skripsi pengujian toksisitas akut … dan kesabarannya dalam membimbing penulis selama kuliah hingga...

SKRIPSI

PENGUJIAN TOKSISITAS AKUT EKSTRAK

BUAH MERAH (Pandanus conoideus Lam.) SECARA IN VIVO

Oleh

HAYUNING PAMBAYU RETNOMURTI

F24103028

2008

FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

BOGOR

SKRIPSI



Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar

SARJANA TEKNOLOGI PERTANIAN

Pada Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan

Fakultas Teknologi Pertanian

Institut Pertanian Bogor

Oleh:


F24103028

2008



BOGOR

Hayuning Pambayu Retnomurti. F24103028. Pengujian Toksisitas Akut Ekstrak Buah Merah (Pandanus conoideus Lam.) Secara In Vivo. Di bawah bimbingan: Dr. Ir. Nurheni Sri Palupi, MSi.

RINGKASAN

Salah satu tanaman yang memiliki efek farmakologi dan terkenal saat ini

adalah buah merah. Buah merah yang sebelumnya hanya dibiarkan tumbuh liar dan digunakan sebagai sumber pangan, ternyata menyimpan potensi obat yang luar biasa, karena adanya kandungan senyawa aktif berupa karotenoid, tokoferol, dan senyawa aktif lainnya yang dapat digunakan sebagai obat. Senyawa aktif tersebut berperan sebagai antioksidan yang mampu menetralisir zat-zat radikal bebas dalam tubuh yang merupakan sumber pemicu timbulnya berbagai penyakit.

Semua yang dikonsumsi manusia, baik bahan pangan nabati maupun hewani selain mengandung zat-zat yang bermanfaat bagi tubuh, terkadang juga dapat menimbulkan gejala sakit hingga kematian yang disebabkan adanya kandungan zat kimia yang bersifat racun dalam bahan pangan tersebut. Hal ini mendorong perlu dilakukannya uji toksisitas untuk menentukan efek biologis negatif akibat pemberian suatu zat.

Penelitian ini bertujuan menguji toksisitas akut ekstrak buah merah secara in vivo sehingga dapat diketahui batas dosis yang aman dalam penggunaannya.

Sampel yang digunakan dalam penelitian adalah ekstrak buah merah yang berupa fraksi minyak dan fraksi air hasil dari metode ekstraksi sentrifugal yang diperoleh dari Papua. Kedua sampel tersebut diuji toksisitas akutnya terhadap mencit secara in vivo. Dalam pengujian toksisitas akut ekstrak buah merah, mencit diberi fraksi minyak dan fraksi air buah merah dengan dosis 5-137200 mg/kgBB. Pengamatan dilakukan selama 96 jam. Hal-hal yang diamati meliputi jumlah kematian, berat badan, tingkah laku dan gejala toksik, serta penampakan organ secara makroskopis.

Berdasarkan ekstraksi buah merah dengan metode sentrifugal, diperoleh rendemen fraksi minyak sebesar 15 % dan fraksi air 53 %. Nilai rendemen fraksi air dihitung dari jumlah pasta sisa.

Berdasarkan hasil pengujian toksisitas akut, tidak ditemukan adanya kematian mencit pada setiap tingkatan dosis (5-137200 mg/kgBB) untuk kedua fraksi. Dari hasil tersebut, diperoleh nilai LD50 untuk fraksi minyak dan fraksi air buah merah sebesar 137200 mg/kgBB. Berdasarkan klasifikasi toksisitas relatif (Lu, 1995), nilai toksisitas tersebut termasuk ke dalam kelompok praktis tidak toksik.

Berdasarkan hasil pengamatan terhadap berat badan, tingkah laku dan gejala toksik tidak ditemukan adanya suatu efek toksik untuk kedua fraksi. Perubahan yang terjadi hanya menunjukkan suatu proses adaptasi terhadap stres setelah mengalami perlakuan. Berdasarkan pengamatan terhadap organ secara makroskopik untuk perlakuan kedua fraksi, ditemukan adanya perubahan warna organ terutama hati, ginjal, dan limpa yaitu menjadi semakin merah pekat dan terdapat beberapa yang kehitaman terutama dengan semakin meningkatnya dosis yang diberikan. Hal ini disebabkan adanya pengaruh kandungan senyawa aktif dan komponen zat gizi di dalam kedua fraksi terhadap fungsi dan kerja organ.





SKRIPSI

Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar

SARJANA TEKNOLOGI PERTANIAN

Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan,

Fakultas Teknologi Pertanian,

Institut Pertanian Bogor

Oleh


F24103028

Dilahirkan pada tanggal 24 September 1985

Di Bogor, Jawa Barat

Tanggal Lulus: 24 Januari 2008

Menyetujui,

Bogor, Februari 2008

Dr. Ir. Nurheni Sri Palupi, MSi Dosen Pembimbing

Mengetahui,

Dr. Ir. Dahrul Syah, MSc Ketua Departemen ITP

RIWAYAT HIDUP

Penulis bernama lengkap Hayuning Pambayu

Retnomurti dan dilahirkan di Bogor, pada tanggal 24

September 1985. Penulis adalah putri dari pasangan Sardino

Tejosudiro dan Rita Endang. Pendidikan dasarnya diselesaikan

di SDN Pengadilan 4 Bogor, sampai dengan tahun 1997, SLTP

Negeri 1 Bogor, hingga tahun 2000, dan di SMU Negeri 1 Bogor sampai dengan

tahun 2003. Setamat dari SMU, penulis diterima di Departemen Ilmu dan

Teknologi Pangan, Fakultas Teknologi Pertanian, Institut Pertanian Bogor melalui

jalur USMI (Ujian Saringan Masuk IPB).

Selama menempuh pendidikan di Institut Pertanian Bogor, penulis aktif di

berbagai kegiatan baik di dalam maupun di luar kampus. Penulis pernah menjadi

anggota Himpunan Mahasiswa Teknologi Pangan (HIMITEPA), anggota Unit

Kegiatan Mahasiswa (UKM) Lises Gentra Kaheman, serta menjadi panitia dalam

acara-acara kemahasiswaan, seperti Lomba Cepat Tepat Ilmu Pangan (LCTIP)

tingkat nasional, Konferensi Himpunan Mahasiswa Peduli Pangan Indonesia

(HMPPI), BAUR, Suksesi HIMITEPA, Ki Sunda Midang, dan Dies Natalis IPB.

Penulis juga pernah menjadi staf pengajar pada Bimbingan Belajar AMPUH pada

tahun 2005.

Penulis melakukan tugas akhir penelitian sebagai salah satu syarat untuk

memperoleh gelar Sarjana Teknologi Pertanian. Hasil penelitian tersebut telah

disusun dalam bentuk skripsi yang berjudul “Pengujian Toksisitas Akut Ekstrak

Buah Merah (Pandanus conoideus Lam.) Secara In Vivo” di bawah bimbingan

Dr. Ir. Nurheni Sri Palupi, MSi.

KATA PENGANTAR

Segala puji bagi Allah SWT yang telah memberikan rahmat dan karunia-

Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi ini. Tugas akhir ini disusun

sebagai salah satu syarat untuk mendapatkan gelar Sarjana Teknologi Pertanian

pada Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan, Fakultas Teknologi Pertanian,

Institut Pertanian Bogor.

Penelitian ini dilakukan dari bulan Juli hingga November 2007 di

Laboratorium Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan serta Laboratorium Hewan

Percobaan Departemen Gizi Masyarakat dan Sumberdaya Keluarga, Institut

Pertanian Bogor. Pelaksanaan tugas akhir khususnya dalam hal analisis fisiko-

kimia, dilakukan atas kerjasama penulis dengan Andini Julia Selly (F24103067)

dan Eka Kurnia Sari (F24103116).

Selama penelitian dan penyusunan skripsi, penulis mendapatkan bantuan

dari berbagai pihak. Oleh karena itu, dalam kesempatan ini penulis

menyampaikan rasa terima kasih yang sebesar-besarnya kepada :

1. Dr. Ir. Nurheni Sri Palupi, MSi selaku dosen pembimbing atas arahan,

masukan, dan kesabarannya dalam membimbing penulis selama kuliah hingga

penulisan skripsi ini.

2. Dr. Ir. Nuri Andarwulan, MSi atas kesediaannya sebagai dosen penguji serta

saran yang telah diberikan demi perbaikan skripsi ini.

3. Dr. Ir. Endang Prangdimurti, MSi atas kesediaannya sebagai dosen penguji

serta saran yang telah diberikan demi perbaikan skripsi ini.

4. Bapak, ibu, serta adikku Bowo atas perhatian, motivasi, doa, serta curahan

kasih sayang yang tidak henti-hentinya.

5. Rekan-rekan penelitianku satu bimbingan (Andini Julia Selly dan Eka Kurnia

Sari) atas bantuan, semangat, kerjasama, dan kebersamaannya dalam

perjuangan kita yang penuh warna.

6. Tim Manajemen Hibah Bersaing XIV Dirjen Dikti atas bantuannya dalam

pengadaan dana selama penelitian.

7. Bapak I Made Budi atas bantuannya dalam penyediaan ekstrak buah merah

untuk penelitian.

8. Mbak Santi, Supri, dan Kak Jimmy atas bantuan dan masukan yang diberikan

kepada penulis selama penelitian.

9. Bu Sri, Pak Karya, dan Pak Ucup atas bantuan dan kerjasamanya selama

penelitian di Lab Tikus.

10. Pak Wahid, Pak Sobirin, Pak Koko, Bu Rubiyah, Pak Rojak, dan seluruh

teknisi yang tidak dapat disebutkan satu-persatu, atas bantuan yang diberikan

selama penelitian.

11. Seluruh dosen Departemen ITP yang banyak memberikan ilmu dan nasehat

berharga kepada penulis selama berkuliah dan staf departemen yang telah

banyak membantu penulis.

12. Sahabat-sahabatku (Teteh, Dhani, Gilang) atas bantuan, dorongan, doa, dan

persahabatan yang terjalin selama ini.

13. Teman-teman penelitian (Mbak Asih, Primus, Ade, Tuti, Jeng-jeng, Ina, Fena,

Martin, Kanin, Nunu, Vina, Dion, Fitri, Hanifah, Aan, Marto, Oboth, Tilo,

Bebe, Mitoel, Chusni, Eneng, April 41, Shinta 41, Erma 41, Kak Hadie 38,

Kak Steisi 39) atas bantuan yang diberikan selama penelitian.

14. Teman-teman seperjuangan ITP 40 yang tak terlupakan.

15. Teman-teman di Zulfa (Herher, Mbak Dias, Dewi, De Anis, Ibokh, Tria,

Hatur, De Ajeng, Siska, Erly, Bulan, Irma, De Ela, Nani) atas bantuan,

motivasi, kebersamaan, dan keceriaan yang dibagi selama ini.

16. Sepupu-sepupuku (Mas Budi, Mbak Ika, Mas Johan, dan De Angga) atas

perhatian, semangat, dan doa yang diberikan kepada penulis.

17. Serta seluruh pihak yang tidak dapat disebutkan satu-persatu.

Penulis menyadari bahwa skripsi ini tidak luput dari kekurangan dan

masih jauh dari sempurna. Oleh karena itu, kritik dan saran yang membangun

sangat diharapkan dari semua pihak. Akhir kata, penulis berharap semoga skripsi

ini dapat bermanfaat bagi semua pihak yang memerlukannya.

Bogor, Februari 2008

Penyusun

DAFTAR ISI

Halaman

KATA PENGANTAR ................................................................................... i

DAFTAR ISI .................................................................................................. iii

DAFTAR TABEL ......................................................................................... vv

DAFTAR GAMBAR ..................................................................................... ivi

DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................. vii

I. PENDAHULUAN ..................................................................................... 1

A. LATAR BELAKANG ........................................................................ 1 1

B. TUJUAN ............................................................................................. 22

II. TINJAUAN PUSTAKA .......................................................................... 33

A. BUAH MERAH (Pandanus conoideus Lam.) .................................... 33

1. Minyak dan Lemak ....................................................................... 77

2. Karotenoid ..................................................................................... 11

3. Tokoferol ...................................................................................... 12

B. TOKSIKOLOGI .................................................................................. 14

1. Definisi Toksikologi ..................................................................... 14

2. Paparan Umum Toksikologi ......................................................... 14

3. Pengujian Toksikologi .................................................................. 15

C. PENGUJIAN IN VIVO ........................................................................ 20

1. Biologi Mencit ............................................................................. 22

D. METABOLISME ................................................................................ 23

1. Peranan Organ-organ dalam Metabolisme Lemak ........................ 24

a. Lambung ................................................................................. 24

b. Usus ......................................................................................... 24

c. Hati .......................................................................................... 25

III. METODOLOGI PENELITIAN ............................................................ 27

A. BAHAN DAN ALAT ......................................................................... 27

1. Bahan ............................................................................................ 27

2. Alat ................................................................................................ 27

B. METODE PENELITIAN .................................................................... 27

1. Ekstraksi Buah Merah (Metode Sentrifugal) ................................ 27

2. Pengujian Toksisitas Akut Ekstrak Buah Merah ......................... 29

a. Persiapan Hewan Percobaan (Persiapan Ransum dan Masa

Adaptasi) ................................................................................. 29

b. Tahap Perlakuan (Pemberian Ekstrak Buah Merah) ............... 30

c. Masa Pengamatan ................................................................... 31

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................... 34

A. PENGARUH PROSES EKSTRAKSI TERHADAP RENDEMEN

EKSTRAK BUAH MERAH .............................................................. 34

C. TOKSISITAS AKUT EKSTRAK BUAH MERAH .......................... 36

1. Penentuan Derajat Toksisitas Ekstrak Buah Merah ...................... 36

2. Pengaruh Ekstrak Buah Merah Terhadap Berat Badan Mencit .... 38

3. Efek Toksik Ekstrak Buah Merah ................................................. 41

a. Ginjal ....................................................................................... 45

b. Hati .......................................................................................... 46

c. Jantung .................................................................................... 47

d. Lambung ................................................................................. 48

e. Limpa ...................................................................................... 49

f.. Paru-paru ................................................................................. 49

g. Usus ......................................................................................... 50

4. Pengaruh Sifat Kimia Ekstrak Buah Merah Terhadap Toksisitas

Akut ............................................................................................... 51

V. KESIMPULAN DAN SARAN ............................................................... 56

A. KESIMPULAN ................................................................................... 56

B. SARAN ............................................................................................... 56

DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 58

LAMPIRAN .................................................................................................. 64

DAFTAR TABEL

Halaman

Tabel 1. Kandungan senyawa aktif dalam sari buah merah ..................... 6 Tabel 2. Komposisi zat gizi buah merah per 100 gram bagian yang dapat dimakan ............................................................................ 7 Tabel 3. Kriteria derajat toksisitas ............................................................ 17 Tabel 4. Komposisi pakan hewan percobaan menurut AIN ..................... 30 Tabel 5. Rendemen ekstrak buah merah .................................................. 36 Tabel 6. Jumlah kematian mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB selama masa pengamatan ...... 38 Tabel 7. Hasil pengamatan tingkah laku dan gejala toksik pada mencit setelah pemberian fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB .................................................................... 41 Tabel 8. Hasil pengamatan efek toksik terhadap organ mencit setelah pemberian fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB ...... 43 Tabel 9. Hasil pengamatan efek toksik terhadap organ mencit setelah

pemberian fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB 44

Tabel 10. Sifat kimia ekstrak buah merah .................................................. 51

DAFTAR GAMBAR

Halaman

Gambar 1. Tanaman buah merah .............................................................. 44 Gambar 2. Daun dan akar tanaman buah merah ....................................... 34 Gambar 3. Buah merah kultivar merah panjang ....................................... 35 Gambar 4. Tahapan inisiasi dan propagasi pada reaksi oksidasi minyak ..................................................................................... 10 Gambar 5. Tahapan pertama reaksi dekomposisi peroksida ..................... 10 Gambar 6. Reaksi hidrolisis trigliserida oleh air ....................................... 10 Gambar 7. Tahapan proses ekstraksi buah merah (Metode Sentrifugal) ... 28 Gambar 8. Kondisi kandang mencit yang digunakan dalam pengujian .... 30 Gambar 9. Pencekokan ekstrak buah merah secara oral ........................... 31 Gambar 10. Teknik dislokasi leher .............................................................. 32 Gambar 11. Tahapan pengujian toksisitas akut ekstrak buah merah .......... 33 Gambar 12. Fraksi minyak (a) dan fraksi air (b) buah merah ..................... 34 Gambar 13. Tahapan proses ekstraksi buah merah (Metode Modifikasi 2) 35 Gambar 14. Perubahan rata-rata berat badan mencit setelah pemberian fraksi air buah merah dengan dosis 5-137200 mg/kgBB selama 96 jam .......................................................................... 39 Gambar 15. Perubahan rata-rata berat badan mencit setelah pemberian fraksi minyak buah merah dengan dosis 5-137200 mg/kgBB selama 96 jam .......................................................................... 39 Gambar 16. Visualisasi organ hasil pembedahan mencit perlakuan fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB ............................... 43 Gambar 17. Visualisasi organ hasil pembedahan mencit perlakuan fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB ....................... 44

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

Lampiran 1. Hasil penimbangan berat badan mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB selama masa adaptasi .............................................................. 64 Lampiran 2. Hasil penimbangan berat badan mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB selama masa pengamatan ........................................................ 65 Lampiran 3. Hasil analisis sidik ragam pengaruh dosis terhadap perubahan berat badan mencit perlakuan fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB .............................................. 66 Lampiran 4. Hasil analisis sidik ragam pengaruh dosis terhadap perubahan berat badan mencit perlakuan fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB .............................................. 66 Lampiran 5. Hasil analisis beda duncan pengaruh dosis terhadap perubahan berat badan mencit untuk perlakuan fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB ................................ 67 Lampiran 6. Hasil analisis beda duncan pengaruh dosis terhadap perubahan berat badan mencit untuk perlakuan fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB ........................ 67

I. PENDAHULUAN

A. LATAR BELAKANG

Indonesia merupakan negara subtropis yang kaya akan keanekaragaman

hayati, termasuk di dalamnya adalah tanaman yang dapat digunakan untuk

pengobatan. Kecenderungan masyarakat modern menggunakan obat alamiah

untuk keperluan medikasi saat ini, mendorong semakin intensifnya penelitian-

penelitian yang ditujukan untuk eksplorasi dan pemanfaatan tanaman-tanaman

yang diyakini mempunyai khasiat penyembuhan. Salah satu tanaman yang

memiliki efek farmakologi dan terkenal saat ini adalah buah merah.

Buah merah yang sudah dikenal baik oleh masyarakat Papua sering

dikonsumsi sebagai bahan makanan untuk menambah stamina dan tenaga. Selain

itu, buah merah ini juga digunakan dalam upacara-upacara adat. Hasil olahan dari

buah merah yang sangat dikenal adalah dalam bentuk minyak buah merah.

