rendah jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang

diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 50 mg/L.

Perak sulfat ditambahkan sebagai katalisator untuk mempercepat reaksi.Sedangkan

apabila ada klorida dalam sampel air limbah, maka yang diperlukan pada reaksi tersebut

tidak menggambarkan keadaan yang sebenarnya.Seberapa jauh tingkat pencemaran oleh

bahan buangan organik tidak dapat diketahui secara pasti. Untuk mengikat ion klor ini

perlu penambahan merkuri sulfat sehingga ion klor bisa diikat menjadi merkuri klorida

dengan persamaan reaksi sebagai berikut:

Hg2+ + 2Cl- HgCl2

Jumlah oksigen yang diperlukan untuk reaksi oksidasi terhadap bahan buangan

organik sama dengan jumlah Kalium Bikhromat yang digunakan pada reaksi di atas.

33

Sampel Volume titrasi (mL) Hasil Perhitungan (mg/L)

Blank 20.3 0

PMI 16.9 34.0

L 107 19.5 8.0

L 108 20.5 -2.0

L 109 19.1 12.0

L 110 20.6 -3.0

F. BOD

Hasil Pemeriksaan BOD disajikan dalam tabel 4.10

Tabel 4.13 Hasil Pemeriksaan BOD

SampelHasil

(mg/L)

L 12 (30x) 24.96

L 13 (50x) 624.0

L 14 (20x) 58.39

L 15 (20x) 13.9

L 16 (50x) 134.48

Keterangan : L 12 : sampel air limbah dengan kode sampel 12


Dari hasil pemeriksaan, BOD yang terukur pada sampel air limbah, masih dalam

batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan menurut

menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 30 mg/L. Secara tidak langsung

BOD merupakan gambaran kadar bahan organikyaitu jumlah oksigen yang dibutuhkan

oleh mikroba aerob untuk mengoksidasi bahan organik menjadi karbondioksida dan air.

Dengan kata lain, BOD ini menunjukkan jumlah oksigen yang dikonsumsi oleh proses

respirasi mikroba aerob yang terdapat dalam botol.

G. Besi (Fe)

Berdasarkan hasil pemeriksaan, besi yang terukur pada sampel air minum masih

dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan

menurut Per.Men.Kes. RI. No. 492/Menkes/Per/IV/2010 dan Per.Men.Kes. RI. No.

736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 0.3 mg/L. Untuk sampel air bersih masih dalam


Per.Men.Kes RI No. 416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 1.0 mg/L dan untuk sampel air

limbah, masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang

diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 1.0 mg/L. Hasil

pemeriksaan besi disajikan dalam tabel 4.11

34

Tabel 4.14 Hasil Pemeriksaan Besi

Sampel Hasil (mg/L)

M 9 0.032

M 10 0.047

B 14 0.066

B 15 0.103

L 24 0.254




H. Flourida

Hasil Pemeriksaan Flourida disajikan dalam tabel 4.12

Tabel 4.15 Hasil Pemeriksaan Flourida

Sampel Hasil (mg/L)

M 6 0.236

M 7 2.462

B 14 0.286

B 15 0.617

L 30 1.545




Dari hasil pemeriksaan, flourida yang terukur pada sampel air minum masih dalam

batas normal dan ada yang melewati batas normal jika dibandingkan dengan kadar


dan Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 0.3 mg/L. Untuk sampel

air bersih masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang

diperbolehkan menurut Per.Men.Kes RI No. 416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 1.5

mg/L. Untuk sampel air limbah, masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar

35

maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 1.5

mg/L.

I. Jumlah Zat Padat Terlarut(TDS)

Berdasarkan hasil pemeriksaan, jumlah zat padat tersuspensi yang terukur pada



Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 0.3 mg/L yaitu sebesar 500

mg/L. Hasil Pemeriksaan TDS disajikan dalam tabel 4.13

Tabel 4.16 Hasil Pemeriksaan TDS

Sampel Hasil (mg/L)

M 23 226

M 24 262

M 25 261

M 26 217

M 27 223


J. Detergen

Hasil Pemeriksaan Detergen disajikan dalam tabel 4.14

Tabel 4.17 Hasil Pemeriksaan Detergen

SampelHasil

Pemeriksaan

Hasil Pengukuran

Spektrofotometer (mg/L)

B 34 - -

L 55 - -

L 56 - -

L 58 + 1,248

L 62 - -


36


Dari hasil pemeriksaan yang dilakukan pada sampel air bersih, diperoleh hasil bahwa

kadar detergen yang terdapat dalam sampel tersebut masih dalam batas normal jika

dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes RI No.

416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 0.5 mg/L. Untuk sampel air limbah, masih terdapat

sampel yang melebihi batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang

diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 0.5 mg/L.

