laporan resmi praktikum fisiologi ternak

44
i ANATOMI PENCERNAAN DAN STATUS HEMATOLOGI LAPORAN RESMI PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK Disusun oleh: Kelompok XI C Fikri Faisal Haq 23010112140124 Mohammad Ridwan Setiyono 23010112130140 Lupita Nilam Mayangsari 23010112140144 Maharani Malika Putri Aliyyie 23010112130172 JURUSAN S1-PETERNAKAN FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN UNIVERSITAS DIPONEGORO SEMARANG 2013

Upload: mohammad-ridwan

Post on 18-Jul-2015

689 views

Category:

Education


11 download

TRANSCRIPT

i

ANATOMI PENCERNAAN DAN

STATUS HEMATOLOGI

LAPORAN RESMI

PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK

Disusun oleh:

Kelompok XIC

Fikri Faisal Haq 23010112140124

Mohammad Ridwan Setiyono 23010112130140

Lupita Nilam Mayangsari 23010112140144

Maharani Malika Putri Aliyyie 23010112130172

JURUSAN S1-PETERNAKAN

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2013

ii

LEMBAR PENGESAHAN

Judul : LAPORAN RESMI PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK

Kelompok : XIC

(SEBELAS)C

Jurusan : S1-PETERNAKAN

Tanggal Pengesahan : Juni 2013

Menyetujui,

Koordinator Umum Asisten Praktikum

Fisiologi Ternak

Asisten Pembimbing

Hida Lailli Mutiara Rini Muhammad Taufiq Akbar

NIM. 23010110130190 NIM. 23010110130169

Mengetahui,

Koordinator Praktikum

Fisiologi Ternak

Dr. Ir. Isroli, M.P.

NIP. 19580205 198603 1 002

iii

RINGKASAN

KELOMPOK XIc. 2013. Laporan Resmi Praktikum Fisiologi Ternak (Asisten:

Muhammad Taufiq Akbar).

Praktikum Fisiologi Ternak Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia dan

Pseudo-ruminan dilaksanakan pada hari Kamis, tanggal 25 April 2013 dan 16 Mei

2013 pukul 09.00 - 11.00 WIB dan Pembuatan Apus Darah, Pengukuran Kadar

Hematokrit, Hemoglobin Darah Kelinci, Penghitungan Leukosit dan Eritrosit

Darah Ayam Broiler Jantan pada hari Kamis, tanggal 23 Mei 2013 dan 30 Mei

2013 pukul 09.00-11.00 WIB di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia Ternak,

Fakultas Peternakan dan Pertanian Universitas Diponegoro, Semarang. Tujuan

praktikum adalah mengetahui saluran pencernaan ruminansia, pseudo-ruminan,

pembuatan apus darah, pengukuran kadar hematokrit dan hemoglobin darah,

perhitungan leukosit dan eritrosit.

Materi yang digunakan dalam praktikum adalah masker, sarung tangan,

alas plastik, box plastik, meteran, gunting bedah, pisau, kaca objek, pipet tetes,

mikroskop, bunsen, pipet hemoglobin, pengaduk gelas, blok komparator, tabung

mikrokapiler, sentrifuse, junetsky, selang penyedot, bilik hitung improve neubeur,

hand counter, bahan awetan saluran pencernaan kambing, saluran pencernaan

kelinci, aquades, alkohol 70%, larutan HCl 0,1 N, larutan turk, larutan hayem,

larutan giemsa, darah kelinci, dan darah ayam broiler jantan. Metode yang

dilakukan adalah anatomi saluran pencernaan ruminansia, anatomi saluran

pencernaan pseudo-ruminan, uji apus darah, penetapan kadar hemoglobin, kadar

hematokrit, perhitungan jumlah leukosit, dan perehitungan jumlah eritrosit.

Berdasarkan hasil praktikum perbedaan pencernaan ruminansia dan

pseudo-ruminan adalah pada ruminansia memiliki lambung yang berkembang

sedangkan pada pseudo-ruminan tidak berkembang, sekum pada pseudo-ruminan

lebih besar dari sekum ruminan, ruminansia dapat mencerna serat kasar,

sedangkan pseudo-ruminan tidak dapat, hematokrit adalah persentase volume

darah total yang mengandung eritrosit, hemoglobin berfungsi mengangkut bagi

oksigen dan karbondioksida, pembuatan preparat apus suatu sarana yang

digunakan untuk menilai berbagai unsur darah, jumlah leukosit dan eritrosit pada

ayam broiler jantan lebih dari standar.

Kata kunci: Saluran Pencernaan Ruminansia, Saluran Pencernaan Pseudo-

ruminan, Apus Darah, Hematokrit, Hemoglobin, Leukosit,

Eritrosit.

iv

KATA PENGANTAR

Puji syukur penulis panjatkan atas kehadirat Allah SWT yang telah

berkenan melimpahkan rahmat-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan

Laporan Praktikum Fisiologi Ternak ini dengan sebaik-baiknya. Praktikum ini

diadakan bertujuan agar para mahasiswa mengenal dan mengetahui lebih luas

tentang Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia dan Pseudo-Ruminan serta

Fisiologi Darah Kelinci dan Ayam.