Buah merah yang sebelumnya hanya dibiarkan tumbuh liar dan hanya

sebagai sumber pangan, ternyata menyimpan potensi obat yang luar biasa, karena

adanya kandungan senyawa aktif berupa karotenoid, tokoferol, dan senyawa aktif

lainnya yang dapat digunakan sebagai obat. Senyawa aktif tersebut berperan

sebagai antioksidan yang mampu menetralisir senyawa radikal bebas dalam tubuh

yang merupakan sumber pemicu timbulnya berbagai penyakit.

Konsumsi bahan pangan merupakan salah satu kebutuhan utama manusia

dalam upaya mempertahankan dan menjalankan kehidupan. Semua yang

dikonsumsi manusia, baik yang berasal dari bahan pangan nabati maupun hewani,

mengandung aneka ragam zat yang bermanfaat dan sangat diperlukan tubuh untuk

menjalankan aktivitas. Tetapi zat-zat tersebut terkadang dapat menimbulkan

keadaan yang tidak diinginkan, seperti gejala sakit hingga kematian (Donatus,

2001). Hal ini disebabkan adanya kandungan zat kimia yang bersifat racun dalam

bahan pangan tersebut.

Semua bahan kimia akan beracun bila tidak diberikan secara proporsional.

Hal tersebut menyebabkan perlu dilakukannya uji toksisitas untuk menentukan

efek biologis negatif akibat dari pemberian suatu zat. Salah satu uji toksisitas

adalah uji toksisitas akut untuk menentukan Dosis Lethal (LD50), dimana LD50

didefinisikan sebagai dosis tunggal suatu zat yang secara statistik diharapkan akan

membunuh 50 % hewan percobaan. Dengan adanya uji tersebut diharapkan dapat

diperoleh batas aman pengkonsumsian suatu bahan agar tidak terjadi efek toksik.

B. TUJUAN

Tujuan penelitian ini adalah menguji toksisitas akut ekstrak buah merah

secara in vivo sehingga dapat diketahui batas dosis yang aman dalam

penggunaannya.

II. TINJAUAN PUSTAKA

A. BUAH MERAH (Pandanus conoideus Lam.)

Tanaman buah merah merupakan tanaman endemik Papua yang banyak

tumbuh liar di hutan-hutan. Pada habitat aslinya, tanaman buah merah tumbuh

baik di dataran rendah (40 m dpl) sampai dataran tinggi (2000 m dpl). Tanaman

buah merah tumbuh secara kompetitif di lingkungan dengan kondisi tanah lembab

dengan pH netral, suhu 23-33oC, dan kelembaban udara antara 73-98 % (Budi et

al., 2005). Buah merah dapat diklasifikasikan sebagai berikut:

Divisi : Spermatophytae

Kelas : Angiospermae

Sub-kelas : Monocotyledonae

Ordo : Pandanales

Famili : Pandanaceae

Genus : Pandanus

Spesies : Pandanus conoideus Lam.

Tanaman buah merah termasuk terna berbentuk semak, perdu, atau pohon.

Daun tunggal berbentuk lanset sungsang, berwarna hijau tua dan letaknya

berseling. Ujung daun runcing dan pangkal daun memeluk batang. Batang

tanaman bercabang banyak, tegak, bergetah, dan berwarna cokelat berbercak

putih. Tinggi tanaman ini mencapai 16 m dengan tinggi batang bebas cabang

5-8 m di atas permukaan tanah (Budi et al., 2005). Tanaman buah merah dapat

dilihat pada Gambar 1.

Akar tanaman berfungsi sebagai penyokong tegaknya tanaman dan

tergolong akar serabut dengan tipe perakaran dangkal. Akar tanaman cenderung

masuk hingga kedalaman tanah sekitar 94 cm. Akar-akar tunjang (prop-root)

muncul dari bagian batang dekat permukaan tanah. Akar tersebut berfungsi

sebagai penguat batang. Diameter akar terbesar berkisar 6.6-8 cm, sedangkan

terkecil sekitar 1.5-2.8 cm (Budi et al., 2005).

Gambar 1. Tanaman buah merah

Buahnya panjang dan memiliki bentuk silindris, menyerupai cempedak,

agak panjang, ujung tumpul, dan pangkal menggantung. Buah tersusun dari ribuan

biji yang berbaris rapi membentuk kulit buah. Biji kecil memanjang 9-13 mm

dengan bagian atas meruncing. Biji berwarna hitam kecokelatan dibungkus daging

tipis berupa lemak. Daging buah berwarna kuning, cokelat, atau merah,

tergantung dari jenisnya. Perkembangbiakan buah merah melalui pertunasan dan

biji yaitu tanaman buah merah yang tumbuh dan berbuah akan mengeluarkan

tunas-tunas di sekitar tanaman induk.

Gambar 2. Daun dan akar tanaman buah merah

Beberapa sentral tanaman buah merah yang terkenal di daerah Papua antara

lain Puncak Jaya, Timika, Tolikara, Sarmi, Manokwari, Jayawijaya, dan

Yahukimo. Menurut Budi dan Paimin (2004), buah merah juga dapat ditemukan

tumbuh di bagian utara Maluku yang menyebar di daerah pantai hingga daerah

pegunungan.

Beberapa ciri morfologi yang mantap dalam populasi Pandanus conoideus

Lam. yang dapat dipakai untuk membedakan kultivarnya adalah: warna buah,

ukuran buah, bentuk buah, bagian atas buah, dan bentuk tempurung atau endokarp

(Sadsoeitoeboen, 1999). Diperkirakan lebih dari 30 jenis atau kultivar buah merah

yang tersebar di dunia, termasuk di Papua. Namun, secara garis besar diketahui

ada empat kultivar yang banyak dikembangkan karena memiliki nilai ekonomis,

yakni kultivar merah panjang, merah pendek, cokelat, dan kuning

(Budi et al., 2005).

Gambar 3. Buah merah kultivar merah panjang

Kultivar merah panjang memiliki buah berbentuk silindris, ujung tumpul,

dan pangkal menjantung. Panjang buah sekitar 96-102 cm dengan diameter

15-20 cm. Bobotnya mencapai 7-8 kg. Warna buah merah bata saat muda dan

merah terang setelah matang. Buah dibungkus daun pelindung berbentuk lancip

dengan duri pada tulang utama sepanjang 8/10 bagian dari ujung.

Kultivar merah pendek memiliki buah berbentuk silindris, ujung melancip,

dan pangkal menjantung. Panjang buah mencapai 55 cm dengan diameter

10-15 cm. Bobot buah 2-3 kg. Warna buah merah kotor saat muda dan merah

terang saat matang. Buah terbungkus daun pelindung meruncing dengan duri

sepanjang 1/2 bagian tulang utama.

Buah dari jenis merah cokelat berbentuk silindris, ujung tumpul, dan

pangkal menjantung. Panjang buah 27-33 cm, diameter 6.9-12 cm, dan bobot

2-3 kg. Buah berwarna merah kecokelatan, tertutup daun pelindung meruncing,

dengan duri sepanjang 2/3 dari tulang utama.

Kultivar kuning berbentuk silindris, ujung tumpul dengan pangkal

menjantung. Panjang buah 35-42 cm dan berdiameter 11-12 cm. Daun pelindung

buah melancip. Tulang utama berduri sepanjang 1/3 bagian dari pangkalnya. Buah

muda hijau dengan bobot 2-3 kg.

Menurut Budi et al. (2005), buah merah ini mengandung senyawa aktif dan

komposisi gizi lengkap yang bermanfaat bagi kesehatan tubuh. Kandungan

senyawa aktif dalam sari buah merah dapat dilihat pada Tabel 1, sedangkan

komposisi zat gizi buah merah dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 1. Kandungan senyawa aktif dalam sari buah merah (Budi et al., 2005)

Senyawa aktif Kandungan Total karotenoid 12000 ppm Total tokoferol 11000 ppm β-karoten 700 ppm α-tokoferol 500 ppm Asam oleat 58 % Asam linoleat 8.8 % Asam linolenat 7.8 % Dekanoat 2.0 %

Secara tradisional, buah merah telah dikonsumsi masyarakat Papua secara

turun temurun sebagai campuran bahan pangan. Buah merah biasanya diolah

secara tradisional untuk mendapatkan minyak dan saus (Sadsoeitoeboen, 1999).

Buah merah juga digunakan dalam acara adat seperti perkawinan karena

merupakan lambang persahabatan. Bagi masyarakat Papua, buah ini juga dikenal

sebagai obat cacing, penyakit kulit, menghambat kebutaan, dan meningkatkan

stamina.

Tabel 2. Komposisi zat gizi buah merah per 100 gram bagian yang dapat dimakan (Sherly, 1998)

Zat gizi Kandungan Energi 394 kalori Protein 3.3 gram Lemak 28.1 gram Karbohidrat 31.9 gram Total serat 20.9 gram Kalsium 544 mg Fosfor 30 mg Besi 205 mg Vitamin B1 0.96 mg Vitamin C 15.7 mg Niasin 1.8 mg Air 34.9 gram

1. Minyak dan Lemak

Hasil ekstraksi buah merah umumnya berupa minyak. Hal ini disebabkan

buah merah mempunyai kadar lemak yang cukup tinggi. Minyak atau lemak

adalah trigliserida atau triasilgliserol (Fessenden dan Fessenden, 1992). Pada

umumnya untuk pengertian sehari-hari lemak merupakan bahan padat pada suhu

kamar, sedangkan minyak berbentuk cair pada suhu kamar, tetapi keduanya terdiri

dari molekul-molekul trigliserida (Winarno, 1997).

Selanjutnya Winarno (1997) juga menyatakan bahwa lemak merupakan

bahan padat pada suhu kamar. Hal ini dapat disebabkan kandungan asam lemak

jenuh yang tinggi di dalam lemak. Secara kimia, asam lemak jenuh dalam

konsentrasi tinggi tidak mengandung ikatan rangkap sehingga mempunyai titik

lebur yang tinggi. Lain halnya dengan minyak yang mempunyai titik lebur yang

rendah dan tetap berbentuk cair pada suhu ruang karena kandungan asam lemak

jenuh yang rendah dan tingginya kandungan asam lemak tidak jenuh yang

memiliki satu atau lebih ikatan rangkap diantara atom-atom karbonnya.

Sebagian besar trigliserida pada hewan berupa lemak, sedangkan trigliserida

dalam tanaman cenderung berupa minyak. Contoh lemak hewani antara lain

lemak babi dan lemak sapi, sedangkan contoh minyak nabati antara lain minyak

jagung dan minyak bunga matahari (Fessenden dan Fessenden, 1992).

Ketaren (1986) menyatakan molekul lemak disintesis melalui proses

kondensasi dari satu molekul gliserol dengan tiga molekul asam lemak. Molekul

gliserol dan asam lemak tersebut dibentuk dari hasil oksidasi karbohidrat selama

proses metabolisme berlangsung.

Proses pembentukan lemak dalam tanaman dapat dibagi menjadi tiga tahap,

yaitu pembentukan gliserol, pembentukan molekul asam lemak, dan kondensasi

asam lemak dengan gliserol membentuk lemak (Winarno, 1997). Pada sintesis

gliserol, fruktosa difosfat diuraikan oleh suatu enzim menjadi dihidroksi aseton

kemudian direduksi menjadi α-gliserofosfat. Gugus fosfat dihilangkan melalui

proses fosforilasi sehingga akan terbentuk molekul gliserol.

Fungsi utama lemak dalam tubuh adalah sebagai sumber energi. Lemak

yang dikonsumsi juga berfungsi sebagai sumber asam-asam lemak esensial

(linoleat, linolenat) dan sebagai pelarut atau sumber vitamin A, D, E, dan K.

Lemak merupakan sumber energi tersimpan yang utama sebab dapat

dimetabolisme dengan cepat oleh banyak sekali jaringan. Konsumsi lemak tidak

bertujuan menggantikan lemak tubuh karena karbohidrat dan protein dapat dengan

mudah diubah menjadi lemak. Secara kuantitatif lemak berguna sebagai pensuplai

energi tetapi untuk tujuan ini tidak selalu lemak yang digunakan. Energi dapat

diperoleh dari materi yang lain sehingga dalam hal ini tidak bersifat esensial

(Muchtadi, 1989).

Asam lemak dalam tubuh dapat dikelompokkan menjadi asam lemak jenuh

dan asam lemak tak jenuh. Asam lemak tak jenuh terdiri dari poly unsaturated

fatty acid (PUFA) dan mono unsaturated fatty acid (MUFA). PUFA terdiri dari

omega-6 dan omega-3 yang berturut-turut disintesa dari asam linoleat dan asam

linolenat. Sementara omega-9 (oleat) termasuk ke dalam kelompok MUFA.

Fungsi utama PUFA sebagai komponen struktural dan fungsional dari membran

sel, berperan pada proses inflamasi dan pengaturan fungsi sel serta sistem

pertahanan tubuh (Calder et al., 2002).

Buah merah mengandung asam lemak dalam jumlah tinggi. Dari 28 %

lemak yang terkandung di dalam buah merah, 85 % diantaranya adalah asam

lemak tidak jenuh. Kandungan omega-3 dan omega-9 dalam dosis tinggi pada

buah merah dapat memperlancar proses metabolisme dalam tubuh sebab kedua

senyawa tersebut mudah dicerna dan diserap (Budi et al., 2005). Asam lemak

esensial juga penting untuk berbagai proses fisiologis, termasuk mempertahankan

keutuhan membran sel dan struktur sel serta mensintesa senyawa biologis

(misalnya prostaglandin dan leukotrien), terbukti berperan dalam pertumbuhan

dan perkembangan, serta mencegah beberapa penyakit degeneratif.

Proses pengolahan minyak dan lemak yang dilakukan tergantung dari hasil

akhir yang dikehendaki. Ekstraksi adalah cara untuk mendapatkan minyak atau

lemak (Ketaren, 1986), sedangkan menurut Winarno (1997) lemak dan minyak

dapat diekstraksi dari jaringan hewan atau tanaman dengan tiga cara yaitu

rendering, pengepresan (pressing), atau ekstraksi dengan menggunakan pelarut.

Perubahan-perubahan kimia atau penguraian lemak dan minyak dapat

mempengaruhi bau dan rasa makanan, baik yang menguntungkan maupun yang

tidak. Pada umumnya penguraian lemak dan minyak menghasilkan zat-zat yang

tidak dapat dimakan. Kerusakan lemak dan minyak dapat menurunkan nilai gizi

serta dapat menyebabkan penyimpangan rasa dan bau pada lemak yang

bersangkutan (Winarno, 1997). Kerusakan minyak dapat terjadi akibat reaksi

oksidasi dan hidrolisis.

Kerusakan minyak atau lemak yang paling utama adalah timbulnya bau dan

rasa tengik. Ketengikan terjadi karena adanya reaksi autooksidasi radikal asam

lemak tidak jenuh yang terdapat di dalam lemak itu sendiri. Reaksi oksidasi ini

dapat berlangsung dengan adanya kontak antara sejumlah oksigen dengan minyak

atau lemak. Reaksi autooksidasi dimulai dengan terbentuknya peroksida yang

kemudian membentuk radikal bebas dan reaksi ini dipercepat dengan adanya

cahaya, panas, peroksida, dan logam-logam katalis seperti Cu, Fe, Co, dan Mn.

Reaksi oksidasi pada minyak dapat dilihat pada Gambar 4.

Dekomposisi peroksida juga terjadi pada minyak yang telah mengalami

proses pemanasan. Proses ini terjadi melalui beberapa tahapan. Tahap pertama,

yaitu terputusnya ikatan oksigen-oksigen pada gugus peroksida yang akan

menghasilkan senyawa alkoksi radikal dan hidroksi radikal seperti yang dapat


1. Reaksi inisiasi

RH (asam lemak bebas) R· (radikal bebas)

2. Reaksi propagasi

R· + O2 ROO·

ROO· + RH ROOH + R·

Gambar 4. Tahapan inisiasi dan propagasi pada reaksi oksidasi minyak

Reaksi hidrolisis dapat terjadi dengan adanya aktivitas air di dalam minyak

atau lemak. Minyak yang diekstrak dengan menggunakan air dan suhu tinggi

dapat menyebabkan proses hidrolisis. Minyak atau lemak yang mengalami reaksi

hidrolisis akan diubah menjadi asam-asam lemak bebas dan gliserol. Reaksi

hidrolisis yang dapat menyebabkan kerusakan minyak atau lemak dipercepat

dengan adanya basa, asam, dan enzim, seperti enzim lipase. Hidrolisis minyak

terjadi dengan adanya katalis enzim pada ikatan ester trigliserida sehingga

menghasilkan asam lemak bebas seperti yang terdapat pada Gambar 6.

Peningkatan asam lemak bebas juga dapat terjadi selama penyimpanan dan

pengolahan minyak atau lemak.

Gambar 5. Tahapan pertama reaksi dekomposisi peroksida

Gambar 6. Reaksi hidrolisis trigliserida oleh air

R1-CH-R2 R1-CH-R2 + ·OH O O OH (peroksida) (alkoksi radikal) (hidroksi radikal)

Enzim Trigliserida + H2O Digliserida + Monogliserida + ALB + Gliserol

Panas

2. Karotenoid

Salah satu kandungan senyawa aktif buah merah yang diunggulkan adalah

karotenoid yang dapat berpotensi sebagai antioksidan dan merupakan pigmen

warna pada buah merah. Karotenoid adalah pigmen alami berupa zat warna

kuning sampai merah yang mempunyai struktur alifatik atau alisiklik yang

tersusun oleh delapan unit isoprena dan empat gugus metil serta selalu terdapat

ikatan ganda terkonjugasi diantara gugus metil tersebut.

Karotenoid dapat dibagi atas dua golongan berdasarkan fungsinya yaitu

yang bersifat nutrisi aktif seperti β-karoten dan non nutrisi aktif seperti

fucoxanthin, neoxanthin, dan violaxanthin. Berdasarkan unsur penyusunnya,

karotenoid terdiri dari dua golongan yaitu karoten dan xantofil. Karotenoid

tersusun oleh unsur-unsur C dan H terdiri dari α-, β-, dan γ-karoten serta likopen.

Sedangkan xantofil tersusun oleh unsur-unsur C, H, dan O. β-karoten mempunyai

aktivitas provitamin A karena adanya cincin β-ionon yang tidak terhidroksilasi

(Olson, 1991). Bila teroksidasi, aktivitas karoten akan menurun karena terjadinya

perubahan isomer dari bentuk trans menjadi cis (Jensen et al., 1992).

Faktor utama yang mempengaruhi karoten selama pengolahan pangan dan

penyimpanan adalah oksidasi oleh oksigen udara dan perubahan struktur oleh

panas. Karotenoid memiliki ikatan ganda sehingga sensitif terhadap oksidasi.

Oksidasi karoten dipercepat dengan adanya cahaya, logam, panas, peroksida, dan

bahan pengoksida lainnya. Panas akan mendekomposisi karoten dan

mengakibatkan perubahan stereoisomer.