K. Logam Berat

Penentuan logam berat dalam sampel air ini dilakukan dengan menggunakan metode

Spektrofotometri Serapan Atom (AAS). Metode ini merupakan suatu metode analisis

kimia untuk penentuan kadar unsur logam yang terdapat di dalam cuplikan dengan kadar

rendah atau teknik utama yang digunakan untuk menguraikan logam- logam berat dalam

endapan.Untuk hasil pemeriksaan logam berat disajikan dalam tabel 4.15 dan 4.16

Tabel 4.18 Pengukuran Logam Berat

Logam BeratPanjang Gelombang

(nm)

Cu 324.8

Zn 213.9

Pb 283.3

Cd 228.8

Tabel 4.19 Hasil Pemeriksaan Logam Berat


Cd (mg/L) Zn (mg/L) Pb (mg/L) Cr (mg/L)

M2 - 0.0697 - < 0.05

B3 - 0.1323 - < 0.05

L2 - 0.0804 - <0,1



37


Dari hasil pemeriksaan diatas, diperoleh hasil bahwa logam berat yang terukur pada



Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 0.3 mg/L yaitu sebesar 3

mg/L untuk Zn dan 0.05 mg/L untuk Cr.

Untuk sampel air bersih masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar

maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes. RI No. 416/Menkes/Per/IX/1990

yaitu sebesar 15 mg/L untuk Zn dan 0.05 mg/L untuk Cr dan untuk sampel air

limbah/buangan, masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum

yang diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 2 mg/L untuk

Zn dan 0.1 mg/L untuk Cr.

L. Nitrat

Hasil Pemeriksaan nitrat disajikan dalam tabel 4.17

Tabel 4.20 Hasil Pemeriksaan Nitrat

Sampel Nitrat (mg/L)

B 21 1.251

B 22 1.552

L 29 2.045

L 37 4.424

S 6 2.044



S 6 : sampel air sungai dengan kode sampel 6

Dari hasil pemeriksaan, nitrat yang terukur pada sampel air bersihdiperoleh hasil

bahwa kadar nitrat yang terdapat dalam sampel tersebut masih dalam batas normal jika

dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes. RI No.

416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 10 mg/L.Untuk sampel air limbah semua sampel


menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 10 mg/L, sedangkan untuk sampel

38

air sungai tidak melebihi batas normal yang telah ditentukan menurut Per.Gub.Bali

No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 10 mg/L. Dalam analisis, adanya gangguan dari ion klorida

yang dapat mengganggu pengukuran dapat diatasi dengan penambahan NaCl berlebih.

Demikian pula nitrat dengan kadar yang lebih besar dari 0,5 ppm dapat dihilangkan dengan

asam sulfat. Pada pemeriksaan nitrat, fungsi penambahan NaCl adalah untuk

menghilangkan gangguan dari ion klorida dan fungsi penambahan H2SO4 adalah untuk

mengikat nitrat yang dapat menimbulkan warna kuning.

M. Nitrit

Berdasarkan hasil pemeriksaan, nitrit yang terukur pada sampel air bersih masih


menurut Per.Men.Kes RI No. 416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 1.0 mg/L. Untuk

sampel air limbah, masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum

yang diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 0.06 mg/L,

sedangkan untuk sampel air sungai melebihi kadar maksimum yang telah ditentukan

menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 0.06 mg/L. Untuk hasil

pemeriksaan nitrit dapat dilihat dalam tabel 4.18. Dalam analisis, untuk mencegah adanya

pengaruh bakteri yang dapat mengubah nitrit menjadi nitrat, dalam penanganannya sampel

harus segera diperiksa. Apabila tidak segera diperiksa maka sampel harus segera disimpan

dalam lemari pendingin pada suhu 4°C dalam waktu maksimal 2 hari (48 jam). Agar

pemeriksaan nitrit memperoleh hasil yang akurat sebaiknya ion pengganggu dihilangkan

terlebih dahulu, seperti Cl bebas yang dapat dihilangkan dengan penambahan buffer yang

mengandung Ag2SO4.

Tabel 4.21 Hasil Pemeriksaan Nitrit

Sampel Nitrit (mg/L)

B 21 < 0.001

B 22 0.012

L 29 0.002

L 37 0.016

S 6 0.744



S 6 : sampel air sungai dengan kode sampel 6

39

N. Sulfat

Hasil Pemeriksaan sulfat disajikan dalam tabel 4.19

Tabel 4.22 Hasil Pemeriksaan Sulfat

Sampel Hasil (mg/L)

B 21 54.245

B 22 46.282

L 73 < 0.01

L 74 < 0.01



Dari hasil pemeriksaan, sulfat yang terukur pada sampel air bersih masih dalam


Per.Men.Kes. RI No. 416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 400 mg/L. Untuk sampel air

limbah, masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar maksimum yang

diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 0.01 mg/L.Ion sulfat

bereaksi dengan barium klorida (BaCl2) dalam suasana asam akan membentuk suspensi

barium sulfat.