β-karoten mempunyai beberapa aktivitas biologis yang bermanfaat bagi

tubuh antara lain untuk menanggulangi kebutaan karena xeropthalmia,

meningkatkan imun tubuh, membantu diferensiasi sel-sel epitel, pertumbuhan,

reproduksi, dan sebagai antioksidan untuk mencegah timbulnya penyakit kanker,

mencegah proses penuaan dini serta mengurangi terjadinya penyakit degeneratif.

Dalam penelitian selama 20 tahun dengan memberikan 300 mg β-karoten

per hari terhadap manusia diperoleh bahwa β-karoten tidak bersifat toksik, hanya

saja menimbulkan efek samping seperti penampakan pigmen kuning atau jingga

pada kulit (Krinsky, 1988).

Hasil penelitian Alam et al. (1990) menunjukkan bahwa minyak yang

mengandung asam lemak tidak jenuh cenderung menurunkan efisiensi penyerapan

dan konversi β-karoten menjadi vitamin A dibanding minyak yang mengandung

asam lemak jenuh. Disamping itu, komposisi enzim-enzim pankreas dalam

dinding usus dan kesempurnaan sel-sel mukosa ikut berpengaruh. Keberadaan

vitamin E dalam tubuh juga meningkatkan jumlah β-karoten yang

ditransformasikan menjadi vitamin A, dimana vitamin E ini berperan untuk

menggantikan fungsi β-karoten sebagai antioksidan dari asam lemak tidak jenuh

rantai panjang. Efisiensi penyerapan vitamin A biasanya 80-90 % yang sedikit

berkurang pada dosis tinggi. Tetapi efisiensi penyerapan β-karoten lebih rendah

(40-60 %) dan turun secara cepat dengan makin tingginya dosis.

Karoten akan lebih efisien digunakan oleh tubuh dalam jumlah sedikit. Bila

karoten terlalu tinggi, efisiensi konversi karoten menjadi vitamin A akan

berkurang. Menurut Goodman et al. (1966), persentase β-karoten yang dikonversi

menjadi vitamin A sekitar 60-70 % dan yang diserap langsung sebagai β-karoten

sekitar 15-25 % (Blomstrand dan Werner, 1967). Karoten yang berlebihan akan

disimpan dalam jaringan lemak dan pada manusia hal ini akan menyebabkan

warna kekuningan pada lapisan jaringan lemak (Linder, 1992).

Buah merah mengandung karotenoid dalam jumlah yang tinggi. Dengan

tingginya kandungan senyawa tersebut, maka ekstrak buah merah dapat

bermanfaat sebagai antioksidan yang dapat menangkal radikal bebas di dalam

tubuh. Karotenoid dan β-karoten dalam konsentrasi tinggi dapat bermanfaaat

dalam pembentukan jaringan tubuh, membantu dalam pembentukan tulang dan

gigi, meningkatkan daya tahan tubuh, dan membentuk jaringan mata

(Calder et al., 2002).

3. Tokoferol

Tokoferol tersusun dari cincin aromatik tersubstitusi oleh metil dan rantai

panjang isoprenoid sebagai rantai samping (Lehninger, 1990). Terdapat empat

jenis tokoferol yaitu: α-, β-, δ-, dan γ-tokoferol. Jenis tokoferol ini ditentukan oleh

jumlah dan letak metil yang tersubstitusi pada cincin aromatik. Menurut

Lehninger (1990), aktivitas biologi terbesar dari keempat jenis tokoferol ini

berdasar urutannya dari aktivitas terbesar adalah: α-, β-, γ-, dan terendah adalah

δ-tokoferol.

Adanya ikatan tidak jenuh pada struktur tokoferol, menyebabkan senyawa

tersebut mudah teroksidasi. Oksidasi vitamin E dipercepat dengan adanya cahaya,

panas, kondisi alkali, dan adanya mineral kelumit seperti besi (Fe3+) dan tembaga

(Cu2+). Kehadiran asam askorbat akan mencegah efek katalitik dari ion ferri dan

cupro terhadap reaksi oksidasi vitamin E.

Menurut Lehninger (1990), tokoferol ditemukan pada minyak sayuran dan

terutama berlimpah jumlahnya pada kecambah. Hasil observasi dari Booth dan

Bradford (1963) dalam Draper (1970) menunjukkan bahwa kandungan vitamin E

yang tinggi dijumpai pada jaringan-jaringan berwarna hijau gelap, daun-daun

hijau, dan buah-buahan berwarna.

Dari beberapa kandungan senyawa aktif di dalam buah merah, tokoferol

merupakan senyawa yang terkandung dalam jumlah yang tinggi. Hal ini

menunjukkan bahwa ekstrak buah merah sangat berpotensi sebagai sumber

antioksidan yang dapat memperkuat sistem kekebalan tubuh, menahan radikal

bebas, dan mencegah penyakit degeneratif. Selain tokoferol, buah merah juga

mengandung α-tokoferol dalam jumlah yang tinggi. Senyawa ini dapat berfungsi

memperlambat proses penuaan, mencegah kanker, dan meningkatkan kesuburan.

Fungsinya sebagai antioksidan dapat melindungi vitamin A dari oksidasi di

dalam usus sehingga dapat meningkatkan proses penyerapan vitamin A (Guthrie,

1975). Menurut Linder (1992), manfaat lain dari vitamin E sebagai antioksidan

adalah mencegah cederanya dinding-dinding sel seperti kerapuhan sel-sel darah

merah pada manusia sehingga mencegah terjadinya hemolisis. Vitamin E juga

terlibat dalam beberapa proses sintesis seperti pemasangan pirimidin ke asam

nukleat, pembentukan sel darah merah dalam sumsum tulang, serta sintesis

koenzim-A yang penting dalam proses pernafasan (Winarno, 1992). Vitamin E

juga berperan untuk mencegah terjadinya oksidasi lipida dari asam-asam lemak

tidak jenuh dalam sel-sel tubuh (Bieri, 1987). Dalam istilah lain, vitamin E

disebut juga sebagai pembersih radikal bebas.

Diantara semua vitamin larut lemak, vitamin E adalah vitamin yang paling

sedikit menimbulkan efek racun bila dikonsumsi dalam jumlah yang tinggi

(Guthrie, 1975). Vitamin E tidak larut dalam air, larut dalam lemak, alkohol, serta

pelarut organik, dan minyak nabati (Desai dan Machlin, 1985 dalam Ball, 1988).

B. TOKSIKOLOGI

1. Definisi Toksikologi

Toksikologi adalah ilmu yang mempelajari efek kuantitatif zat kimia atas

jaringan biologi (Loomis, 1978). Secara sederhana dan ringkas, Lu (1995)

mendefinisikan toksikologi sebagai kajian tentang hakikat dan mekanisme efek

toksik berbagai bahan terhadap makhluk hidup dan sistem biologik lainnya.

Menurut Hodgson dan Levi (2000) toksikologi didefinisikan sebagai cabang

ilmu pengetahuan yang berhubungan erat dengan senyawa racun dimana racun

yang dimaksud adalah senyawa-senyawa yang menimbulkan efek merugikan

tubuh bila dikonsumsi baik secara sengaja maupun tidak sengaja. Senada dengan

Hodgson dan Levi, Donatus (2001) mendefinisikan toksikologi sebagai ilmu yang

mempelajari pengaruh kuantitatif zat kimia atas sistem-sistem biologi dengan

pusat perhatiannya terletak pada aksi berbahaya zat kimia tersebut.

2. Paparan Umum Toksikologi

Peristiwa timbulnya pengaruh berbahaya atau efek toksik racun terhadap

makhluk hidup terjadi melalui beberapa proses. Menurut Donatus (2001), pertama

kali makhluk hidup mengalami paparan dengan toksikan. Berikutnya, setelah

mengalami absorpsi dari tempat paparannya maka toksikan atau metabolitnya

akan terdistribusi ke tempat aksi (sel sasaran atau reseptor) tertentu yang ada di

dalam diri makhluk hidup. Di tempat aksi ini kemudian terjadi interaksi antara

toksikan atau metabolitnya dengan komponen penyusun sel sasaran atau reseptor

sehingga timbul pengaruh berbahaya atau efek toksik dengan wujud serta sifat

tertentu.

Ada dua kemungkinan toksikan masuk ke dalam tubuh, yakni secara

intravaskuler dan ekstravaskuler. Lebih lanjut Donatus (2001) mengemukakan

bahwa masuknya toksikan secara intravaskuler meliputi intravena, intrakardial,

dan intraarteri dimana toksikan langsung masuk ke dalam sirkulasi darah,

sedangkan masuknya toksikan secara ekstravaskuler meliputi peroral,

intramuskular, intraperitonial, subkutan, dan inhalasi dimana toksikan tidak

langsung masuk ke dalam sirkulasi darah. Toksikan yang masuk secara

ekstravaskuler selanjutnya akan masuk ke dalam sirkulasi darah setelah melalui

tahap absorpsi terlebih dahulu. Setelah toksikan berada dalam sirkulasi darah

maka toksikan akan mengalami distribusi ke tempat aksi (sel sasaran atau

reseptor).

Tubuh makhluk hidup memiliki sistem pertahanan terhadap zat-zat asing

atau xenobiotik yang masuk ke dalam tubuhnya. Secara alami, tubuh makhluk

hidup akan menolak dan mengekskresikan toksikan atau metabolitnya yang masuk

di dalam tubuhnya.

Namun bila kapasitas toksikan melebihi sistem pertahanan tubuh maka

toksikan yang berlebih tersebut selanjutnya akan bereaksi dengan sel sasaran atau

reseptor dimana reaksi antara toksikan atau metabolitnya dengan sel sasaran atau

reseptor dapat bersifat dapat balik (reversible) maupun tidak balik (irreversible).

Hal tersebut berakibat timbulnya efek toksik yang tidak diinginkan (Donatus,

2001).

3. Pengujian Toksikologi

Menurut Nicholson (1974), racun adalah suatu zat yang masuk ke dalam

tubuh yang dapat menyebabkan kerusakan organ sampai dengan kematian.

Timbulnya efek racun atau toksik di dalam suatu organisme yang disebabkan oleh

suatu zat tergantung pada banyaknya zat itu di suatu tempat yang rentan di dalam

tubuh. Pada dasarnya semua obat dapat bersifat toksik, tergantung besarnya dosis

yang diberikan. Efek toksik biasanya tercapai bila suatu rangsangan mencapai

suatu nilai tertentu sehingga timbul mekanisme biologis yang nyata. Besar

rangsangan sebanding dengan besar konsentrasi agen pada receptor site. Interaksi

racun dan sel tubuh dapat bersifat timbal balik (reversible) atau tak terbalikkan

(irreversible) (Donatus, 2001).

Toksisitas merupakan bagian yang tidak dapat dipisahkan dari farmakologi

yang merupakan efek biologis negatif akibat dari pemberian suatu zat. Toksisitas

suatu bahan dapat didefinisikan sebagai kapasitas bahan untuk mencederai suatu

organisme hidup. Pengetahuan mengenai bahan kimia dikumpulkan dengan

mempelajari efek-efek dari pemaparan bahan kimia terhadap hewan percobaan,

pemaparan bahan kimia terhadap organisme tingkat rendah seperti bakteri dan

kultur sel-sel dari mamalia di laboratorium, dan pemaparan bahan kimia terhadap

manusia.

Untuk menilai bahaya keracunan atau resiko toksisitas, sangat penting untuk

mengetahui perbandingan jumlah organisme terhadap jumlah zat yang mengenai

tubuh organisme tersebut maupun perbandingan dalam arti luas terhadap jumlah

zat yang terdapat di dalam lingkungan tersebut (Koeman, 1987). Derajat

keracunan suatu obat merupakan kelanjutan dari efek farmakodinamik atau karena

efek terapinya.

Uji toksisitas diperlukan untuk penelitian obat baru selain uji farmakokinetik

dan uji farmakodinamik. Uji farmakokinetik dilakukan melalui penelitian kondisi

obat di dalam tubuh, menyangkut absorbsi, distribusi, redistribusi,

biotransformasi, dan ekskresi obat. Sedangkan uji farmakodinamik dilakukan

untuk mengetahui efek biokimia, fisiologi obat, serta mekanisme kerja obat.

Uji toksisitas suatu senyawa dibagi menjadi dua golongan yaitu uji toksisitas

umum dan uji toksisitas khusus. Uji toksisitas umum meliputi berbagai pengujian

yang dirancang untuk mengevaluasi keseluruhan efek umum suatu senyawa pada

hewan uji. Pengujian toksisitas umum meliputi: pengujian toksisitas akut,

sub-akut, dan kronik. Pengujian toksisitas khusus meliputi uji potensiasi, uji

kekarsinogenikan, uji kemutagenikan, uji keteratogenikan, uji reproduksi,

kulit dan mata, serta perilaku (Loomis, 1978).

1) Uji toksisitas akut

Uji toksisitas akut merupakan uji untuk menentukan Dosis Lethal

(LD50), dimana LD50 didefinisikan sebagai dosis tunggal suatu zat yang secara

statistik diharapkan akan membunuh 50 % hewan percobaan. Uji toksisitas

akut ini dilakukan dengan memberikan zat kimia yang sedang diuji sebanyak

satu kali selama masa pengujian dan diamati dalam jangka waktu minimal 24

jam atau lebih (7-14 hari).

Uji toksisitas akut dirancang untuk menentukan efek toksik suatu

senyawa yang akan terjadi dalam waktu yang singkat setelah pemejanan atau

pemberiannya dengan takaran tertentu. Takaran dosis yang dianjurkan paling

tidak empat peringkat dosis, berkisar dari dosis terendah yang tidak atau

hampir tidak mematikan seluruh hewan uji sampai dengan dosis tertinggi yang

dapat mematikan seluruh atau hampir seluruh hewan uji. Biasanya

pengamatan dilakukan selama 24 jam, kecuali pada kasus tertentu selama 7-14

hari. Pengamatan tersebut meliputi: gejala-gejala klinis seperti nafsu makan,

bobot badan, keadaan mata dan bulu, tingkah laku, jumlah hewan yang mati,

serta histopatologi organ (Loomis, 1978).

Menurut Laurence dan Bennet (1995), dari uji toksisitas akut dapat

diperoleh gambaran kerugian yang terjadi akibat peningkatan dosis tunggal

dan bagaimana kematian dapat terjadi. Uji toksisitas akut dapat memberikan

gambaran tentang gejala-gejala ketoksikan terhadap fungsi penting seperti

gerak, tingkah laku, dan pernafasan yang dapat menyebabkan kematian. LD50

dapat dihubungkan dengan Efektif Dosis 50 (ED50) yaitu dosis yang secara

terapeutik efektif terhadap 50 % dari sekelompok hewan percobaan.

Hubungan tersebut dapat berupa perbandingan antara LD50 dengan ED50 dan

disebut Indeks Terapeutik (IT), yaitu perbandingan antara dosis obat yang

memberikan efek terapi yang samar dengan dosis obat yang menyebabkan

efek toksik yang nyata. Makin besar indeks terapeutik suatu obat makin aman

obat tersebut.

Keracunan akut dihasilkan dari jumlah racun yang relatif besar

memasuki tubuh dihitung dengan periode menit, jam, atau beberapa hari.

Evaluasi tidak hanya mengenai LD50, tetapi juga terhadap kelainan tingkah

laku, stimulasi, aktivitas motorik, dan pernapasan mencit atau hewan

percobaan lainnya untuk mendapatkan gambaran tentang sebab kematian

(Darmansjah, 1995). Tingkat keracunan senyawa kimia atau obat berdasarkan

nilai LD50 dan klasifikasi toksisitas akut dapat dilihat pada Tabel 3.

Tabel 3. Kriteria derajat toksisitas (Lu, 1995)

Kategori LD50 (mg/kgBB) Supertoksik 5 atau kurang

Amat sangat toksik 5 - 50 Sangat toksik 50 – 500 Toksik sedang 500 – 5000 Toksik ringan 5000 – 15000

Praktis tidak toksik > 15000

Faktor-faktor yang berpengaruh pada LD50 sangat bervariasi antara jenis

yang satu dengan jenis yang lain dan antara individu satu dengan individu

yang lain dalam satu jenis. Beberapa faktor tersebut antara lain:

a. Spesies, Strain dan Keragaman Individu

Setiap spesies dan strain yang berbeda memiliki sistem metabolisme

dan detoksikasi yang berbeda. Setiap spesies mempunyai perbedaan

kemampuan bioaktivasi dan toksikasi suatu zat (Siswandono dan

Bambang, 1995). Semakin tinggi tingkat keragaman suatu spesies dapat

menyebabkan perbedaan nilai LD50. Variasi strain hewan percobaan

menunjukkan perbedaan yang nyata dalam pengujian LD50 (Lazarovici

dan Haya, 2002).

b. Perbedaan Jenis Kelamin

Perbedaan jenis kelamin mempengaruhi toksisitas akut yang

disebabkan oleh pengaruh langsung dari kelenjar endokrin. Hewan betina

mempunyai sistem hormonal yang berbeda dengan hewan jantan sehingga

menyebabkan perbedaan kepekaan terhadap suatu toksikan (Lazarovici

dan Haya, 2002). Hewan jantan dan betina yang sama dari strain dan

spesies yang sama biasanya bereaksi terhadap toksikan dengan cara yang

sama, tetapi ada perbedaan kuantitatif yang menonjol dalam kerentanan

terutama pada tikus (Lu 1995).

c. Umur

Hewan-hewan yang lebih muda memiliki kepekaan yang lebih tinggi

terhadap obat karena enzim untuk biotransformasi masih kurang dan

fungsi ginjal belum sempurna (Ganong, 2003). Perbedaan aktivitas

biotransformasi akibat suatu zat menyebabkan perbedaan reaksi dalam

metabolisme (Mutschler, 1991). Sedangkan pada hewan tua kepekaan

individu meningkat karena fungsi biotransformasi dan ekskresi sudah

menurun.

d. Berat Badan

Penentuan dosis dalam pengujian toksisitas akut dapat didasarkan

pada berat badan. Pada spesies yang sama, berat badan yang berbeda dapat

memberikan nilai LD50 yang berbeda pula. Semakin besar berat badan

maka jumlah dosis yang diberikan semakin besar (Mutschler, 1991).

e. Cara Pemberian

Lethal dosis dipengaruhi pula oleh cara pemberian. Pemberian obat

melalui suatu cara yang berbeda pada spesies yang sama akan memberikan

hasil yang berbeda. Menurut Siswandono dan Bambang (1995), pemberian

obat peroral tidak langsung didistribusikan ke seluruh tubuh. Pemberian

obat atau toksikan peroral didistribusikan ke seluruh tubuh setelah terjadi

penyerapan di saluran cerna sehingga mempengaruhi kecepatan

metabolisme suatu zat di dalam tubuh (Mutschler, 1991).

f. Faktor Lingkungan

Beberapa faktor lingkungan yang mempengaruhi toksisitas akut

antara lain temperatur, kelembaban, iklim, perbedaan siang dan malam.

Perbedaan temperatur suatu tempat akan mempengaruhi keadaan fisiologis

suatu hewan.

g. Kesehatan hewan

Status hewan dapat memberikan respon yang berbeda terhadap suatu

toksikan. Kesehatan hewan sangat dipengaruhi oleh kondisi hewan dan

lingkungan. Hewan yang tidak sehat dapat memberikan nilai LD50 yang

berbeda dibandingkan dengan nilai LD50 yang didapatkan dari hewan sehat

(Siswandono dan Bambang, 1995).

h. Diet

Komposisi makanan hewan percobaan dapat mempengaruhi nilai

LD50. Komposisi makanan akan mempengaruhi status kesehatan hewan

percobaan. Defisiensi zat makanan tertentu dapat mempengaruhi nilai

LD50 (Balls et al., 1991).

2) Uji toksisitas sub-akut

Uji toksisitas sub-akut dilakukan dengan memberikan bahan berulang-

ulang, biasanya setiap hari atau lima kali seminggu, selama jangka waktu

± 10 % dari masa hidup hewan. Uji ini bertujuan memperoleh informasi

mengenai efek berbahaya yang mungkin terjadi pada penggunaan obat secara

berulang dalam jangka waktu tertentu.

3) Uji toksisitas kronik

Pada dasarnya, uji toksisitas kronik sama dengan uji toksisitas sub-akut.

Perbedaannya hanya terletak pada lamanya pemberian dosis dan masa

pengamatannya. Uji toksisitas kronik dilakukan dengan memberikan zat kimia

berulang-ulang selama masa hidup atau sebagian besar masa hidup hewan.

C. PENGUJIAN IN VIVO

Pengujian secara in vivo adalah pengujian yang dilakukan dengan

menggunakan hewan percobaan untuk mengetahui metabolisme suatu senyawa di

dalam tubuh. Hewan percobaan yang digunakan pada percobaan secara in vivo

harus dari jenis mamalia, karena hasilnya dapat diterapkan pada manusia. Ciri-ciri

hewan mamalia adalah hewan yang menyusui anaknya, berambut, berdarah panas,

mempunyai empat ruang jantung, dan melahirkan anak.

Beberapa hewan mamalia yang biasa digunakan sebagai hewan percobaan

misalnya mencit, tikus, marmut, kelinci, babi, hamster, monyet, dan anjing. Lima

macam basic stock tikus putih (Albino rat) antara lain Long Evans, Osborne,

Sherman, Sparague Dawley, dan Wistar. Albino rat sangat baik digunakan

sebagai hewan percobaan karena nokturnal (aktif pada malam hari, tidur di siang

hari), tidak mempunyai kantung empedu, tidak muntah, dan tidak berhenti tumbuh

meskipun setelah 100 hari pertumbuhan berkurang. Sedangkan mencit dipilih

sebagai hewan percobaan karena mudah diperoleh, murah, mudah dalam

penanganan, serta memiliki sistem biologi dan metabolisme yang hampir serupa

dengan manusia. Hewan yang digunakan harus benar-benar bebas dari mikroba

(germ-free), bebas dari semua mikroba patogen (pathogen-free), bebas dari

mikroba patogen tertentu (specific pathogen-free), dan tidak diperlakukan khusus

terhadap mikroorganisme lingkungannya.

Hewan percobaan sering disebut juga sebagai hewan laboratorium, yaitu

semua jenis hewan dengan persyaratan tertentu untuk dipergunakan sebagai salah

satu sarana dalam berbagai kegiatan penelitian biologi dan kedokteran. Hewan

percobaan adalah yang sengaja dipelihara dan diternakan untuk dipakai sebagai

hewan model guna mempelajari dan mengembangkan berbagai macam bidang

ilmu dan skala penelitian serta pengamatan laboratorium (Malole dan Pramono,

1989). Hewan sebagai model atau sarana percobaan haruslah memenuhi

persyaratan tertentu, antara lain persyaratan genetis atau keturunan dan

lingkungan yang memadai dalam pengelolaannya, disamping faktor ekonomi,

mudah tidaknya diperoleh, dan mampu memberikan reaksi biologis.

Kebutuhan gizi hewan selama percobaan harus dipenuhi antara lain

kebutuhan karbohidrat, lemak atau minyak, protein, vitamin, mineral, dan air.

Pemberian makanan dan minuman dilakukan secara berlebih (ad libitum). Malole

dan Pramono (1989) menyatakan bahwa hewan percobaan yang digunakan dalam

penelitian harus diberi makanan yang berkualitas baik untuk menjamin tingkat

pertumbuhan dan pembiakan yang normal dan membantu menjaga keseimbangan

gizi hewan percobaan. Kekurangan nilai gizi dapat menyebabkan tubuh bersisik,

pertumbuhan terhambat, dan kematian. Oleh karena itu, pemberian ransum yang

memenuhi standar harus diberikan kepada hewan percobaan setiap hari. Wadah

ransum dan botol minum juga diusahakan tetap bersih agar tidak mempengaruhi

jumlah makan dan minum hewan percobaan.

Kondisi kandang dan ruangan yang digunakan juga mempengaruhi kondisi

hewan percobaan selain makanan dan minuman. Suhu, kelembaban, cahaya, dan

kebisingan harus sesuai dengan kebutuhan hidup hewan uji (Siregar et al., 1991).

Hewan percobaan membutuhkan masa adaptasi terhadap lingkungan percobaan

selama 4-5 hari.

Di bidang toksikologi, penggunaan hewan percobaan dilakukan untuk

menguji keamanan atau efek samping dari suatu bahan kimia atau alami yang

sering dibubuhkan pada bahan makanan hewan serta manusia dengan tujuan

memberi warna yang menarik, aroma, obat, pencegahan penyakit, dan pengawet.

Karena tujuan akhir dari pengujian toksikologi ini adalah untuk keselamatan

manusia maka hewan percobaan yang digunakan adalah hewan-hewan yang

mempunyai sifat-sifat respon biologis dan adaptasi mendekati manusia (Malole

dan Pramono, 1989).

Penelitian dalam bidang toksikologi dan farmakologi memerlukan

serangkaian percobaan untuk mengetahui tingkat toksisitas dan keamanan obat.

Penggunaan berbagai tingkat dosis obat terhadap hewan percobaan dilakukan

untuk mendapatkan dosis terbesar yang tidak memberikan efek merugikan atau

dosis yang sangat besar yang dapat menimbulkan efek toksik yang jelas

(Darmansjah, 1995). Respon berbagai hewan percobaan terhadap uji toksisitas

dapat berbeda. Kepekaan terhadap zat toksik antara individu sejenis maupun

berbeda jenis dapat sangat bervariasi. Pada umumnya hal ini disebabkan oleh

perbedaan anatomi dan fisiologis, variasi dalam sifat keturunan, umur, dan kondisi

tubuh individu dalam satu jenis (Koeman, 1987).

1. Biologi Mencit

Mencit (Mus musculus) merupakan salah satu hewan percobaan yang sering

digunakan dalam penelitian. Hewan ini dinilai cukup efisien dan ekonomis karena

mudah dipelihara, tidak memerlukan tempat yang luas, waktu kebuntingan yang

singkat dan banyak memilki anak perkelahiran. Mencit mempunyai sifat-sifat

produksi dan reproduksi yang mirip dengan mamalia besar serta memiliki siklus

estrus yang pendek (Malole dan Pramono, 1989). Menurut Siregar et al. (1991)

hewan pengerat merupakan jenis hewan yang paling banyak digunakan pada

sebagian besar uji toksisitas.

Mencit dan tikus putih memiliki banyak data toksikologi, sehingga

mempermudah membandingkan toksisitas zat-zat kimia (Lu, 1995). Sistem

taksonomi mencit adalah sebagai berikut:

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata

Sub filum : Vertebrata

Kelas : Mamalia

Ordo : Rodentia

Genus : Mus

Spesies : Mus musculus

Mencit memiliki beberapa data biologis, diantaranya:

Lama hidup : 1-2 tahun

Lama produksi ekonomis : 9 bulan

Lama bunting : 19-21 hari

Kawin sesudah beranak : 1-24 jam

Umur disapih : 21 hari

Umur dewasa : 35 hari

Umur dikawinkan : 8 minggu

Siklus kelamin : poliestrus

Perkawinan : pada waktu estrus

Berat dewasa : 20-40 gram (jantan)

18-35 gram (betina)

Uterus : dua kornua, bermuara sebelum serviks

D. METABOLISME

Metabolisme adalah pertukaran zat yang meliputi pembentukan dan

penguraian zat organik dalam tubuh. Proses penguraian senyawa kompleks

menjadi bahan-bahan yang lebih sederhana disebut dengan istilah katabolisme.

Anabolisme digunakan untuk proses metabolisme dimana senyawa kompleks

disintesis dari bahan-bahan yang lebih sederhana (Manalu, 1999).

Menurut Hawab (2002), dengan adanya dua bentuk aktivitas metabolisme

yaitu katabolisme dan anabolisme yang masing-masing melepaskan dan

membutuhkan sejumlah energi bebas, dimana di satu pihak ada kelebihan energi,

dan di pihak lain ada kekurangan energi maka pada proses metabolisme ini

terdapat proses take and give untuk mencapai proses keseimbangan internal.

Sebagai hasil dari berbagai proses metabolisme akan dihasilkan energi yang

nantinya akan tersedia untuk digunakan dalam kerja mekanis dan untuk kerja

kimia seperti sintesis karbohidrat, protein, dan lemak (Manalu, 1999).

Metabolit adalah substansi yang dihasilkan oleh metabolisme atau proses

metabolik. Sebagian besar energi biologis untuk menjalankan reaksi biosintesis

berasal dari reaksi oksidasi metabolit-metabolit dengan oksigen sebagai pengikat

elektron dalam reaksi tersebut (Mathews et al., 2000). Enzim merupakan pengatur

dan pengkoordinir reaksi-reaksi metabolisme (Hawab, 2002). Jumlah enzim

dalam sebuah sel dapat berubah karena tanggapan terhadap adanya perubahan

kebutuhan metabolit (Mathews et al., 2000).

1. Peranan Organ-organ dalam Metabolisme Lemak

a) Lambung

Proses pertama yang terjadi di dalam lambung setelah makanan dicerna

adalah pembentukan emulsi minyak di dalam air, yang dihasilkan oleh

pergerakan mekanis lambung. Pencernaan lemak di dalam lambung sangat

terbatas. Adanya aksi proteolitik memungkinkan lipid dilepaskan dari

makanan, sedangkan aksi pengadukan lambung sangat membantu dalam

pembentukan emulsi. Lambung memproduksi lipase yang berbeda dengan

lipase pankreas. Lipase lambung aktif pada pH 3-4, serta lebih mudah

melepaskan asam lemak rantai sedang daripada rantai panjang (Muchtadi et

al., 1989).

b) Usus

Pada saat lemak memasuki usus halus, hormon kolesistokinin memberi

isyarat kepada kantung empedu untuk mengeluarkan cairan empedu yang

berperan sebagai bahan pengemulsi. Cairan empedu terdapat sebagai asam

empedu dan garam empedu. Asam empedu dapat menarik molekul lemak

yang telah dipecah menjadi bagian-bagian kecil ke dalam cairan tubuh. Lemak

dalam bentuk emulsi ini akan dicerna oleh enzim lipase yang berasal dari

dinding usus halus dan pankreas (Almatsier, 2002). Hampir setengah dari

trigliserida yang berasal dari makanan dihidrolisis secara sempurna oleh enzim

ini menjadi asam lemak dan gliserol. Selebihnya dipecah menjadi digliserida,

monogliserida, dan asam lemak.

Menurut Almatsier (2002), terdapat dua kemungkinan bila empedu

masuk ke dalam usus halus. Pertama, bahan empedu berfungsi sebagai

pengemulsi lemak sehingga diabsorpsi kembali oleh dinding usus dan

diedarkan kembali. Kedua, bahan empedu dalam usus halus diserap oleh serat

makanan tertentu (pektin dan gum yang larut air) dan dikeluarkan tubuh

dengan feses.

Fosfolipid dicerna oleh enzim fosfolipase yang dikeluarkan oleh

pankreas. Hasil pencernaannya adalah dua asam lemak dan lisofosfogliserida.

Ester kolesterol dihidrolisis oleh enzim kolesterol esterase yang dikeluarkan

oleh pankreas.

Absorpsi lipida terutama terjadi di dalam jejunum. Hasil pencernaan

lipida diabsorpsi ke dalam membran mukosa usus halus dengan cara difusi

pasif. Trigliserida dan lipida besar lainnya yang terbentuk dalam usus halus

dikemas untuk diabsorpsi secara aktif dan ditransportasi oleh darah. Bahan-

bahan ini bergabung dengan protein-protein khusus dan membentuk alat

angkut lipida yang dinamakan lipoprotein. Tubuh membentuk empat jenis

lipoprotein, yaitu kilomikron, Low Density Lipoprotein/LDL, Very Low

Density Lipoprotein/VLDL dan High Density Lipoprotein/HDL (Almatsier,

2002).

Kilomikron pada dasarnya mengemulsi lemak sebelum masuk ke dalam

aliran darah. Proses ini menyerupai kegiatan lesitin dan asam lemak dalam

usus halus dalam upaya mengemulsi lemak makanan selama pencernaan.

Dalam aliran darah trigliserida yang ada pada kilomikron dipecah menjadi

gliserol dan asam lemak bebas oleh enzim lipoprotein lipase yang berada pada

sel-sel endotel.

Sebagian asam lemak yang terbentuk di dalam tubuh diabsorpsi oleh sel-

sel otot, lemak dan sel-sel lain. Asam lemak ini dapat langsung digunakan

sebagai zat energi atau diubah kembali menjadi trigliserida. Sedikit lemak dan

kolesterol yang terkurung dalam serat makanan akan dikeluarkan melalui feses

(Almatsier, 2002).

c) Hati

Sebagian besar trigliserida yang telah dipisahkan dari kilomikron, yaitu

berupa kolesterol dan protein, akan dibawa ke hati dan mengalami

metabolisme. Hati merupakan alat memproduksi lipida utama di dalam tubuh.

Sel-sel lemak tidak membuat lemak, tetapi hanya menyimpan lemak.

Di dalam hati, lipida dipersiapkan menjadi lipoprotein sehingga dapat

diangkut melalui aliran darah. Lipoprotein yang dibentuk dalam hati ini adalah

VLDL, yaitu lipoprotein dengan densitas sangat rendah yang terutama terdiri

atas trigliserida. Bila VLDL meninggalkan hati, lipoprotein lipase kembali

bekerja dengan memecah trigliserida yang ada pada VLDL. VLDL kemudian

mengikat kolesterol yang ada pada lipoprotein lain dalam sirkulasi darah.

Dengan berkurangnya trigliserida, VLDL bertambah berat dan menjadi LDL,

yaitu lipoprotein dengan densitas rendah.

Reseptor LDL yang ada di dalam hati akan mengeluarkan LDL dari

sirkulasi. Pembentukan LDL oleh reseptor ini penting dalam pengontrolan

kolesterol darah. Bila sel-sel lemak membebaskan gliserol dan asam lemak,

kemungkinan kolesterol dan fosfolipida akan dikembalikan pula ke dalam

aliran darah. Hati dan usus halus akan memproduksi HDL (lipoprotein dengan

densitas tinggi) yang masuk ke dalam aliran darah. HDL mengambil kolesterol

dan fosfolipida yang ada di dalam aliran darah. HDL menyerahkan kolesterol

ke lipoprotein lain untuk diangkut kembali ke hati guna diedarkan kembali

atau dikeluarkan dari tubuh (Almatsier, 2002). Disamping melewati siklus

antara hati dan sel-sel tubuh lain, lipoprotein dan kolesterol dapat diubah oleh

hati menjadi bahan empedu dan disimpan dalam kantung empedu.

Hati berfungsi sebagai pengatur lemak secara normal bukan sebagai

akumulator. Hati menjaga kandungan lemaknya relatif seragam sebesar 3-8 %,

walaupun sejumlah besar lemak ditimbun di jaringan lemak. Sumber cadangan

utama lemak ada di lapisan subkutan yang biasanya adalah yang terbesar, tapi

cadangan penting lainnya ada di jaringan ikat intermuskular, omentum,

mesenteries, dan jaringan ikat yang melapisi organ-organ seperti jantung dan

ginjal (Mitchel, 1956).

III. METODOLOGI PENELITIAN

A. BAHAN DAN ALAT 1. Bahan

Bahan baku yang digunakan adalah buah merah varietas merah panjang

yang diperoleh dari Drs. I Made Budi dalam bentuk fraksi minyak dan fraksi air

hasil metode ekstraksi sentrifugal (Gambar 7). Kedua fraksi tersebut dikemas

dalam botol plastik berwarna gelap (tidak transparan). Sedangkan bahan-bahan

yang diperlukan dalam analisis toksisitas akut adalah mencit jantan, sekam, dan

ransum standar.

2. Alat

Peralatan yang digunakan terdiri dari sentrifugator, lemari pendingin, neraca

analitik, peralatan gelas, kandang non metabolik, sonde, ram kawat, peralatan

bedah, masker, dan sarung tangan.

B. METODE PENELITIAN

Sebelum dilakukan pengujian toksisitas akut, terlebih dahulu dilakukan

ekstraksi buah merah dengan metode sentrifugal dan penentuan sifat fisiko-kimia

ekstrak buah merah. Proses ekstraksi buah merah untuk mendapatkan fraksi

minyak dan fraksi air dilakukan di Papua oleh Drs. I Made Budi. Adapun data

sifat kimia yang tercantum dalam skripsi ini merupakan hasil kerjasama dengan

Andini Julia Selly (F24103067) dan Eka Kurnia Sari (F24103116) yang dituliskan

dalam skripsi Selly (2008).

1. Ekstraksi Buah Merah (Metode Sentrifugal)

Buah merah yang digunakan dalam penelitian ini adalah dalam bentuk fraksi

air dan fraksi minyak. Kedua fraksi tersebut diperoleh dari proses ekstraksi

metode sentrifugal. Tahapan proses ekstraksi buah merah dapat dilihat pada

Gambar 7.

Gambar 7. Tahapan proses ekstraksi buah merah (Metode Sentrifugal)

Pembelahan dan pengeluaran empulur

Daging buah

Pemotongan

Pencucian dengan air bersih

Pengukusan pada suhu 75oC selama 30 menit

Pengepresan dengan hydraulic pressure 1010 psi

Pengendapan (sentrifugasi 15 menit, 888 x g)

Minyak

Ampas (biji dan serat)

Pemvakuman(30 menit, 50oC)

Fraksi minyak murni

Analisis sifat fisiko-kimia dan toksisitas akut

Pasta

Penyaringan

Pasta (air dan endapan)

Pengendapan (sentrifugasi 15 menit, 888 x g)

Fraksi air Endapan

Buah merah matang

Buah merah varietas merah panjang matang dibelah menjadi dua, kemudian

dikeluarkan bagian empulurnya (bagian kayu di bagian tengah buah). Daging

buah dipotong-potong dan dicuci dengan air bersih. kemudian dikukus (75oC; 30

menit). Daging buah yang telah dikukus selanjutnya dipres dengan tekanan 1010

psi sehingga diperoleh minyak yang masih tercampur air dan pasta. Campuran

tersebut disentrifus dengan kecepatan 888 x g selama 15 menit sehingga fase

minyak terpisah. Fase minyak yang diperoleh kemudian divakum (30 menit,

50oC) untuk menghilangkan air dari minyak sehingga komponen aktif ekstrak

buah merah tidak banyak mengalami kerusakan. Selanjutnya dilakukan proses

filtrasi untuk mengikat pasta granula amilum di dalam minyak sehingga diperoleh

fraksi minyak murni. Pasta yang diperoleh dari proses pemisahan dengan minyak,

disentrifugasi kembali sehingga diperoleh fraksi air yang akan dianalisis.