O. Phospat

Hasil Pemeriksaan phospat disajikan dalam tabel 4.20

Tabel 4.23 Hasil Pemeriksaan Phospat

Sampel Hasil (mg/L)

L 112 2.1590

L 113 3.3434

L 114 2.2720

L 115 1.4365

L 120 30.979


40

Dari hasil pemeriksaan, phospat yang terukur pada sampel air limbah, terdapat

sampel yang masih dalam batas normal dan ada yang melebihi batas normal jika

dibandingkan dengan kadar maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Gub. Bali

No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 2 mg/L.

P. Sulfida

Hasil Pemeriksaan sulfida disajikann dalam tabel 4.21

Tabel 4.24 Hasil Pemeriksaan Sulfida

Sampel Hasil (mg/L)

L 54 0.009

L 55 0.750

L 58 0,708

L 59 < 0,01

L 60 6.520


Dari hasil pemeriksaan, sulfida yangterukur pada sampel air limbah terdapat sampel

yang melebihi batas normal dan ada juga sampel yang tidak melebihi batas normal

menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 0.01 mg/L.

Q. Zat Padat Tersuspensi (TSS)

Zat padat tersunspensi ini merupakan padatan yang menyebabkan kekeruhan, yang

tidak larut dan tidak dapat langsung mengendap dimana terdiri dari partikel-partikel kecil

dari sampel, misalnya tanah liat, bahan sampel tertentu, sel-sel mikroorganisme dan lain-

lain. Hasil pemeriksaan zat padat tersuspensi disajikan dalam tabel 4.22

Tabel 4.25 Hasil Pemeriksaan Zat Padat Tersuspensi

Sampel HasilL 53 19L 54 22L 55 8L 56 21L 57 10


41

Berdasarkan hasil pemeriksaan, zat tersuspensi yang terukur pada sampel air limbah,


menurutPer.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 50 mg/L.

R. Minyak dan Lemak

Hasil Pemeriksaan minyak dan lemak disajikan dalam tabel 4.23

Tabel 4.26 Hasil Pemeriksaan Minyak dan Lemak

No Sampel Hasil (mg/L)

1 L 17 -

2 L 18 -

3 L 19 -

4 L 21 6

5 L 22 2

Dari hasil pemeriksaan, minyak dan lemak yang terukur pada sampel air limbah,


menurut Per.Gub. Bali No.8.Tahun 2007 yaitu sebesar 50 mg/L.

4.1.2 Pemeriksaan Fisika

A. Kekeruhan

Hasil Pemeriksaan kekeruhan disajikan dalam tabel 4.24

Tabel 4.27 Hasil Pemeriksaan Kekeruhan

Sampel Hasil (NTU)

M 5 1.80

M 6 0.75

B 15 0.025

B 23 0.48

B 24 2.21



42

Dari hasil pemeriksaan yang telah dilakukan diperoleh hasil bahwa kekeruhan yang

terukur untuk air minum masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar


dan Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu sebesar 5 NTU dan untuk

sampel air bersih masih dalam batas normal menurut Per.Men.Kes RI No.

416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 25 NTU.

B. Warna

Berdasarkan hasil pemeriksaan, warna yang terukur pada sampel air bersih masih


menurut Per.Men.Kes. RI No. 416/Menkes/Per/XI/1990 yaitu sebesar 50 TCU dan

untuk sampel air minum masih dalam batas normal jika dibandingkan dengan kadar

maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes. RI. No.

492/Menkes/Per/IV/2010 dan Per.Men.Kes. RI. No. 736/Menkes/Per/VI/2010 yaitu

sebesar 15 TCU. Hasil pemerksaan warna disajikan dalam tabel 4.25

Tabel 4.28 Hasil Pemeriksaan Warna

Sampel Hasil (TCU)

M 12 3.3234

M 13 3.8140

B 57 11.172

B 58 7.2479

B 59 6.7574



4.2 Laboratorium Bakteriologi Kesehatan Masyarakat

A. Pemeriksaan MPN Air

Air merupakan suatu sarana utama untuk meningkatkan derajat kesehatan

masyarakat, karena air merupakan salah satu media dari berbagai macam penularan,

terutama penyakit perut. Peningkatan kualitas air minum dengan jalan mengadakan

pengelolaan terhadap air yang akan diperlukan sebagai air minum dengan mutlak

43

diperlukan terutama apabila air tersebut berasal dari air permukaan (Sutrisno dan

Suciastuti, 2002).