2. Pengujian Toksisitas Akut Ekstrak Buah Merah (EPA, 1998)

Prinsip pengujian toksisitas akut adalah pemberian bahan uji pada beberapa

kelompok hewan uji sebanyak satu kali selama masa pengujian dengan berbagai

tingkatan dosis. Selanjutnya dilakukan pengamatan terhadap adanya efek toksik

dan kematian. Hewan yang mati selama pengujian dan yang hidup sampai akhir

masa pengujian dibedah untuk dilakukan evaluasi.

a. Persiapan Hewan Percobaan (Persiapan Ransum dan Masa Adaptasi)

Pengujian toksisitas akut ekstrak buah merah secara in vivo

menggunakan mencit sebagai hewan percobaan. Mencit yang digunakan

adalah mencit jantan berumur 6 minggu dengan bobot tubuh rata-rata 20 g.

Hewan percobaan diberi ekstrak buah merah yaitu fraksi minyak dan fraksi air

hasil metode sentrifugal.

Mencit diadaptasikan selama satu minggu. Selama masa adaptasi, mencit

diberi ransum dan minuman secara ad libitum. Formulasi makanan mencit

yang diberikan adalah berdasarkan AIN (American Institute of Nutrition)

(Reeves et al., 1993) seperti yang tersaji pada Tabel 4.

Pada pengujian toksisitas akut, disiapkan 6 kelompok mencit

(berdasarkan dosis yang diberikan), dimana tiap-tiap kelompok terdiri dari 5

ekor mencit. Kandang yang digunakan adalah kandang non metabolik dan

dibersihkan setiap 2-3 hari sekali serta sekam diganti untuk menjaga

kelembaban lingkungan. Kondisi kandang yang digunakan dalam pengujian

dapat dilihat pada Gambar 8.

Tabel 4. Komposisi pakan hewan percobaan menurut AIN

Komposisi Jumlah (g bahan/kg diet) Minyak kedelai (Happy Salad Oil) Kasein CMC (Carboxy Methyl Cellulose) Campuran mineral Campuran vitamin (Sakatonik ABC) Tepung maizena Tepung gula

70 200 50 35 10 535 100

Gambar 8. Kondisi kandang mencit yang digunakan dalam pengujian

b. Tahap Perlakuan (Pemberian Ekstrak Buah Merah)

Pada setiap kelompok diberikan ekstrak buah merah secara oral

(pencekokan menggunakan sonde) dengan beberapa tingkatan dosis, yaitu 0

(sebagai kontrol), 5, 50, 500, 5000, dan 50000 mg/kg BB. Penentuan dosis ini

mengacu pada kriteria derajat toksisitas (Lu, 1995) yang dapat dilihat pada

Tabel 3. Karena pada keenam tingkatan dosis tersebut belum ditemukan efek

toksik dan nilai LD50 belum dapat ditentukan, maka dilakukan pengujian

kembali.

Pada pengujian selanjutnya digunakan empat peringkat dosis dengan

perkalian 1.4 dimulai dari dosis terendah (50000 mg/kgBB) sampai dengan

dosis tertinggi (137200 mg/kgBB) yang merupakan dosis maksimal yang

secara teknis dapat diberikan kepada mencit. Menurut Siregar et al. (1991)

dosis uji yang ditetapkan dibagi menjadi beberapa tingkat dosis dengan faktor

perkalian tetap 1.2 sampai 1.6. Volume maksimum pemberian bahan uji

(cairan) untuk mencit secara oral adalah sekitar 3 ml (Puryanti, 2006). Teknik

pencekokan secara oral dapat dilihat pada Gambar 9.

Semua mencit yang digunakan dalam pengujian dipuasakan selama 24

jam (hanya diberi minum) sebelum diberi perlakuan agar sampel (bahan yang

diujikan) dapat terabsorpsi lebih sempurna di dalam pencernaan sehingga

pemberian sampel lebih efektif, serta mencegah timbulnya efek-efek tertentu,

seperti muntah pada saat pemberian zat. Setelah dipuasakan 24 jam, mencit

diberi perlakuan pencekokan sampel yaitu fraksi minyak dan fraksi air buah

merah dengan berbagai tingkatan dosis. Pemberian ransum kembali dilakukan

4 jam setelah pemberian sampel. Pengujian toksisitas akut ini dilakukan

sebanyak dua kali ulangan.

Gambar 9. Pencekokan ekstrak buah merah secara oral

c. Masa Pengamatan

Pengamatan dilakukan selama 96 jam. Jumlah kematian diamati dan

dicatat pada jam ke-0, ke-1, ke-2, ke-3, ke-24, ke-48, ke-72, dan ke-96 setelah

pemberian dosis. Hal ini berdasarkan pada standar Environmental Protection

Agency (EPA, 1998) yang menyatakan bahwa LD50 digunakan untuk

mengetahui kematian 50 % hewan percobaan dalam 24-96 jam. Data jumlah

hewan yang mati pada setiap kelompok peringkat dosis dipergunakan untuk

memperhitungkan nilai LD50 menggunakan salah satu metode statistika yang

sesuai, salah satunya adalah metode Thomson dan Weil (1952), dengan

rumus:

Log LD50 = Log D + d (f + 1)

Untuk kisaran LD50 digunakan rumus :

Keterangan: D = dosis terkecil yang digunakan d = logaritma kelipatan dosis f = suatu faktor pada tabel ( n = jumlah hewan percobaan per kelompok, k = jumlah kelompok hewan percobaan – 1) δf = suatu nilai pada tabel yang tergantung pada nilai n dan k

Pada setiap kematian yang terjadi selama masa pengamatan dan pada

akhir pengujian dilakukan pembedahan untuk pengamatan organ secara

makroskopik. Sebelum dilakukan pembedahan, mencit dibunuh dengan cara

dislokasi leher, yaitu perusakan hubungan antara tulang leher dan kepala yang

menyebabkan tulang leher terpisah dari kepala dan merusak jaringan syaraf

pengatur kesadaran (Malole dan Pramono, 1989). Teknik dislokasi leher dapat


Gambar 10. Teknik dislokasi leher

Selain kematian, dilakukan pula pengamatan terhadap berat badan,

tingkah laku dan gejala toksik, serta penemuan makropatologi. Pengamatan

berat badan dilakukan dengan melakukan penimbangan 2 hari sekali selama

masa adaptasi dan setiap hari selama masa pengamatan. Tingkah laku dan

gejala toksik diamati pada jam-jam pengamatan, yang meliputi cara berjalan

dan perubahan warna feses. Pengamatan organ dilakukan secara makroskopis,

sehingga yang diamati hanya sebatas warna dan penampilan organ. Organ

yang diamati meliputi: lambung, hati, limpa, ginjal, jantung, paru-paru, dan

usus. Tahapan pengujian toksisitas akut ekstrak buah merah dapat dilihat pada

Gambar 11.

Log LD50 ± 2 d . δf

Gambar 11. Tahapan pengujian toksisitas akut ekstrak buah merah

Mencit (6 minggu, ± 20 gram)

Pengelompokkan (@ 5 ekor)

Proses adaptasi selama 1 minggu (pemberian ransum dan minum secara ad libitum)

Dipuasakan selama 24 jam

Pemberian fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

Pengamatan selama 96 jam (Hal yang diamati: jumlah kematian, berat badan, tingkah laku dan gejala

toksik, serta pengamatan organ secara makroskopik)

Penentuan derajat toksisitas

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

A. PENGARUH PROSES EKSTRAKSI TERHADAP RENDEMEN EKSTRAK BUAH MERAH

Ekstrak buah merah berupa fraksi minyak dan fraksi air yang digunakan

dalam penelitian ini merupakan hasil ekstraksi yang diperoleh dari Papua. Fraksi

minyak dan fraksi air buah merah dapat dilihat pada Gambar 12. Kedua ekstrak

tersebut diperoleh dari satu rangkaian metode ekstraksi sentrifugal menggunakan

pengepresan mekanis, seperti yang telah tercantum dalam bab sebelumnya

(Gambar 7).

Gambar 12. Fraksi minyak (a) dan fraksi air (b) buah merah

Metode ekstraksi sentrifugal yang digunakan untuk mengekstrak buah merah

memiliki beberapa persamaan tahap dengan metode ekstraksi buah merah yang

dilakukan oleh Susanti (2006), yaitu pengukusan, pengepresan, sentrifugasi, dan

penguapan. Metode ekstraksi modifikasi 2 tersebut dapat dilihat pada Gambar

13.

Tujuan ekonomis dari setiap proses ekstraksi minyak adalah untuk

memperoleh nilai rendemen yang setinggi-tingginya. Rendemen merupakan salah

satu parameter untuk mengetahui seberapa besar produk yang dihasilkan dari

suatu proses, yang dinyatakan dengan perbandingan antara jumlah produk yang

dihasilkan dengan jumlah bahan yang digunakan. Hasil rendemen dari proses

ekstraksi metode sentrifugal dapat dilihat pada Tabel 5.

Menurut Budi et al. (2005), rendemen fraksi minyak buah merah yang

dihasilkan adalah sebesar 15 % dari buah merah utuh, sedangkan dari 3 liter pasta

(a) (b)

diperoleh 1.6 liter atau sekitar 53 % fraksi air. Rendemen fraksi minyak pada

metode sentrifugal lebih rendah jika dibandingkan dengan metode ekstraksi

modifikasi 2 yang menghasilkan rendemen minyak buah merah sebesar 18 %.

Perbedaan rendemen minyak yang dihasilkan dari kedua metode tersebut

disebabkan adanya perbedaan dalam tahapan dan parameter proses ekstraksi.

Gambar 13. Tahapan proses ekstraksi buah merah (Metode Modifikasi 2)

Buah merah segar

Pembelahan dan pembuangan empulur

Penimbangan (1 kg daging buah)

Pengukusan (100oC, 15 menit)

Penambahan air (2 L, 80 oC)

Pemisahan biji dan daging buah

Pasta Biji

Pengepresan (P 4000 – 4500 psi)

Pengendapan (sentrifugasi 1998 x g, 10 menit)

Minyak kasar

Ampas

Penguapan vakum (50 oC, 15 menit) Minyak (ekstrak buah merah)

Tabel 5. Rendemen ekstrak buah merah

Fraksi Rendemen (%) Metode sentrifugal Metode modifikasi 2b

Minyak 15 18 Air 53a -

a dihitung dari pasta sisa b sumber: Susanti (2006)

Tahapan penambahan air pada metode modifikasi 2 dapat mempercepat

penetrasi panas dalam bahan, yang berasal dari uap air panas. Hal ini

mengakibatkan penggumpalan protein bahan lebih sempurna dan minyak lebih

mudah keluar sehingga rendemen pengepresan menjadi lebih tinggi. Sedangkan

pada proses ekstraksi metode sentrifugal tidak digunakan pelarut. Menurut

Thieme (1968), ekstraksi dengan pelarut lebih cocok untuk bahan yang rendah

kandungan minyaknya.

Rendemen juga dipengaruhi oleh suhu pemanasan dan besarnya tekanan

pengepresan. Suhu pengukusan dan tekanan pengepresan pada metode modifikasi

2 lebih tinggi dibandingkan pada metode sentrifugal. Dalam proses ekstraksi

minyak biji jarak, semakin tinggi suhu pemanasan menyebabkan bahan menjadi

semakin lunak dan protein dalam bahan semakin mudah terkoagulasi sehingga

menghasilkan rendemen yang semakin meningkat (Liestiyani, 2000). Rendemen

yang dihasilkan juga akan semakin tinggi seiring dengan semakin besarnya

tekanan pengepresan hingga mencapai tekanan optimum. Semakin besar tekanan

yang digunakan, menyebabkan daya tekan alat terhadap biji semakin besar

sehingga jaringan bahan semakin mudah rusak dan minyak dalam biji semakin

mudah keluar (Liestiyani, 2000).

B. TOKSISITAS AKUT EKSTRAK BUAH MERAH

1. Penentuan Derajat Toksisitas Ekstrak Buah Merah

Hasil pengamatan secara periodik dari jam ke-1 sampai dengan jam ke-96,

tidak ditemukan adanya mencit yang mati pada setiap peringkat dosis untuk kedua

fraksi yang diujikan. Berdasarkan hasil tersebut dapat diketahui derajat toksisitas

untuk fraksi minyak buah merah dan fraksi air buah merah menurut klasifikasi

toksisitas relatif (Lu, 1995) adalah praktis tidak toksik dengan nilai LD50 di atas

15000 mg/kgBB sebab tidak ditemukan adanya kematian pada tingkat dosis

5 mg/kgBB hingga 50000 mg/kgBB. Karena nilai LD50 belum dapat ditentukan,

maka pengujian dilanjutkan kembali menggunakan dosis yang lebih tinggi dengan

batasan dosis tertinggi adalah dosis yang secara teknis masih dapat diberikan pada

hewan uji.

Hasil pengamatan secara periodik dari jam ke-1 sampai dengan jam ke-96,

tidak ditemukan adanya mencit yang mati pada dosis 50000 sampai dengan

137200 mg/kgBB untuk kedua fraksi yang diujikan. Data jumlah kematian mencit

untuk perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5 sampai dengan 137200

mg/kgBB selama pengamatan dapat dilihat pada Tabel 6. Berdasarkan hasil pada

Tabel 6, dapat dianggap bahwa dosis 137200 mg/kgBB sebagai nilai LD50 untuk

fraksi air dan fraksi minyak buah merah. Donatus dan Nurlaila (1986) menyatakan

bahwa bila tidak dijumpai adanya hewan yang mati pada setiap kelompok

peringkat dosis, maka dosis tertinggi yang secara teknis dapat diberikan pada

hewan uji, dianggap sebagai nilai LD50nya.

Nilai LD50 bukan suatu tetapan biologi yang mutlak, melainkan hanya

merupakan salah satu petunjuk toksisitas akut (Siregar et al., 1991). Bila toksisitas

akutnya rendah LD50 tidak perlu ditentukan secara tepat dan suatu angka perkiraan

sudah dapat memberi manfaat (Lu, 1995). Informasi bahwa dosis yang cukup

besar saja menyebabkan hanya sedikit kematian, mungkin cukup (EPA, 1988).

Menurut Lu (1995), apabila sejumlah zat diberikan kepada hewan dengan dosis

tinggi dan tidak ada hewan yang mati, dianggap bahwa semua toksisitas akut yang

berbahaya dapat diabaikan.

Hasil pengujian toksisitas akut dipengaruhi oleh beberapa faktor seperti

spesies, keragaman individu, jenis kelamin, umur, berat badan, cara pemberian,

kesehatan hewan, dan lingkungan (Balls et al., 1991). Faktor-faktor tersebut

dianggap seragam sehingga respon yang dihasilkan hanya dipengaruhi perlakuan.

Ketidaktoksikan ekstrak buah merah juga telah dibuktikan oleh penelitian

Sukirno (2007). Penelitian tersebut dilakukan secara in vitro menggunakan sel

limfosit manusia. Berdasarkan penelitian tersebut, diperoleh hasil bahwa

penambahan ekstrak air, ekstrak metanol, ekstrak n-heksan, dan minyak buah

merah relatif tidak menyebabkan toksisitas terhadap sel limfosit manusia.

Tabel 6. Jumlah kematian mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB selama masa pengamatan

Sampel

Dosis (mg/kg BB)

Jumlah mencit yang mati pada jam ke- 0 1 2 3 24 48 72 96

Fraksi air

5 0 0 0 0 0 0 0 0 50 0 0 0 0 0 0 0 0 500 0 0 0 0 0 0 0 0 5000 0 0 0 0 0 0 0 0 50000 0 0 0 0 0 0 0 0 70000 0 0 0 0 0 0 0 0 98000 0 0 0 0 0 0 0 0 137200 0 0 0 0 0 0 0 0

Fraksi minyak

5 0 0 0 0 0 0 0 0 50 0 0 0 0 0 0 0 0 500 0 0 0 0 0 0 0 0 5000 0 0 0 0 0 0 0 0 50000 0 0 0 0 0 0 0 0 70000 0 0 0 0 0 0 0 0 98000 0 0 0 0 0 0 0 0 137200 0 0 0 0 0 0 0 0

2. Pengaruh Ekstrak Buah Merah Terhadap Berat Badan Mencit

Selain jumlah kematian, dilakukan pula pengamatan terhadap berat badan

mencit untuk mengetahui perubahan berat badan mencit yang merupakan salah

satu parameter dari efek toksik. Menurut Lu (1995), berkurangnya pertambahan

berat badan merupakan indeks efek toksik yang sederhana namun sensitif.

Penimbangan berat badan dilakukan 2 hari sekali selama masa adaptasi dan setiap

hari selama masa pengamatan. Hasil penimbangan rata-rata berat badan mencit

selama masa adaptasi dan pengamatan pada perlakuan fraksi air dan minyak dosis

5-137200 mg/kgBB dapat dilihat pada Lampiran 1 dan 2. Perubahan rata-rata

berat badan untuk perlakuan fraksi air dan minyak dosis 5-137200 mg/kgBB

dapat dilihat pada Gambar 14 dan 15.

Berdasarkan data tersebut terlihat adanya peningkatan rata-rata berat badan

mencit selama masa adaptasi dengan kisaran 1-3 gram per hari. Selain

peningkatan berat badan, terjadi pula peningkatan dalam konsumsi makanan. Hal

ini terlihat dari berkurangnya sisa ransum yang diberikan setiap harinya.

Konsumsi ransum mulai stabil pada hari ke-3, yang ditandai dengan habisnya

ransum yang diberikan. Adanya peningkatan berat badan dan konsumsi makanan

selama masa adaptasi tersebut menandakan bahwa mencit-mencit yang digunakan

telah mampu beradaptasi dengan ransum standar yang diberikan sehingga cukup

mampu pula untuk diberi perlakuan.

Gambar 14. Perubahan rata-rata berat badan mencit setelah pemberian fraksi air buah merah dengan dosis 5-137200 mg/kgBB selama 96 jam

Gambar 15. Perubahan rata-rata berat badan mencit setelah pemberian fraksi minyak buah merah dengan dosis 5-137200 mg/kgBB selama 96 jam

-1

-0,5

0

0,5

1

1,5

5 50 500 5000 50000 70000 98000 137200

Dosis (mg/kgBB)

Peru

baha

n be

rat b

adan

(gra

m)

jam ke-24jam ke-48jam ke-72jam ke-96

-5

-4

-3

-2

-1

0

1

2

5 50 500 5000 50000 70000 98000 137200

Dosis (mg/kgBB)

Peru

baha

n be

rat b

adan

(gra

m)

jam ke-24jam ke-48jam ke-72jam ke-96

Setelah dilakukan pemberian dosis ekstrak buah merah, terjadi penurunan

berat badan (pada jam pengamatan ke-24) untuk perlakuan kedua fraksi. Pada

perlakuan fraksi minyak buah merah terjadi penurunan berat badan yang cukup

besar dan meningkat seiring dengan bertambahnya dosis yang diberikan.