Air minum tidak boleh mengandung bakteri-bakteri penyakit (patogen) sama sekali

dan tak boleh mengandung bakteri-bakteri golongan Coli melebihi batas-batas yang telah

ditentukan. Bakteri golongan Coli ini berasal dari usus besar (feaces) dan tanah. Bakteri

patogen yang mungkin ada dalam air adalah Bakteri penyebab tifus, Vibrio colera, Bakteri

penyebab disentri, Shigella sp, Bakteri enteris lainnya (penyebab penyakit pada perut).

Bakteri Coliformadalah golongan bakteri intestinal, yaitu hidup didalam saluran

pencernaan manusia. Bakteri Coliformadalah bakteri indikator keberadaan bakteri

patogenik lain. Lebih tepatnya, bakteri Coliformfekal adalah bakteri indikator adanya

pencemaran bakteri patogen.Penentuan Coliformfekal menjadi indikator pencemaran

dikarenakan jumlah koloninya pasti berkorelasi positif dengan keberadaan bakteri

patogen.Contoh bakteri Coliformadalah, Escherichia coli dan Enterobacter aerogenes.Jadi,

Coliformadalah indikator kualitas air. Keberadaan bakteri ini dalam air minum juga

menunjukkan adanya bakteri pathogen lain, misalnya Shigella yang bias menyebabkan

diare hingga muntaber. Bakteri Coliform dapat dibedakan menjadi dua bagian, yaitu :

1. Coliform fekal, misalnya E. Coli merupakan bakteri yang berasal dari kotoran hewan

atau manusia

2. Coliform non-fekal, misalnya E. aeroginosa biasanya ditemukan pada hewan atau

tanaman yang telah mati.

Bakteri E. Coli memiliki kemampuan untuk memfermentasikan kaldu laktosa pada

temperature 370C dengan membentuk asam dan gas dalam waktu 48 jam.Makin sedikit

kandungan Coliform, artinya, kualitas air semakin baik. Air yang mengandung golongan

Coli dianggap telah berkontaminasi (berhubungan) dengan kotoran manusia. Dengan

demikian dalam pemeriksaan bakteriologik, tidak langsung diperiksa apakah air itu

mengandung bakteri patogen, tetapi diperiksa dengan indikator bakteri golongan Coli

(Sutrisnodan Suciastuti, 2002).

Hasil pemeriksaan golongan coli dengan sistem tabung dinyatakan dengan indeks

MPN (Most Probable Number) atau JPT (Jumlah Perkiraan Terdekat Kuman golongan

coli). Metode MPN ini umumnya digunakan untuk menghitung jumlah bakteri pada air

khususnya untuk mendeteksi adanya bakteri koliform yang merupakan kontaminan utama

sumber air minum. Ciri-ciri utamanya yaitu bakteri gram negatif, batang pendek, tidak

membentuk spora, memfermentasi laktosa menjadi asam dan gas yang dideteksi dalam

waktu 24 jam inkubasi pada 37º C. Sampel ditumbuhkan pada seri tabung sebanyak 3 atau

44

5 buah tabung reaksi untuk setiap kelompok. Apabila dipakai 3 tabung maka disebut seri 3,

dan jika dipakai 5 tabung maka disebut 5 seri. Media pada tabung adalah Lactose Broth

yang diberi indikator perubahan pH dan ditambah tabung durham. Pemberian sampel pada

tiap seri tabung berbeda-beda. Untuk sampel sebanyak 10 ml ditumbuhkan pada media

LBDS (Lactose Broth Double Stegth) yang memiliki komposisi Beef extract (3 gr),

peptone (5 gr), lactose (10 gr) dan Bromthymol Blue (0,2 %) per liternya. Untuk sampel

1 ml dan 0,1 ml dimasukkan pada media LBSS (Lactose Broth Single Stegth) yang

berkomposisi sama tapi hanya kadar laktosa setengah dari LBDS yaitu 5 gr (Lay, 1992).

Terdapat 2 (dua) metode MPN yang digunakan untuk menentukan golongan coli yaitu

metode MPN 511 dan 555.

Tabel 4.29 Daftar Tabel MPN 511

10 mL 1 mL 0,1 mL MPN/100 mL0 0 0 00 0 1 20 1 0 21 0 0 2,20 1 1 41 0 1 4,41 1 0 4,41 1 1 6,72 0 0 52 0 1 7,52 1 0 7,62 1 1 103 0 0 8,83 0 1 123 1 0 123 1 1 164 0 0 154 0 1 214 1 0 214 1 1 275 0 0 385 0 1 965 1 0 965 1 1 240+