Penurunan berat badan terjadi akibat adanya penurunan konsumsi makanan

setelah diberi ekstrak buah merah.

Penurunan konsumsi makanan pada kelompok perlakuan fraksi minyak buah

merah lebih besar dibandingkan dengan kelompok perlakuan fraksi air buah

merah. Hal ini disebabkan fraksi minyak buah merah mengandung kadar lemak

yang jauh lebih tinggi dibandingkan fraksi air buah merah. Menurut Selly (2008),

fraksi minyak buah merah mengandung lemak sebesar 92.85 %, sedangkan fraksi

air sebesar 0.41 %. Di dalam saluran pencernaan, lemak dan minyak akan lebih

lama berada di dalam lambung dibandingkan dengan karbohidrat dan protein,

demikian juga proses penyerapan lemak yang lebih lambat dibandingkan unsur

lainnya. Oleh karena itu, makanan yang mengandung lemak mampu memberikan

rasa kenyang yang lebih lama dibandingkan makanan yang kurang atau tidak

mengandung lemak (Anonim, 2007a).

Rata-rata berat badan mencit kembali meningkat pada jam pengamatan

ke-48 hingga akhir masa pengamatan untuk kedua fraksi. Konsumsi makanan

kembali stabil pada jam pengamatan ke-48. Hal ini menunjukkan bahwa

penurunan berat badan yang terjadi mungkin tidak menunjukkan suatu efek toksik

tetapi menunjukkan suatu proses adaptasi terhadap stres setelah mengalami

perlakuan.

Berdasarkan analisis sidik ragam (Lampiran 3 dan 4) untuk fraksi air dan

minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB diketahui bahwa tingkatan dosis

berpengaruh nyata terhadap perubahan berat badan mencit selama masa

pengamatan (p < 0.05). Berdasarkan uji beda duncan (Lampiran 5) diketahui

bahwa perlakuan fraksi air buah merah dosis 70000 mg/kgBB berbeda nyata

dibandingkan tingkatan dosis lainnya. Hal ini juga dapat dilihat pada Gambar 14,

bahwa penurunan berat badan terbesar pada jam ke-24 terjadi pada perlakuan

fraksi air dosis 70000 mg/kgBB. Berdasarkan uji beda duncan untuk fraksi

minyak (Lampiran 6) diketahui bahwa perlakuan dosis 70000, 98000, dan

137200 mg/kgBB tidak berbeda nyata, namun ketiga dosis tersebut berbeda nyata

dibandingkan tingkatan dosis lainnya. Hal ini dapat dilihat pada Gambar 15,

bahwa terjadi penurunan berat badan yang cukup besar pada jam pengamatan

ke-24 untuk ketiga dosis tersebut.

Adanya pengaruh pemberian fraksi buah merah terhadap perubahan berat

badan mencit dapat disebabkan oleh senyawa aktif dan zat gizi yang terkandung

di dalamnya, antara lain β-karoten, lemak dan protein. Adanya interaksi antara

protein dan β-karoten dimungkinkan dapat meningkatkan berat badan. Hal ini

disebabkan adanya β-karoten dapat mempercepat pembentukan asam amino yang

akan menjadi basis dari tingkat kekebalan tubuh (Budi et al., 2005). Jika daya

tahan tubuh meningkat, maka tingkat infeksi akan menurun sehingga

kecenderungan terjadinya peningkatan berat badan cukup besar.

3. Efek Toksik Ekstrak Buah Merah

Tingkah laku dan gejala toksik setelah perlakuan diamati untuk melihat

adanya efek toksik yang terjadi akibat dari pemberian ekstrak buah merah. Hasil

pengamatan tingkah laku dan gejala toksik setelah pemberian fraksi air dan

minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB dapat dilihat pada Tabel 7.

Berdasarkan tabel tersebut diketahui bahwa pada perlakuan kedua fraksi buah

merah tidak ditemukan gejala toksik yang menyerang sistem saraf pusat dan

pencernaan, yang ditandai dengan tidak terjadinya tremor dan diare.

Tabel 7. Hasil pengamatan tingkah laku dan gejala toksik pada mencit setelah pemberian fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

Sampel Hasil pengamatan

Fraksi air

• Tidak terlihat gejala toksik yang menyerang saraf pusat (tidak terjadi tremor, jalan normal)

• Tidak terjadi diare (feses tetap padat) • Warna feses hitam (normal)

Fraksi minyak

• Tidak terlihat gejala toksik yang menyerang saraf pusat (tidak terjadi tremor, jalan normal)

• Tidak terjadi diare (feses tetap padat) • Warna feses merah

Untuk perlakuan fraksi minyak buah merah terjadi perubahan warna feses

menjadi merah. Warna feses yang berubah menjadi merah untuk perlakuan fraksi

minyak buah merah disebabkan kandungan tokoferol dan β-karoten yang sangat

tinggi pada fraksi minyak buah merah. Menurut Selly (2008), kandungan

tokoferol dan β-karoten fraksi minyak buah merah sebesar 22940.35 dan 636.24

ppm.

Tokoferol dan β-karoten termasuk ke dalam vitamin yang larut dalam lemak.

Menurut Anonim (2007b) vitamin larut lemak terutama akan diekskresikan di

dalam feses, sedangkan vitamin larut dalam air juga diekskresikan dalam feses

tetapi jalur ekskresinya terutama melalui urin. Menurut Muchtadi et al. (1989),

vitamin yang larut dalam lemak diangkut dalam darah oleh lipoprotein atau

protein pengikat spesifik, karena tidak dapat langsung larut dalam cairan plasma

seperti halnya vitamin yang larut dalam air. Oleh karena itu, vitamin yang larut di

dalam lemak tidak diekskresi dalam urin, melainkan terdapat dalam empedu yang

akan diekskresi dalam feses. Warna feses dipengaruhi oleh berbagai jenis

makanan, kelainan dalam saluran pencernaan, dan obat yang dimakan (Wirawan

et al., 1983).

Pada akhir pengujian dilakukan pembedahan untuk pengamatan organ secara

makroskopik. Pengamatan terhadap organ bertujuan mendapatkan informasi

mengenai toksisitas zat uji dalam kaitannya dengan organ sasaran dan efek

terhadap organ tersebut. Karena pengamatan dilakukan secara makroskopik, maka

hal yang diamati hanya sebatas warna dan penampilan organ yang tampak.

Beberapa organ yang diamati antara lain jantung, hati, paru-paru, lambung, usus,

ginjal, dan limpa. Adanya perubahan yang terjadi pada penampakan berbagai

organ tersebut dapat dikaitkan dengan kandungan senyawa aktif dan zat gizi

dalam fraksi minyak dan air buah merah, serta fungsi dan kerja dari organ.

Hasil pengamatan efek toksik terhadap organ setelah pemberian fraksi air

dan minyak buah merah dapat dilihat pada Tabel 8 dan 9. Visualisasi organ hasil

pembedahan mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dapat dilihat

pada Gambar 16 dan 17.

Tabel 8. Hasil pengamatan efek toksik terhadap organ mencit setelah pemberian fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

Organ Dosis (mg/kgBB) K 5 50 500 5000 50000 70000 98000 137200

Ginjal (1) n n n mp n n mk mk mk Hati (2) n m mp mp n mp mp mp mk

Jantung (3) n m n n mp mp mp mp n Lambung (4) n n n n n n n n n

Limpa (5) n n n n n mk mk mk mk Paru-paru (6) n n n n n n n n n

Usus (7) n n n n n n n n n Keterangan : n : normal mp : merah pekat m : kemerahan mk : merah kehitaman

Gambar 16. Visualisasi organ hasil pembedahan mencit perlakuan fraksi air

buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

1

2 3 4

5

6 7

23

14 5

6

7

3 2

4 5

7

6 1

4 1

2 5 3 6

Kontrol 5 mg/kgBB 50 mg/kgBB

500 mg/kgBB

41

2 53

6

4 1

253

6

5000 mg/kgBB 50000 mg/kgBB

1

2 3

7

6 5

4

7

2 3

6

5

1 4 1

7

2 3 6

4 5

70000 mg/kgBB 98000 mg/kgBB 137200 mg/kgBB

Tabel 9. Hasil pengamatan efek toksik terhadap organ mencit setelah pemberian fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

Organ Dosis (mg/kgBB) K 5 50 500 5000 50000 70000 98000 137200

Ginjal (1) n n m mp mk mk mk mk mk Hati (2) n n m mp mk mk mp mp mk

Jantung (3) n n n n mk mk mp mp mk Lambung (4) n n n n j j j j j

Limpa (5) n m m mk mk mk mp mp mk Paru-paru (6) n n n n n n n n n

Usus (7) n n n n n n n n n Keterangan : n : normal mp : merah pekat m : kemerahan mk : merah kehitaman j : terdapat lapisan berwarna jingga

Gambar 17. Visualisasi organ hasil pembedahan mencit perlakuan fraksi

minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

1

2 3 4

5

6 7

Kontrol

2 3 5

6

7

4 1

5 mg/kgBB

2 3

6 5

4

7

1

50 mg/kgBB

2

1

7

5

3 4

6 1

2

4

5 3

7

6 1

4

7

6

3 2

5


7

2

1 3

4

5 6

7

6 5

4 3

2

1 7

6 5

4

3 2

1


a. Ginjal

Berdasarkan pengamatan makroskopis, terjadi perubahan warna pada

organ ginjal mencit untuk kedua fraksi, yaitu menjadi merah pekat hingga

merah kehitaman, terutama dengan semakin meningkatnya dosis yang

diberikan (Tabel 8 dan 9). Adanya perubahan warna pada organ dapat

menjadi salah satu parameter terjadinya suatu efek toksik pada organ. Hal ini

terkait dengan fungsi ginjal yang strategis yaitu memusnahkan zat toksik

tertentu, sehingga menjadikan ginjal sebagai sasaran utama dari efek toksik

(Lu, 1995).

Ginjal merupakan organ yang berfungsi sebagai organ sistem urinasi

untuk mengeluarkan sisa metabolisme dan garam, memusnahkan zat toksik,

mengatur cairan garam, menjaga keseimbangan asam-basa, serta mengatur

tekanan darah (Dellman dan Brown, 1992). Hasil metabolisme akan dibuang

dari tubuh melalui ginjal dalam bentuk urin dan ditampung sementara dalam

kandung kemih untuk selanjutnya dibuang melalui uretra.

Perubahan warna ginjal mencit yang terjadi pada penelitian juga

dipengaruhi oleh kandungan zat gizi yang terdapat pada fraksi minyak dan air

buah merah. Tingginya kandungan lemak pada fraksi minyak menyebabkan

ginjal menjadi salah satu tempat penyimpanan cadangan lemak. Menurut

Mitchel (1956), sumber cadangan lemak utama terdapat pada lapisan

subkutan, namun cadangan penting lainnya terdapat pada jaringan ikat yang

melapisi organ-organ seperti jantung dan ginjal.

Protein dan karbohidrat yang terkandung dalam fraksi buah merah juga

berpengaruh terhadap kerja ginjal. Menurut Lu (1995), beberapa zat yang

tersaring seperti glukosa dan asam amino yang penting bagi tubuh akan

diserap kembali oleh tubulus ginjal. Protein dengan berat molekul rendah

dengan mudah diserap kembali oleh tubulus proksimal namun hanya sedikit

yang dapat melalui filtrasi glomerulus. Kepekatan warna organ ginjal yang

semakin meningkat dengan semakin tingginya dosis fraksi yang diberikan

mengindikasikan bahwa kerja ginjal menjadi semakin berat.

b. Hati

Berdasarkan hasil pengamatan, terjadi perubahan warna organ hati

mencit jika dibandingkan dengan kontrol (Gambar 16 dan 17). Warna organ

hati menjadi kemerahan, merah pekat, hingga merah kehitaman dengan

semakin meningkatnya dosis yang diberikan untuk kedua fraksi (Tabel 8

dan 9). Hal ini dapat mengindikasikan adanya pengaruh kandungan senyawa

dalam fraksi buah merah terhadap organ hati mencit, terkait dengan fungsi dan

kerja hati.

Hati terlibat dalam metabolisme zat makanan serta sebagian besar obat

dan toksikan. Hati sering menjadi organ sasaran disebabkan hati sebagai

penerima 80 % suplai darah dari vena porta, sehingga memungkinkan untuk

zat-zat toksik yang diserap ditransportasikan oleh vena porta ke hati (Lu,

1995). Fungsi hati yaitu mendetoksifikasi produk buangan metabolisme,

merusak sel darah merah tua, sintesis dan sekresi lipoprotein plasma, dan

fungsi metabolisme (sintesis glikogen, glukoneogenesis, menyimpan glikogen,

beberapa vitamin dan lipid) (Burkitt et al., 1995).

Perubahan warna organ hati mencit yang terjadi pada penelitian

disebabkan adanya pengaruh dari kandungan zat gizi dan senyawa aktif dalam

fraksi buah merah. Fraksi minyak buah merah mengandung lemak, karotenoid,

dan tokoferol dalam jumlah yang tinggi. Di dalam sistem metabolisme, lebih

dari 60 % lemak chylomicrons (terutama terdiri dari trigilesrida) akan diambil

oleh hati. Di dalam hati, trigliserida diresintesa menjadi low-density beta-

lipoprotein dan disekresikan oleh hati ke dalam plasma (Muchtadi, 1989).

Semakin tinggi kandungan lemak yang masuk berarti semakin besar

penyerapan lemak yang terjadi sehingga kerja hati dalam mensintesis

lipoprotein dan mensekresikannya menjadi semakin berat.

Pada umumnya vitamin yang larut dalam lemak memerlukan kondisi

yang sama dengan kondisi yang diperlukan untuk berlangsungnya penyerapan

lemak di dalam tubuh. Setelah diserap oleh usus, vitamin A, D, dan K yang

larut di dalam lemak ditranspor dan disimpan dalam hati, sedangkan vitamin E

disimpan dalam jaringan adiposa (Muchtadi et al., 1989). Tingginya

kandungan karotenoid dalam fraksi minyak buah merah menyebabkan

penyimpanannya di dalam hati juga semakin besar.

Protein dan karbohidrat yang terkandung di dalam kedua fraksi juga

mempengaruhi kerja dari hati. Metabolisme gula darah sangat dipengaruhi

oleh hati sebab hati sebagai penyimpan glikogen yang akan dilepaskan saat

tubuh memerlukan energi. Adanya pengaturan mekanisme simpan lepas ini

akan mencegah hiperglikemia (peningkatan kadar gula darah berlebih) dan

hipoglikemia (penurunan kadar gula darah). Protein mencapai hati dalam

bentuk asam amino. Di dalam hati, asam amino akan diubah atau digunakan

sebagai sumber energi, disimpan sebagai cadangan, atau diubah menjadi urea

untuk dibuang melalui urin. Organ hati membantu dalam pemecahan amonia

menjadi urea untuk selanjutnya dibuang sebab amonia bersifat toksik bagi

tubuh.

c. Jantung

Hasil pengamatan pada organ jantung mencit, ditemukan adanya

perubahan warna yaitu menjadi semakin merah pekat pada beberapa tingkatan

dosis untuk kedua fraksi (Tabel 8 dan 9). Hal ini menunjukkan bahwa

pemberian ektrak buah merah juga berpengaruh terhadap organ jantung.

Jantung mudah dirusak oleh berbagai jenis zat kimia karena merupakan

salah satu organ sasaran. Zat kimia bekerja secara langsung pada otot jantung

atau secara tidak langsung melalui susunan saraf atau pembuluh darah. Otot

jantung mengandung sedikit bahan kontraktil dengan lebih banyak

mengandung bahan mitokondria. Mitokondria berperan penting dalam

kontraktilitas jantung sehingga menjadi organ sasaran kardiotoksisitas. Suatu

toksikan dapat mempengaruhi salah satu dari pembuluh darah dan akibat yang

ditimbulkan tergantung dari seberapa penting organ yang disuplai darah oleh

pembuluh darah yang terkena (Lu, 1995).

Kandungan lemak yang tinggi pada fraksi minyak buah merah dapat

berpengaruh pada kerja jantung. Menurut Lu (1995), beberapa senyawa

organik yang larut lipid dapat menekan kontraktilitas jantung. Selain itu,

tingginya kandungan lemak yang masuk ke dalam tubuh dapat menyebabkan

akumulasi butiran lipid pada otot jantung. Semakin tingginya dosis fraksi

minyak yang diberikan, maka semakin meningkat pula kadar lemak yang

masuk ke dalam tubuh mencit, yang dapat berakibat semakin beratnya kerja

dari organ jantung.

d. Lambung

Hasil pengamatan pada organ lambung menunjukkan tidak terjadi

perubahan untuk perlakuan fraksi air buah merah (relatif normal). Namun

untuk perlakuan fraksi minyak buah merah ditemukan perubahan mulai dari

pemberian dosis 5000 mg/kgBB, yaitu terdapat lapisan yang berwarna jingga,

seperti yang dapat dilihat pada Gambar 17. Adanya lapisan jingga ini

disebabkan fraksi minyak buah merah yang diberikan belum tercerna secara

sempurna karena kandungan lemak yang sangat tinggi pada fraksi minyak

mengakibatkan penyerapan menjadi lambat. Menurut Swenson (1984),

lambung berfungsi sebagai tempat pencampuran dan penyimpanan makanan,

serta tempat awal proses pencernaan protein dan lemak.

Fungsi utama lambung adalah tempat penyimpanan makanan untuk

dilanjutkan menuju duodenum. Lambung mengosongkan semua isinya menuju

ke duodenum dalam 2-6 jam setelah makanan tersebut dicerna di dalam

lambung. Makanan yang banyak mengandung karbohidrat menghabiskan

waktu yang paling sedikit di dalam lambung atau lebih cepat dikosongkan

menuju duodenum. Makanan yang mengandung protein lebih lambat, dan

pengosongan yang paling lambat terjadi pada makanan yang mengandung

lemak dalam jumlah besar.

Pada dasarnya, pengosongan lambung dipermudah oleh gelombang

peristaltik pada antrum lambung, dan dihambat oleh resistensi pilorus terhadap

jalan makanan. Bila makanan berlemak, khususnya asam-asam lemak terdapat

dalam chyme yang masuk ke dalam duodenum, maka akan menekan aktivitas

pompa pilorus yang pada akhirnya akan menghambat pengosongan lambung.