45

Tabel 4.30 Daftar Tabel MPN 555

Jumlah Tabung (+) Gas Indeks MPN

per 100 mL

Jumlah Tabung (+) GasIndeks MPN per 100 mL10

mL1 mL

0,1 mL

10 mL

1 mL 0,1 mL

0 0 0 <2 4 2 1 26

0 0 1 2 4 3 0 27

0 1 0 2 4 3 1 33

0 2 0 4 4 4 0 34

1 0 0 2 5 0 0 23

1 0 1 4 5 0 1 31

1 1 0 4 5 0 2 43

1 1 1 6 5 1 0 33

1 2 0 6 5 1 1 46

2 0 0 5 5 1 2 63

2 0 1 7 5 2 0 49

2 1 0 7 5 2 1 70

2 1 1 9 5 2 2 94

2 2 0 9 5 3 0 79

2 3 0 12 5 3 1 110

3 0 0 8 5 3 2 140

3 0 1 11 5 3 3 180

3 1 0 11 5 4 0 130

3 1 1 14 5 4 1 170

3 2 0 14 5 4 2 540

3 2 1 17 5 4 3 280

3 3 0 17 5 4 4 350

4 0 0 13 5 5 0 240

4 0 1 17 5 5 1 350

4 1 0 17 5 5 2 540

4 1 1 21 5 5 3 920

4 1 2 26 5 5 4 1600

4 2 0 22 5 5 5 >2400


46

Berdasarkan pemeriksaan air yang telah dilakukan di laboratoium bakteriologi

kesmas diperoleh hasil yang disajikan dalam table 4.28.

Tabel 4.31 Hasil Pemeriksaan MPN Air

NoJenis

SampelTes

PerkiraanTes Penegasan MPN

Coliform E.Coli Coliform E.Coli

1Air Bersih Kamar 263

0 0 0 0 0 0 0

2Air Limbah Locker (-2)

5 5 5 4 3 1 4 3 0 3.300 2.700

3Air Minum

Starfish2 0 0 1 0 0 0 0 0 2.2 0

Dari hasil pemeriksaan pada sampel air terdapat sampel yang melebihi batas

normal dan ada yang tidak melebihi batas normal jika dibandingkan dengan kadar

maksimum yang diperbolehkan menurut Per.Men.Kes. RI No. 416/Menkes/Per/IX/1990

yaitu sebesar 0 mg/100 mL untuk bakteri pathogen.

B. Pemeriksaan Mikrobiologi Makanan

Pangan adalah segala sesuatu yang berasal dari sumber hayati dan air, baik yang

diolah maupun yang tidak diolah yang diperuntukkan sebagai makanan atau minuman bagi

konsumsi manusia termasuk bahantambahan pangan, bahan baku pangan dan bahan lain

yang digunakan dalam proses penyiapan, pengolahan dan atau pembuatan makanan atau

minuman.

Hampir semua bahan pangan tercemar oleh berbagai mikroorganisme dari

lingkungan sekitarnya.Beberapa jenis mikroba yang terdapat pada bahan pangan adalah

Salmonella sp, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, kapang, khamir serta mikroba

patogen lainnya.Pencemaran mikroba pada bahan pangan merupakan hasil kontaminasi

langsung atau tidak langsung dengan sumber–sumber pencemaran mikroba, seperti tanah,

udara, air, debu, saluran pencernaan dan pernafasan manusia maupun hewan. Hanya

sebagian saja dari berbagai sumber pencemar yang berperan sebagai sumber mikroba awal

yang selanjutnya akan berkembang biak pada bahan pangan sampai jumlah tertentu.

Pengukuran kuantitatif populasi mikroorganisme sangat diperlukan untuk berbagai

macam penelaahan mikrobiologis. Terdapat berbagai macam cara untuk menghitung

jumlah mikroorganisme, akan tetapi secara mendasar, ada dua cara yaitu secara langsung

dan secara tidak langsung. Ada beberapa cara perhitungan secara langsung, antara lain

47

adalah dengan membuat preparat dari suatu bahan (preparat sederhana diwarnai atau tidak

diwarnai) dan penggunaan ruang hitung (counting chamber). Sedangkan perhitungan cara

tidak langsung hanya untuk mengetahui jumlah mikroorganisme pada suatu bahan yang

masih hidup saja (viabel count). Dalam pelaksanaannya, ada beberapa cara yaitu :

perhitungan pada cawan petri (total plate count / TPC), perhitungan melalui pengenceran,

perhitungan jumlah terkecil atau terdekat (MPN methode), dan kalorimeter (cara kekeruhan

atau turbidimetri) (Lay dan Hastowo, 1992).

E.Coli dan Coliform, yang termasuk golonganEnterobacteriaceae

adalahSalmonella, Shigella danEnterobacter sakazaki selaingolongan Enterococci

yaituStreptococcus faecalis danS.faecium merupakan floranormal dari saluran

pencernaanmanusia dan hewan. Golonganini tidak banyak digunakan sebagai indikator

kontaminasifekal tetapi lebih dikaitkandengan sanitasi produksi yangburuk oleh karena

daya tahan yang tinggi dari mikroba terhadapkekeringan, suhu tinggi danpendinginan serta

pengaruhdetergen atau disinfektan.Dengan sifat yang tahanterhadap pendinginan

makabakteri ini dapat digunakansebagai indikator untuk makananbeku dan makanan yang

sudahdipanaskan.Staphylococci terutamaStaphylococcus aureuskeberadaannya dalam

makananbisa bersumber dari kulit, mulutatau rongga hidung pengolahpangan.Bila

ditemukan dalamjumlah tinggi merupakanindikator dari kondisi sanitasiyang tidak

memadai.