Hal ini berakibat pada pencernaan lemak yang lambat sebelum akhirnya

masuk ke dalam usus.

e. Limpa

Berdasarkan pengamatan makroskopis, terjadi perubahan warna pada

organ limpa mencit untuk kedua fraksi, yaitu menjadi merah pekat hingga

merah kehitaman, terutama dengan semakin meningkatnya dosis yang

diberikan (Tabel 8 dan 9). Hal ini menandakan bahwa fraksi air dan minyak

buah merah yang diberikan berpengaruh terhadap organ limpa mencit.

Sistem jaringan limfoid dapat diklasifikasikan ke dalam 2 kelompok,

yaitu organ limfoid primer dan limfoid sekunder (Tizard, 1988). Organ

limfoid sekunder merupakan organ yang responsif terhadap stimulasi

antigenik dan tempat terjadinya interaksi antara limfosit agen dan

pengontrolnya. Jaringan limfoid limpa berperan penting dalam menahan agen

yang berhasil mencapai sirkulasi darah untuk menahan invasi toksikan

sebelum menyebar lebih luas (Tizard, 1988). Limpa berperan dalam sistem

kekebalan tubuh untuk melawan infeksi dan membuang bahan-bahan yang

tidak diperlukan dari dalam darah.

Perubahan ukuran, warna, dan konsistensi limpa biasanya disebabkan

oleh respon terhadap benda asing yang dapat menimbulkan proses-proses

aktif. Infeksi pada tubuh akan merangsang sel-sel limfosit dalam organ limfoid

untuk memproduksi antibodi. Adanya perubahan warna organ limpa mencit

pada penelitian mengindikasikan bahwa terjadi respon terhadap kandungan

senyawa dalam fraksi buah merah. Semakin tinggi dosis yang diberikan berarti

semakin besar pula kadar senyawa aktif yang masuk ke dalam tubuh. Senyawa

aktif tersebut dimungkinkan dapat bersifat toksik jika dikonsumsi berlebihan.

Hal ini menunjukkan semakin berat pula kerja limpa yang terkait dengan

fungsinya dalam menahan invasi toksikan sebelum menyebar lebih luas.

f. Paru-paru

Organ paru-paru pada umumnya tidak mengalami perubahan (normal)

untuk perlakuan kedua fraksi pada tiap tingkatan dosis. Hal ini menunjukan

bahwa pemberian fraksi buah merah tidak berpengaruh terhadap organ paru-

paru.

Menurut Lu (1995), paru-paru merupakan tempat utama penyerapan

toksikan yang berupa uap atau gas, namun paru-paru memiliki mekanisme

untuk mengeluarkan toksikan yang telah diserap melalui jalur lain. Tidak

adanya pengaruh terhadap organ paru-paru disebabkan bentuk bahan yang

diujikan bukan berupa gas atau uap, melainkan cairan, serta jalur

pemberiannya secara oral sehingga sistem distribusi dan absorpsi zat

mengikuti sistem saluran pencernaan dan bukan saluran pernapasan.

g. Usus

Hasil pengamatan pada organ usus mencit, tidak ditemukan adanya

perubahan (relatif normal) untuk kedua fraksi pada tiap tingkatan dosis. Hal

ini menandakan bahwa pemberian fraksi buah merah tidak terlalu berpengaruh

terhadap organ usus.

Usus merupakan salah satu organ penting dalam saluran pencernaan. Di

dalam usus, makanan dicerna dengan bantuan enzim dan bakteri pencernaan.

Selanjutnya bahan-bahan yang tidak tercerna akan di buang ke dalam usus

besar yang merupakan bagian akhir dari saluran pencernaan. Usus besar

mempunyai fungsi antara lain: tempat mengumpulkan sisa makanan yang

kemudian akan dibuang melalui anus, tempat mengabsorbsi air dan beberapa

mineral, dan tempat pertumbuhan bakteri, dimana bakteri dalam usus besar ini

dapat membentuk beberapa jenis vitamin yaitu vitamin B dan K yang

kemudian diabsorbsi oleh tubuh. Ketidakseimbangan fungsi usus dapat

mengakibatkan penumpukan racun (toksin) yang melalui sistem peredaran

darah dan limfatik akan tersebar ke seluruh tubuh serta menimbulkan berbagai

macam penyakit (Sumampouw, 2003).

Pemberian fraksi buah merah ternyata tidak terlalu berpengaruh pada

organ usus mencit sebab tidak ditemukan perubahan selama waktu

pengamatan. Tidak berpengaruhnya fraksi buah merah terhadap organ usus

juga ditandai dengan tidak terjadinya efek toksik seperti diare setelah

perlakuan (Tabel 7). Organ usus tidak mengalami perubahan dapat

disebabkan senyawa-senyawa yang kemungkinan bersifat toksik di dalam

buah merah telah mengalami detoksikasi di dalam hati sebelum dicerna di

dalam usus. Frankel (1985) menyatakan bahwa fungsi hati yang utama adalah

detoksikasi, dimana sebagian zat-zat toksik yang masuk ke hati akan diubah

menjadi zat-zat yang tidak toksik. Menurut Aqila (2007), hati merupakan

gerbang masuknya toksikan yang terkandung dalam makanan setelah melalui

kerongkongan. Jika hati gagal memusnahkan toksikan dalam makanan, maka

toksikan tersebut akan masuk ke dalam saluran pencernaan.

4. Pengaruh Sifat Kimia Ekstrak Buah Merah Terhadap Toksisitas Akut Kandungan senyawa aktif dan zat gizi di dalam fraksi minyak dan fraksi air

buah merah berpengaruh terhadap berbagai parameter pengujian toksisitas akut

yang meliputi jumlah kematian, berat badan, gejala toksik dan tingkah laku, serta

penampakan organ seperti yang telah dijelaskan pada sub bab sebelumnya

(sub bab 1, 2, dan 3). Sifat kimia ekstrak buah merah yang diperoleh dari

penelitian Selly (2008) dapat dilihat pada Tabel 10.

Tabel 10. Sifat kimia ekstrak buah merah (Selly, 2008)

Sifat kimia Fraksi minyak Fraksi air Total karoten (ppm) 4505.43 1.11 β-karoten (ppm) 636.24 0.93 Total tokoferol (ppm) 22940.35 1836.03 α-tokoferol (ppm) 481.48 1.10 Total fenol (ppm) - 210.44 Kadar air (%) 0.86 98.92 Kadar abu (%) 0.03 0.13 Kadar lemak (%) 92.85 0.41 Kadar protein (%) 0.08 0.46 Kadar karbohidrat (%) 6.18 0.08

Berdasarkan analisis kimia (Tabel 10), ekstrak buah merah terutama fraksi

minyak, mengandung beberapa senyawa aktif dalam jumlah yang cukup tinggi.

Beberapa senyawa aktif tersebut diantaranya β-karoten dan tokoferol (vitamin E)

yang berfungsi sebagai antioksidan. Selain itu, fraksi minyak mempunyai

komponen zat gizi utama berupa lemak karena kandungannya yang sangat tinggi

sebesar 92.85 % (Selly, 2008). Menurut Budi et al. (2005), minyak buah merah

didominasi oleh 85 % lemak tidak jenuh, dengan asam lemak terbanyak adalah

asam oleat. Tingginya kandungan lemak dalam fraksi minyak buah merah

mendukung penyerapan tokoferol dan karoten di dalam usus, sebab kedua vitamin

tersebut larut dalam lemak. Menurut Almatsier (2002), absorpsi tokoferol dibantu

oleh trigliserida rantai sedang dan dihambat oleh asam lemak rantai panjang tidak

jenuh ganda.

Selain memiliki banyak manfaat bagi tubuh, senyawa aktif yang terkandung

dalam ekstrak buah merah juga dapat berpotensi toksik jika dikonsumsi secara

berlebihan. Menurut Dewoto dan Wardhini (1995), pemberian vitamin secara

berlebihan dapat bersifat toksik pada individu yang mengkonsumsi. Bahan aktif

yang terdapat di dalam ekstrak buah merah seperti karotenoid dan tokoferol dalam

dosis tinggi mungkin bersifat toksik bagi mencit sehingga mengganggu fungsi hati

sebagai organ detoksifikasi maupun sebagai tempat metabolisme zat-zat yang

dibawa oleh darah (Roza, 2006).

Menurut Subroto (2006), tingginya kandungan β-karoten dan α-tokoferol

dalam buah merah, jika dikonsumsi berlebihan dapat merusak kerja hati, terutama

pada saat hati sedang terinfeksi virus. Hal ini disebabkan kedua senyawa tersebut

diproses di dalam hati. Jika dosisnya terlalu tinggi dan hati sedang terinfeksi virus,

maka kerja hati menjadi terlalu berat. Selain itu, setelah diserap oleh usus, vitamin

larut lemak akan disimpan di dalam hati. Jika vitamin larut lemak dikonsumsi

dalam jumlah yang tinggi, maka penyimpanannya di hati juga semakin besar. Hal

ini juga terkait dengan efek toksik terhadap organ, seperti yang telah dijelaskan

pada sub bab 3.

Adanya pengaruh antara tingginya kandungan senyawa aktif (tokoferol dan

karoten) dalam fraksi minyak terhadap fungsi dan kerja hati dapat dilihat pada

Tabel 9 dan Gambar 17, dimana terjadi perubahan warna pada organ hati

menjadi semakin merah pekat dengan semakin meningkatnya dosis yang

diberikan. Tingginya kandungan lemak, juga dapat mengakibatkan gangguan hati

yang berupa perlemakan hati. Perlemakan atau degenerasi lemak merupakan

pengumpulan lemak di dalam sel parenkim akibat gangguan metabolisme sel. Lu

(1995) menyatakan bahwa hati dapat dikategorikan mengalami perlemakan bila

mengandung berat lipid lebih dari 5 %.

Menurut Anonim (2007c), vitamin E adalah vitamin yang paling aman

dikonsumsi dibandingkan vitamin larut lemak lainnya, karena sekitar 60-70 %

vitamin E yang dikonsumsi akan dibuang dari tubuh. Namun demikian, kelebihan

vitamin E dapat mengganggu proses pembekuan darah. Sebab dosis yang tinggi

dapat meningkatkan efek obat antikoagulan yang digunakan untuk mencegah

penggumpalan darah (Almatsier, 2002). Vitamin E juga dapat terakumulasi dalam

jaringan tubuh yang mengandung lemak seperti organ hati dan berpotensi

meracuninya (Anonim, 2007d). Selain itu, bila mengkonsumsi vitamin E lebih dari

600 mg sehari (60-75 kali kecukupan) akan mengakibatkan adanya gangguan

pada saluran cerna.

Maryam (2003) menyatakan bahwa konsumsi β-karoten dosis tinggi tidak

menyebabkan toksisitas. Konsumsi β-karoten dosis tinggi dapat menyebabkan

peningkatan β-karoten dalam plasma, walaupun respon tersebut berbeda untuk

tiap individu. Tingkat plasma karotenoid yang tinggi hanya sedikit atau sama

sekali tidak mempengaruhi tingkat vitamin A plasma (Brody, 1994). Menurut

(Almatsier, 2002), karoten tidak menimbulkan gejala kelebihan, karena absorpsi

karoten menurun bila dikonsumsi dalam jumlah tinggi. Namun demikian,

kelebihan karotenoid dapat menyebabkan hiperkarotenosis, yang ditandai dengan

perubahan warna kulit menjadi kuning atau jingga pada dahi, telapak tangan dan

kaki (Maryam, 2003). Hal ini disebabkan sebagian dari karoten yang diserap tidak

diubah menjadi vitamin A, akan tetapi disimpan di dalam lemak. Bila lemak

dibawah kulit mengandung banyak karoten, warna kulit terlihat kekuningan

(Almatsier, 2002).

Fraksi minyak mengandung senyawa aktif seperti tokoferol dan karoten

dalam jumlah yang jauh lebih tinggi dibanding fraksi air. Namun, di dalam fraksi

air terdapat komponen fenol yang dapat berpotensi sebagai antioksidan.

Kandungan fenol dalam fraksi air menurut Selly (2008) adalah sebesar 210.44

ppm yang setara dengan 19 % bk. Menurut Chen dan Han (2000) kandungan fenol

pada teh hijau sebesar 54.5-76.55 %. Adanya kandungan fenol dalam fraksi air

buah merah, walaupun dalam jumlah yang tidak cukup tinggi, dapat menjadi salah

satu indikasi berpotensinya fraksi air buah merah sebagai antioksidan.

Hernani (2005) menyatakan bahwa senyawa fito-kimia dan senyawa

golongan fenolik mempunyai aktivitas antioksidan yang jauh lebih tinggi

dibandingkan vitamin C dan E. Mukhopadhyay (2000) menjelaskan bahwa

polifenol memiliki kemampuan berikatan dengan metabolit lain (protein, lemak,

dan karbohidrat) membentuk senyawa kompleks yang stabil sehingga

menghambat mutagenesis dan karsinogenesis. Polifenol mempunyai sifat

antioksidatif dan antitumor. Hal ini juga dibuktikan oleh penelitian Selly (2008)

bahwa fraksi air memiliki aktivitas antiproliferasi terhadap sel kanker HeLa dan

K-562 yang lebih tinggi dibandingkan fraksi minyak.

Proses penyerapan senyawa fenol berbeda dengan penyerapan karotenoid

dan tokoferol. Hal ini disebabkan adanya perbedaan sifat antara keduanya, dimana

fenol merupakan senyawa yang larut air. Senyawa yang larut dalam air

penyerapannya lebih sederhana seiring dengan penyerapan air dari saluran

pencernaan masuk ke dalam aliran darah.

Jumlah fenol dalam fraksi air yang tidak terlalu tinggi juga menguntungkan,

sebab potensi terjadinya ketoksikan yang disebabkan oleh senyawa fenol menjadi

rendah. Fenol bersifat germisidal karena dalam konsentrasi yang tinggi

menyebabkan koagulasi dan presipitasi protein (Goodman dan Gilman, 1980).

Fenol sangat mudah diserap bahkan melalui kulit sekalipun, masuk ke dalam

aliran darah dan dikeluarkan melalui ginjal bersama urin. Secara sistemik dalam

dosis yang tinggi, fenol dapat merangsang susunan syaraf pusat dan menyebabkan

kelumpuhan karena kejang otot (Goodman dan Gilman, 1980).

Selain senyawa aktif, kedua fraksi juga mengandung komponen zat gizi

seperti karbohidrat dan protein. Menurut Selly (2008), kandungan karbohidrat

dalam fraksi minyak dan air buah merah adalah 6.18 dan 0.08 %. Walaupun

dalam jumlah yang cukup rendah, adanya kandungan karbohidrat dapat

berpengaruh terhadap fungsi dan kerja organ, seperti organ hati. Di hati, fruktosa

dan galaktosa akan diubah menjadi glukosa karena tubuh hanya bisa

memanfaatkan energi dari karbohidrat dalam bentuk glukosa. Dari hati ini,

glukosa akan dikirim ke seluruh jaringan tubuh menurut kebutuhan. Sebagian

glukosa disimpan di otot dan di hati sebagai cadangan yang disebut glikogen.

Kapasitas pembentukan glikogen ini terbatas, kelebihan karbohidrat akan diubah

menjadi lemak dan ditimbun di dalam jaringan adiposa.

Kandungan protein dalam fraksi minyak dan air buah merah menurut Selly

(2008) adalah 0.08 dan 0.46 %. Beberapa organ yang dipengaruhi oleh adanya

kandungan protein ini antara lain hati dan ginjal. Menurut Almatsier (2002),

Sebagian dari amonia yang dibentuk dalam hati merupakan sumber nitrogen untuk

mensintesis asam amino, sedangkan selebihnya harus didetoksikasi. Dalam

keadaan normal hati dapat mengubah semua amonia menjadi ureum dan

mengeluarkannya ke dalam darah. Ginjal kemudian membersihkan darah dari

amonia dan mengeluarkannya dari tubuh melalui urin. Bila konsumsi protein

berlebihan akan menyebabkan produksi ureum meningkat.

Semua keracunan terjadi akibat reaksi antara zat beracun dengan reseptor

dalam tubuh (Katzung, 2002). Pemberian ekstrak buah merah secara oral

menyebabkan senyawa aktif yang terdapat dalam ekstrak buah merah diabsorbsi

dalam saluran pencernaan. Senyawa aktif tersebut kemudian mengalami proses

distribusi dan metabolisme. Produk metabolisme yang bersifat toksik bekerja

sebagai inhibitor enzim untuk tahap metabolisme selanjutnya. Reaksi antara

senyawa aktif dengan reseptor dalam organ efektor menyebabkan timbulnya

gejala keracunan (Donatus, 2001).

V. KESIMPULAN DAN SARAN

A. KESIMPULAN

Berdasarkan hasil ekstraksi buah merah menggunakan metode sentrifugal,

diperoleh nilai rendemen fraksi minyak sebesar 15 %, dan fraksi air 53 %.

Rendemen fraksi air dihitung dari perolehan pasta sisa.

Berdasarkan hasil pengujian toksisitas akut, tidak ditemukan adanya

kematian mencit pada setiap tingkatan dosis (5-137200 mg/kgBB) untuk kedua

fraksi. Dari hasil tersebut, diperoleh nilai LD50 untuk fraksi minyak dan fraksi air

buah merah sebesar 137200 mg/kgBB. Berdasarkan klasifikasi toksisitas relatif

(Lu, 1995), nilai toksisitas tersebut termasuk ke dalam kelompok praktis tidak

toksik.

Berdasarkan hasil pengamatan terhadap berat badan, tingkah laku dan gejala

toksik tidak ditemukan adanya suatu efek toksik untuk kedua fraksi. Perubahan

yang terjadi hanya menunjukkan suatu proses adaptasi terhadap stres setelah

mengalami perlakuan. Berdasarkan analisis sidik ragam untuk fraksi air dan

minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB diketahui bahwa tingkatan dosis

berpengaruh nyata terhadap perubahan berat badan mencit selama masa

pengamatan (p < 0.05).

Berdasarkan pengamatan terhadap organ secara makroskopik untuk

perlakuan kedua fraksi, ditemukan adanya perubahan warna organ terutama hati,

ginjal, dan limpa yaitu menjadi semakin merah pekat dan terdapat beberapa yang

kehitaman terutama dengan semakin meningkatnya dosis yang diberikan. Hal ini

disebabkan adanya pengaruh kandungan senyawa aktif dan komponen zat gizi di

dalam kedua fraksi terhadap fungsi dan kerja organ.

B. SARAN

Pengambilan data morfologi secara subjektif perlu diikuti dengan data

objektivitas dan histologi sehingga diperoleh data yang lebih lengkap dan akurat,

terutama mengenai efek toksik terhadap organ. Perlu dilakukan pengujian

toksisitas sub-akut dan kronik untuk mengetahui dampak yang ditimbulkan akibat

akumulasi konsumsi ekstrak buah merah serta uji untuk mengetahui dosis efektif

konsumsi buah merah (ED50). Disamping itu, perlu dilakukan penelitian lanjutan

untuk mengidentifikasi senyawa-senyawa toksik yang terdapat di dalam ekstrak

buah merah dan studi lebih lanjut mengenai proses ekstraksi buah merah sehingga

senyawa toksik yang terkandung dalam ekstrak buah merah dapat diminimalisir.