Mikroba yang lain yang mungkin terdapat dalam makanan yaitu bakteri Vibrio

Cholera. Bakteri Vibrio cholera adalah organisme gram negatif dan bakteri yang tidak

membentuk spora. V. cholerae dapat tumbuh pada suhu 10-430C, dengan suhu optimal

370C. Sumber kontaminasi kolera biasanya karena sanitasi yang buruk dan kontaminasi

dari feses. Vibrio cholera bias terdapat pada makanan jika makanan tersebut

terkontaminasi oleh air yang tercemar atau pengolahan makanan yang membawa pathogen.

Berdasarkan hasil pemeriksaan makanan untuk hasil pemeriksaan MPN makanan

disajikan dalam tabel 4.29 dan untuk hasil pemeriksaan mikrobiologi makanan disajikan

dalam tabel 4.30

48

Tabel 4.32 Hasil Pemeriksaan MPN Makanan

NoJenis

SampelTes

Perkiraan

Tes Penegasan MPNTPC

Coliform E.Coli Coliform E.Coli

1Sumping Waluh

0 0 0 0 0 89.500

2Tempe Bacem

1 0 0 1 0 0 1 0 0 2.2 2.2 518.000

Tabel 4.33 Hasil Pemeriksaan Biakan Pada Makanan

NoJenis

SampelSallmonela Shigella E.Coli

Vibrio Cholera

Stap-aureus

1Nasi Ayam

Betutu Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif

2 Mie Goreng Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif

Dari hasil pemeriksaan yang dilakukan pada pemeriksaan MPN untuk sampel

sumping waluh menunjukkan hasil yang negatif sedangkan untuk sampel tempe bacem

diperoleh hasil indeks MPN menunjukkan dalam sampel tersebut terdapat bakteri

Coliformdan E.Coli. Keberadaan bakteri E.colipada makanan menunjukkan bahwa

makanan tersebut tercemar kotoran akibat pengolahan dan kebersihan pengolah makanan

yang kurang baik. Bakteri E.coli merupakan bakteri patogen yang sering dijadikan

indikator sanitasi.Selain itu menurut Per.Men.Kes. RI No. 492/Menkes/Per/IV/2010tidak

memperbolehkan adanya kuman dalam makanan.

Sementara hasil pemeriksaan TPC menunjukkan terbentuknya koloni pada sampel

makanan yang mengindikasikan banykanya jumlah bakteri yang terdapat dalam sampel

sumping waluh maupun tembe bacem. Banyaknya bakteri dalam makanan dipengaruhi

oleh proses pengolahan sehingga semakin tinggi jumlah koloni yang diperoleh makan

semakin tinggi tingkat kontaminasi oleh bakteri pada makanan sehingga proses

pembusukan pada makanan lebih cepat terjadi.

Untuk keseluruhan pemeriksaan mikrobiologi makanan semua sampel memperoleh

hasil yang negatif, ini menunjukkan bahwa semua sampel tidak terkontaminasi dari bakteri

pathogen Sallmonela, Shigella, E.Coli, Vibrio Cholera dan Staphylococcus aureus.

49

4.3 Permasalahan dan Solusi

Dalam pelaksanaan kerja praktek di UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali tentunya banyak dihadapi permasalahan baik pelaksanaan dalam ruangan maupun luar

ruangan. Permasalahan dalam ruangan seperti pemakaian alat-alat instrumen, pemeriksaan

parameter-parameter, dan pembuatan reagen. Dalam Laboratorium Kimia Kesehatan

banyak alat-alat instrumen yang digunakan, hampir sebagian besar dari alat instrumen yang

digunakan di Laboratorium penulis belum pernah menggunakan. Permasalahan di luar

ruangan yang penulis hadapi seperti permasalahan dalam pengambilan sampel air,

sedangkan pada laboratorium Bakteriologi Kesehatan Masyarakat masalah yang dihadapi

adalah minimnya pengetahuan tentang mikrobiologi.

Kendala-kendala yang dihadapi dalam pelaksanaan kerja praktek masih dapat

diatasi oleh penulis dengan cara lebih banyak bertanya kepada petugas laboratorium.

Selama itu penulis juga melihat cara-cara petugas laboratorium mengerjakan sampel, dan

lebih banyak membaca buku-buku pedoman praktikum yang disediakan di UPT Balai

Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali. Untuk kendala yang lain, penulis lebih banyak

mencatat prosedur praktikum sehingga dapat dibaca.

50

BAB 5. BAB VPENUTUP

5.1 SimpulanDari pelaksanaan KP yang penulis telah laksanakan di UPT. Balai Laboratorium

Kesehatan Provinsi Bali, maka dapat disimpulkan hal-hal sebagai berikut :

(1) Kerja praktek ini memberikan pengalaman bagi penulis tentang dunia kerja nyata

dalam kegiatan sampling, penanganan sampel, preparasi sampel maupun analisis

sampel.

(2) Kerja praktek ini memberikan wawasan bagi penulis tentang analisis yang

dilakukan di Laboratorium Kimia Kesehatan, UPT. Balai Laboratorium Kesehatan

Provinsi Bali selama Kerja Praktek yang meliputi :Uji warna, kekeruhan, ammonia,

fosfat, TDS, TSS, COD, DO, BOD, florida, sulfida, besi, nitrat, nitrit, minyak &

lemak, klorida, kesadahan, zat organik dan deterjen, sertaanalisis yang dilakukan di

Laboratorium Bakteriologi Kesehatan Masyarakat yaitu, pemeriksaan MPN air,

MPN makanan, TPC dan Uji biakan pada makanan.

(3) Peranan Laboratorium Kimia Kesehatan dan Laboratorium Bakteriologi Kesehatan

Masyarakat, UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali yaitu melaksanakan

pemeriksaan secara laboratorium di bidang pelayanan kesehatan sesuai dengan

peraturan perundang-undangan yang berlaku.

5.2 SaranPenulis mengharapkan agar tahun-tahun berikutnya waktu pelaksanaan KP dapat

diperpanjang, agar pengalaman yang diperoleh mahasiswa lebih banyak. Selain itu penulis

sangat mengharapkan hubungan Jurusan Analis Kimia, FMIPA, Undiksha semakin erat

dengan UPT Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali sehingga untuk tahun-tahun

berikutnya mahasiswa jurusan D3 Analis Kimia dapat diterima kembali untuk

melaksanakan KP di UPT Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi Bali.

51

BAB 6. DAFTAR PUSTAKA

Departemen Kesehatan RI. Pusat Laboratorium Kesehatan, Jakarta: Departemen Kesehatan

1991

Lay, B.W dan S. Hastowo. 1992. Mikrobiologi. Rajawali Pers :Jakarta.

Sri Kusniawati, dkk. 2007. Laporan KP Di UPT. Balai Laboratorium Kesehatan Provinsi

Bali. Analis Kimia :UNDIKSHA. Tidak Diterbitkan.

Sutrisno, T dan E. Suciastuti. 2002. Teknologi Penyedian Air Bersih, Rineka Cipta :

Jakarta.

UPT. Balai Lab. Kes. Dinas Kesehatan Provinsi Bali. 2005. SNI Air dan Air Limbah

Denpasar.

W Lay. 1992. Mikrobiologi. Bogor: CV. Raja Wali

52

BAB 7. LAMPIRANLampiran 1

REAGEN YANG DIGUNAKAN PADA MASING- MASING PARAMETER

1. Kesadahan

- Larutan dapar

Larutkan 16,9 gram ammonium klorida dalam 143 mL ammonium hidroksida

pekat, encerkan sampai 250 mL dengan air suling

- EBT

0,5 gram Eriochrome Black T dilarutkan dalam 100 gram trietanolamin atau

dalam 100 gram 2-metoksi methanol . larutan ini ditambahkan sebanyak dua

tetes per 50 mL titrasi

- EDTA

3,723 gram dinatrium etilen diamine tetra asetat dihidrat dilarutkan dalam air

suling dan diencerkan sampai 1000 ml.

2. Klorida

- Larutkan indicator kalium kromat : larutkan 50 gram kalium kromat dalam

sedikit air suling bebas klorida. Tambahkan larutan AgNO3 , sehingga

terbentuk endapan merah. Diamkan selama 12 jam.

- Saring dan encerkan menjadi 1 liter dengan air suling bebas klorida.

- Larutan baku perak nitrat 0,0141 N (AgNO3).

Larutkan 2,395 gram perak nitrat dengan air suling bebas klorida dan encerkan

menjadi 1 liter.Simpan dalam botol coklat.

3. Sulfat

- Larutan dapar

30 magnesium klorida ditambahkan 6 gram natrium asetat.Ditambahkan 1

gram kalium nitrat dan 20 ml asam asetat.Dilarutkan dalam 500 ml air suling

dan enerkan sampai 1 L.

- Kistal barium klorida

4. Amoniak

- Reagen Nesler

53

Larutkan 50 gram dinatrium etilen diamine tetrta asetat dihidrat dalam 60 ml

air suling yang mengandung 10 gram NaOH. Apabila perlu, panaskan

perlahan- lahan sampai larut sempurna.Dinginkan pada suhu kamar, dan

encerkan samapai 100 ml.