DAFTAR PUSTAKA Alam BS, LR Brown, dan SQ Alam. 1990. Influence of dietary fats and vitamin E

on plasma and hepatic vitamin A and β-carotene levels in rats fed excess β-carotene. J.Nutr and Cancer, 14 (2):111-116.

Almatsier S. 2002. Prinsip Dasar Ilmu Gizi. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta. Anonim. 2007a. Lemak Tetap Diperlukan Tubuh. http://www.info-sehat.com/

content.php?s_sid=1048. [30 September 2007] ______. 2007b. Vitamin Larut dalam Lemak vs Vitamin Larut dalam Air.

http://fapet.ipb.ac.id/ pin/Web/Bab7_2.htm. [30 September 2007] ______. 2007c. Frequenly Ask Question (Ocean Health).

http://www.suplemenku.com /faq.php#10 -11-23. [23 Nopember 2007] ______. 2007d. Mekanisme Kerja Beberapa Antioksidan. http://www.info-sehat.

com /content.php?ssid=1021. [23 Nopember 2007] Aqila A. 2007. Detoksifikasi. http://abuaqila78.multiply.com/journal/item/6/ DETOKSIFIKASI. [27 Januari 2008] Ball GFM. 1988. Fat Soluble Vitamin Assays in Food Analysis. Elsevier Science

Publ. Co. Inc., New York. Balls M, James, dan Jacqueline. 1991. Animals and Alternatives in Toxicology.

Great Britain at the University Press, Cambridge. Bieri JG. 1987. Vitamin E. Di dalam R.E.Olson dan H.P.Broquist. Vitamin.

PT.Gramedia, Jakarta. Bloomstrand R dan B Werner. 1967. Studies on the intestinal absorption of

radioactive β-carotene and vitamin A in man. Scand. J.Clin.Lab.Invest., 19:339-345.

Brody T. 1994. Nutritional Biochemistry. Academic Press, New York. Budi IM dan FR Paimin. 2004. Buah Merah. Penebar Swadaya, Jakarta. Budi IM, R Hartono, dan I Setyanova. 2005. Tanya Jawab Seputar Buah Merah.

Penebar Swadaya, Jakarta. Burkitt HG, Young, dan Heath. 1995. Weather’Sanguinis Functional Histology.

A Text and Colour Atlas. Penerbit EGC, Jakarta.

Calder PC, Field, dan Gill. 2002. Nutrition and Immune Function. Biddles Ltd., London.

Chen J dan C Han. 2000. The Protective Effect of Tea On Cancer: Human

Evidence. Di dalam WR Bidlack, ST Omaye, MS Meskin, dan DKW Thopan. Fitochemicals As Bioactive Agent. Technomic Publishing, Landcaster.

Darmansjah I. 1995. Toksikologi Dasar dalam Farmakologi dan Terapi. Bagian

Farmakologi Universitas Indonesia, Jakarta. Dellman HD dan Brown. 1992. Buku Teks Histologi Veteriner (terjemahan).

Universitas Indonesia, Jakarta. Dewoto HR dan Wardhini. 1995. Vitamin. Di dalam Sulistia G.G. Farmakologi

dan Terapi. Fakultas Kedokteran UI, Jakarta. Donatus IA. 2001. Toksikologi Dasar. Laboratorium Farmakologi dan

Toksikologi. UGM Press, Yogyakarta. Donatus IA dan Nurlaila. 1986. Obat Tradisional dan Fitoterapi Uji Toksikologi.

Panitia Lustrum VII dan Reuni Fakultas Farmasi UGM, Yogyakarta. Draper HH. 1970. The Tocopherols. Di dalam R.A.Morton. Fat Soluble Vitamins.

Biochemistry Dept., Johnston Laboratories, University of Liverpool. EPA (Environmental Protection Agency). 1988. Revised policy for acute toxicity

testing. Probit Analysis. Cambridge University Press. _________________________________. 1998. Health Effect Test Guidelines.

OPPTS 870.1100. Acute Toxicity Testing - Acute Oral Toxicity. EPA 712-C-98-190.

Fessenden RJ dan JS Fessenden. 1992. Kimia Organik. Airlangga, Jakarta. Frankel M. 1985. Lectures in Internal Medicine. Ilmu Penyakit Dalam. Rumah

Sakit PGI Tjikini. Jakarta. Ganong WF. 2003. Buku Ajar Fisiologi Kedokteran (terjemahan). Edisi ke-20.

Penerbit Buku Kedokteran EGC, Jakarta. Goodman DS, R Bloomstrand, B Werner, HS Huang, dan T Shiratori. 1966. The

intestinal absorption and metabolism of vitamin A and β-carotene in man. J.Clin.Invest., 45:1615-1623.

Goodman LS dan Gillman. 1980. The Pharmacological Basis of Therapeutic

6th Ed. New York Macmilan Publishing, New York.

Guthrie HA. 1975. Introductory Nutrition. The C.V.Mosby Company, Saint Louis,USA.

Hawab M. 2002. Metabolisme : Karbohidrat, Protein, dan Asam Nukleat. Jurusan

Kimia Program studi Biokimia Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, IPB, Bogor.

Hernani. 2005. Dapatkah Buah Merah Diganti dengan Tanaman Antioksidan

Lain?. Di dalam Majalah Plus. Vol 1 : 40-43. Hodgson E dan PE Levi. 2000. Modern Toxicology. Mc. Graw Hill, Singapore. Jensen NH, AB Nielsen, dan R Wilbrandt. 1992. Chlorophyll a sensitized trans.cis

photoisomerization of all-trans-β-carotene. J.Am.Chem.Soc., 104:6117-6119.

Katzung BG. 2002. Farmakologi Dasar dan Klinik (terjemahan). Salemba Medika,

Jakarta. Ketaren S. 1986. Minyak dan Lemak Pangan. UI Press, Jakarta. Koeman JH. 1987. Pengantar Umum Toksikologi (terjemahan). Gajah Mada

University Press, Yogyakarta. Krinsky NI. 1988. Mechanism of action of biological antioxidans. Society for

Experimental Biology and Medicine, Boston. Laurence DR dan PN Bennet. 1995. Clinical Pharmacology. Longman Singapore

Publisher (Ptc.) LTD, Singapore. Lazarovici P dan Haya. 2002. Chimeric Toxin: Mechanisms of Action and

Therapeutic Applications. Taylor and Francis Group. Lehninger AL. 1990. Dasar-dasar Biokimia Jilid I. Penerbit Erlangga, Jakarta. Liestiyani O. 2000. Pengaruh Suhu Pemanasan Biji Jarak, Waktu, dan Tekanan

Pengempaan Dingin terhadap Mutu Minyak Biji Jarak (Ricinus communis L.). Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian. IPB, Bogor.

Linder MC. 1992. Biokimia Nutrisi dan Metabolisme (terjemahan). UI Press,

Jakarta. Loomis TA. 1978. Toksikologi Dasar. IKIP Press, Semarang. Lu FC. 1995. Toksikologi Dasar : Asas, Organ, Sasaran, dan Penilaian Resiko.

Edisi ke-2. UI Press, Jakarta.

Malole MBM. dan CSU Pramono. 1989. Penggunaan Hewan-hewan Percobaan di Laboratorium. PAU-Bioteknologi IPB, Bogor.

Manalu W. 1999. Pengantar Ilmu Nutrisi Hewan. Diktat Kuliah Ilmu Nutrisi

Pakan Hewan. Bagian Fisiologi dan Farmakologi Fakultas Kedokteran Hewan IPB, Bogor.

Maryam S. 2003. Defisiensi dan Toksisitas Vitamin A. http://tumoutou.net/

6_sem2_023/siti_maryam.htm. [23 Nopember 2007] Mathews CK, KE van Holde, dan KG Ahern. 2000. Biochemistry 3rd Edition.

Addison Wesley Longman, Inc., San Francisco. Mitchel PH. 1956. A Text Book of General Physiology 5th Edition. Mc Graw Hill

Book Company Inc., New York. Muchtadi D. 1989. Petunjuk Laboratorium Evaluasi Nilai Gizi Pangan. PAU

Pangan dan Gizi, IPB, Bogor. Muchtadi D, NS Palupi, dan M Astawan. 1989. Metabolismo Zat Gizo. Pusat

Antar Universitas Pangan dan Gizo, IPB, Bogor. Mukhopadhyay M. 2000. Natural Extracts Using Super Critical Carbondioxide.

CRC Press, New York. Mutschler E. 1991. Dinamika Obat (terjemahan). Edisi ke-5. Penerbit ITB,

Bandung. Nicholson JA. 1974. Veterinary Toxicology. Baillere Tindall and Cox Publishers,

London. Olson JA. 1991. Vitamin A. Di dalam Handbook of Vitamins. Machlin, L.J. (ed.).

Marcel Dekker Inc., New York. Puryanti R. 2006. Report 96-Hours Acute Oral Toxicity Test (LD50). Bogor Lab,

Bogor. Reeves PG, FH Nielsen, dan GC Fahey Jr. 1993. AIN-93 Purified Diets for

Laboratory Rodents : Final Report of the American Institute of Nutrition Ad Hoc Writing Committee on the Reformulation of the Ain 76-a Rodent Diet. Journal of Nutrition Vol.123 No.11 November 1993, pp. 1939-1951.

Roza S. 2006. Pengaruh Pemberian Sari Buah Merah (Pandanus conoideus Lam.)

terhadap Mencit yang Dikawinkan:Gambaran Histopatologi Organ Hati. Skripsi. Fakultas Kedokteran Hewan, IPB, Bogor.

Sadsoeitoeboen MJ. 1999. Pandanaceae : Aspek Botani dan Etnobotani Dalam Kehidupan Suku Arfak di Irian Jaya. Tesis. Program Pasca Sarjana IPB, Bogor.

Selly AJ. 2008. Karakterisasi Sifat Fisiko-Kimia dan Pengujian Antiproliferasi

Ekstrak Buah Merah (Pandanus conoideus Lam.) Terhadap Sel Kanker HeLa dan K-562 Secara In Vitro. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian IPB, Bogor.

Sherly. 1998. Ekstraksi Minyak dari Buah Merah (Pandanus conoideus Lam.) dan

Komposisi Asam Lemaknya. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian IPB, Bogor.

Siregar CJP, Sri, Sanggariwati, Sukirno, Yuharni, dan Srikandi D. 1991. Prosedur

Operasional Baku Uji Toksisitas. Pusat Pemeriksaan Obat dan Makanan. WHO Collaborating Centre For Quality Assurance of Essential Drugs. Dirjen POM, Depkes RI.

Siswandono dan Bambang. 1995. Kimia Mediasinal. Airlangga University Press,

Surabaya Subroto A. 2006. Pilihan Terbaik Atasi Hepatitis. http://b3d70.wordpress.com/

2007/03/23/pilihan-terbaik-atasi-hepatitis/. [23 Nopember 2007] Sukirno. 2007. Efek Pemberian Ekstrak Dan Minyak Buah Merah (Pandanus

conoideus Lam.) Terhadap Toksisitas Dan Proliferasi Sel Limfosit Manusia Secara In Vitro. Tesis. Sekolah Pasca Sarjana, IPB, Bogor.

Sumampouw AGO. 2003. Colon Hidroterapi. http://www.medikaholistik.com

/2033/2004/11/28/medika.html?xmodule=document_detail&xid=17. [26 Januari 2008]

Susanti. 2006. Karakterisasi Ekstrak Buah Merah (Pandanus conoideus Lam.) dan

Uji Biologis terhadap Proliferasi Sel Limfosit Mencit. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, IPB, Bogor.

Swenson MJ. 1984. Secretory Functions of The Gastrointestinal Tract in Dukes

Physiology of Domestic Animal. Ed ke-10. Cornell University Press, London.

Thieme JG. 1968. Coconut oil processing. Food and Agricultural Organization.

Agricultural Development Cultural paper no 89, Rome. Thomson dan Weil CS. 1952. Tables for Convenient Calculation of Median

Effective Dose (LD50 or ED50) and Instructions in Their Use. Biometrics 8:249-263.

Tizard IR. 1988. Veterinary Immunology An Introduction 3rd Edition. Universitas Airlangga Press, Surabaya.

Winarno FG. 1992. Kimia Pangan dan Gizi. Penerbit PT.Gramedia, Jakarta. ___________. 1997. Kimia Pangan dan Gizi. Penerbit PT.Gramedia, Jakarta. Wirawan R, Immanuel, dan Dharma. 1983. Penilaian Hasil Pemeriksaan Tinja.

Cermin Dunia Kedokteran No.30, Fakultas Kedokteran UI, Jakarta.

Lampiran 1. Hasil penimbangan berat badan mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB selama masa adaptasi

Sampel : Fraksi Air

Dosis (mg/kgBB)

Ulangan ke- Rata-rata berat badan mencit (g) Hari ke-1 Hari ke-3 Hari ke-5 Hari ke-7

5 1 16.58 18.02 21.44 22.52 2 16.21 18.09 21.36 22.43

50 1 16.02 18.14 20.86 21.88 2 15.94 17.62 20.24 21.56

500 1 15.80 17.72 20.31 21.16 2 15.53 16.87 19.87 20.74

5000 1 15.78 17.25 20.04 21.51 2 15.44 16.82 19.88 20.90

50000 1 15.67 17.07 19.94 20.96 2 15.50 16.86 19.76 20.84

70000 1 15.84 17.36 20.04 21.88 2 15.61 17.08 21.19 22.91

98000 1 15.81 17.30 19.34 20.42 2 15.74 17.12 19.16 20.33

137200 1 15.70 17.14 19.22 20.90 2 15.52 17.06 19.14 20.65

Sampel : Fraksi Minyak

Dosis (mg/kgBB)

Ulangan ke- Rata-rata berat badan mencit (g) Hari ke-1 Hari ke-3 Hari ke-5 Hari ke-7

5 1 16.57 18.18 20.92 22.06 2 16.41 18.06 20.14 21.74

50 1 16.38 17.87 20.37 21.82 2 16.26 17.75 20.15 21.60

500 1 15.89 17.40 20.04 21.22 2 15.61 17.13 19.89 20.01

5000 1 15.66 17.13 19.95 20.13 2 15.45 16.94 19.98 20.03

50000 1 15.53 17.04 19.93 20.96 2 15.39 16.91 19.88 20.81

70000 1 15.86 17.44 19.98 21.50 2 15.70 17.06 19.21 20.97

98000 1 15.05 16.78 19.28 20.84 2 15.21 16.99 19.54 21.11

137200 1 14.97 16.48 18.96 20.20 2 15.03 16.67 19.12 20.04

Lampiran 2. Hasil penimbangan berat badan mencit perlakuan fraksi air dan minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB selama masa pengamatan

Sampel : Fraksi Air

Dosis (mg/kgBB)

Ulangan ke-

Rata-rata berat badan mencit (g) Jam ke-

0 Jam ke-

24 Jam ke-

48 Jam ke-

72 Jam ke-

96

5 1 22.52 22.50 23.66 24.79 25.39 2 22.43 22.16 23.30 24.47 25.16

50 1 21.88 21.82 22.92 23.74 24.65 2 21.56 21.68 22.66 23.57 24.42

500 1 21.16 21.12 22.28 23.22 24.16 2 20.74 20.84 22.01 22.96 23.85

5000 1 21.51 21.42 22.57 23.39 24.18 2 20.90 21.03 22.15 23.09 23.87

50000 1 20.96 20.82 21.99 23.09 23.59 2 20.84 20.71 21.86 22.87 23.36

70000 1 21.88 21.70 22.50 23.42 23.72 2 22.91 21.46 22.37 23.19 23.81

98000 1 20.42 20.23 21.50 22.89 23.47 2 20.33 20.14 21.32 22.36 23.29

137200 1 20.90 20.27 21.16 22.10 22.92 2 20.65 20.03 20.99 22.06 22.87

Sampel : Fraksi Minyak

Dosis (mg/kgBB)

Ulangan ke-

Rata-rata berat badan mencit (g) Jam ke-

0 Jam ke-

24 Jam ke-

48 Jam ke-

72 Jam ke-

96

5 1 22.06 21.56 22.46 23.33 24.12 2 21.74 21.44 22.39 23.16 23.82

50 1 21.82 21.04 22.00 22.86 23.50 2 21.60 20.89 21.87 22.76 23.45

500 1 21.22 20.02 20.71 21.35 21.91 2 20.01 19.85 20.83 21.47 22.07

5000 1 20.13 18.14 18.90 19.56 20.69 2 20.03 17.98 18.79 19.43 20.55

50000 1 20.96 18.36 19.05 19.61 20.38 2 20.81 18.02 18.70 19.26 20.05

70000 1 21.50 18.89 19.68 20.78 21.50 2 20.97 18.60 19.33 20.43 21.13

98000 1 20.84 16.73 17.72 18.90 19.88 2 21.11 16.81 17.75 18.96 19.65

137200 1 20.20 16.72 17.32 18.00 18.88 2 20.04 16.69 17.27 17.94 18.67

Lampiran 3. Hasil analisis sidik ragam pengaruh dosis terhadap perubahan berat badan mencit perlakuan fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

Lampiran 4. Hasil analisis sidik ragam pengaruh dosis terhadap perubahan berat

badan mencit perlakuan fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB

ANOVA

perubahan berat badan (gram)

,280 7 ,040 9,548 ,002,034 8 ,004,314 15

Between GroupsWithin GroupsTotal

Sum ofSquares df Mean Square F Sig.

ANOVA


1,417 7 ,202 8,059 ,004,201 8 ,025

1,618 15

Between GroupsWithin GroupsTotal

Sum ofSquares df Mean Square F Sig.

Lampiran 5. Hasil analisis beda duncan pengaruh dosis terhadap perubahan

berat badan mencit untuk perlakuan fraksi air buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB


Duncana

2 ,34252 ,53002 ,6438 ,64382 ,70002 ,70382 ,70502 ,75132 ,7637

1,000 ,117 ,125

dosis (mg/kgBB)7000013720050000550500098000500Sig.

N 1 2 3Subset for alpha = .05

Means for groups in homogeneous subsets are displayed.Uses Harmonic Mean Sample Size = 2,000.a.

Lampiran 6. Hasil analisis beda duncan pengaruh dosis terhadap perubahan berat badan mencit untuk perlakuan fraksi minyak buah merah dosis 5-137200 mg/kgBB


Duncana

2 -,33632 -,30252 ,0200 ,02002 ,0975 ,09752 ,1350 ,1350 ,13502 ,3438 ,3438 ,34382 ,4413 ,44132 ,5175

,063 ,091 ,076 ,053

dosis (mg/kgBB)1372009800070000500005000500505Sig.

N 1 2 3 4Subset for alpha = .05

Means for groups in homogeneous subsets are displayed.Uses Harmonic Mean Sample Size = 2,000.a.

skripsi pengujian toksisitas akut … dan kesabarannya dalam membimbing penulis selama kuliah hingga...

Documents