- Reagen ROCHELLE

Larutkan 50 gram K-Na-Tartrat tetrahydratdalam 100 ml air suling.Untuk

menghilangkan ammoniak yang biasanya ada, panaskan sampai larutan

berkurang 30 mL.dinginkan, dan encerkan sampai 100 ml.

5. Flourida

- Reagen Spands

6. Nitrat

- NaCl

Larutkan 300 gram Nacl dan encerkan 1L dengan air suling

- H2SO4

Tambahkan hati- hati 500 mL H2SO4 pekat ke dalam 125 ml air suling.Sebelum

dipakai dinginkan pada suhu kamar dan tutup rapat.

- Larutan brusin asam sulfanilat

Larutkan 1 gram brusin sulfat dan 0,1 gram asam sulfanilat ke dalam kurang

lebih 70 ml air suling hangat. Ditambahkan 3ml HCl pekat, dinginkan dan

encerkan menjadi 100 ml

7. Nitrit

- Reagen 1 : kedalam 80 ml air sulung bebas nitrit ditambahkan 10 ml asam

pospat 85 % dan 1 gram sulfanilamit. Kemudian dicampur dan diencerkan

sampai volume larutan 100 ml

- Reagen 2 : 0,1 gram N-(1 Naftil)- etilendiamine dihidroklorida dilarutkan

dengan aquades lalu diencerkan sampai 100 ml

8. Zat Organik

- Larutan KMnO4 0,1 N

3,16 KMnO4 dilarutkan dalam 1 liter air suling, didihkan selama 10-15 menit,

didiamkan sedikitnya 24 jam. Larutan ditambahkan air suling sampai 1 liter,

larutan disaring dan disimpan dalam botol cokelat.

- Larutan KmnO4 0,01 N

Sebanyak 100 mL KmnO4 0,1 N diencerkan dengan air yang telah didihkan

hingga volume 1 liter.

54

- Larutan H2SO4 4 N

Sebanyak 55,56 mL diambil dari larutan H2SO4 36 N kemudian diencerkan

hingga larutan menjadi 500 mL.

- Larutan asam oksalat 0,1 N

Sebanyak 6,3024 g asam oksalat dilarutkan dengan air suling sampai larut

dalam labu ukur 1 liter.

- Larutan asam oksalat 0,01 N

Sebanyak 100 mL asam oksalat 0,01 N diencerkan menjadi 1 liter dengan air

suling.

9. Logam Berat

- Asam nitrat pekat

10. Cod

- Larutan baku K2CrO4 0,0167 N tambahkan pada : 1500 mL air suling 4,9313 g

kalium bikromat baku primer (yang sebelumnya sudah dipanaskan pada 103°C

selama 2 jam) 167 mL H2SO4 pekat dan 33,3 g merkuri sulfat.

- Reagen asam sulfat

Tambahkan perak sulfat (Ag2SO4) kedalam boto yang berisi H2SO4 pekat. Tiap

1 kg H2SO4 pekat memerlukan perak sulfat 5,5 g. Biarkan 1-2 hari untuk

melarutkan Ag2SO4

- Larutan titran baku ferro ammonium sulfat (FAS) 0,01 N

a. Larutkan 39,2 g FAS dalam air suling. Tambahkan 20 mL H2SO4 pekat.

b. Dinginkan dan encerkan sampai 100 mL.

11. Detergen

- Kloroform

- Reagen biru methylen

- Larutan pencuci

12. Phospat

- Reagen PO4

- Padatan ammonium peroxodisulfat

- Ammonium panadomomolybdat

a. Larutan A

25 g ammonium molybdat dilarutkan dalam 300 mL akuades

b. Larutan B

55

1,25 g ammonium metavanadate dimasukkan ke dalam 100 mL akuades

lalu didihkan, didinginkan dan ditambahkan 330 mL HCl pekat,

dibiarkan dalam suhu kamar.

c. Larutan A dimasukkan dalam larutan B diaduk dan ditambahkan akuades

sampai 1 liter

13. Besi

- Asam klorida pekat, mengandung besi kurang dari 0,00005 %

- Larutkan hidroksilamine hidroklorida

- Sebanyak 10 gram hidroksilamine hidroklorida dilarutkan dalam 100 ml air

suling bebas besi.

- Larutan dapar Ammonium Asetat

Sebanyak 250 gram ammonium asetat dilarutkan 150 ml air suling bebas besi

dan 700 ml asam asetat (glacial) pekat.

- Larutan fenantroline

Sebanya 100 mg 1,10 penantroline monohidrat dilarutkan dalam 100 ml air

suling bebas besi dengan diaduk dan dipanaskan sampai 800C (tidak sampai

mendidih). Larutan dibuang jika warnanya menjadi gelap.

56

laporan-kerja-praktek

Documents