Penulis menyampaikan terimakasih kepada Bapak Dr. Ir. Isroli, M.P

selaku Koordinator Praktikum Fisiologi Ternak, Saudari Hida Lailli Mutiara Rini

selaku Koordinator Umum Asisten Praktikum Fisologi Ternak dan Saudara

Muhammad Taufiq Akbar selaku Asisten Pembimbing yang telah membimbing

dan membantu penulis selama praktikum berlangsung sampai penyusunan laporan

praktikum Fisiologi Ternak ini selesai. Harapan penulis semoga laporan

praktikum ini dapat bermanfaat bagi pembaca.

Demikian kata pengantar dari penulis, penulis ucapkan terimakasih atas

perhatian dan koreksi dari berbagai pihak.

Semarang, Juni 2013

Penulis

v

DAFTAR ISI

Halaman

JUDUL .......................................................................................................... i

LEMBAR PENGESAHAN ........................................................................... ii

RINGKASAN ................................................................................................ iii

KATA PENGANTAR ................................................................................... iv

DAFTAR ISI ................................................................................................. v

DAFTAR TABEL .......................................................................................... vi

DAFTAR ILUSTRASI .................................................................................. vii

DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................. viii

ACARA I ANATOMI SALURAN PENCERNAAN RUMINANSIA DAN

PSEUDO-RUMINAN

BAB I METODOLOGI ................................................................................. 1

1.1. Materi ......................................................................................... 1

1.1.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia ....................... 1

1.1.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan ................ 2

1.2. Metode ........................................................................................ 2

2.1.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia ....................... 2

2.1.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan ................ 3

BAB II HASIL DAN PEMBAHASAN ......................................................... 4

2.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia .................................. 4

2.1.1. Mulut ............................................................................... 5

2.1.2. Esofagus........................................................................... 6

2.1.3. Lambung .......................................................................... 6

2.1.3.1. Rumen ................................................................. 7

2.1.3.2. Retikulum ........................................................... 7

2.1.3.3. Omasum .............................................................. 8

2.1.3.4. Abomasum .......................................................... 8

2.1.4. Usus Halus ....................................................................... 9

2.1.5. Sekum .............................................................................. 10

vi

2.1.6. Usus Besar ...................................................................... 10

2.1.7. Sekum .............................................................................. 10

2.1.8. Anus ................................................................................. 11

2.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan .......................... 12

2.2.1. Mulut ............................................................................... 13

2.2.2. Esofagus........................................................................... 13

2.2.3. Lambung .......................................................................... 14

2.2.4. Usus Halus ....................................................................... 14

2.2.5. Sekum .............................................................................. 15

2.2.6. Usus Besar ....................................................................... 15

2.2.7. Anus ................................................................................. 16

2.3. Perbedaan Saluran Pencernaan Ruminansia dan Pseudo-

Ruminansia .................................................................................. 16

BAB III KESIMPULAN ................................................................................ 18

DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 19

ACARA II PEMBUATAN APUS DARAH, PENGUKURAN KADAR

HEMOGLOBIN, HEMATOKRIT, PENGHITUNGAN

ERITROSIT DAN LEUKOSIT DARAH

BAB I METODOLOGI ................................................................................. 21

1.1. Materi .......................................................................................... 21

1.2. Metode ........................................................................................ 21

1.1.1. Pembuatan Preparat Apus Darah Ayam ......................... 22

1.1.2. Pengukuran Kadar Hemoglobin ..................................... 23

1.1.3. Penetapan Nilai Hematokrit ........................................... 23

1.1.4. Perhitungan Jumlah Leukosit ......................................... 23

1.1.5. Perhitungan Jumlah Eritrosit .......................................... 24

BAB II HASIL DAN PEMBAHASAN ......................................................... 25

2.1. Apus Darah.................................................................................. 25

2.2. Pengukuran Kadar Hemoglobin .................................................. 26

2.3. Penetapan Nilai Hematokrit ........................................................ 27

2.4. Penghitungan Jumlah Leukosit ................................................... 28

2.5. Penghitungan Jumlah Eritrosit .................................................... 29

BAB III KESIMPULAN ............................................................................... 31

DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 32

LAMPIRAN ................................................................................................... 33

vii

DAFTAR TABEL

Nomor Halaman

1. Penetapan Kadar Hemoglobin.................................................... 26

2. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Ruminansia......................... 33

3. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Pseudo-Ruminan................ 33

viii

DAFTAR ILUSTRASI

Nomor Halaman

1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia.................................... 4

2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan............................ 12

3. Apus Darah Perbesaran 40X dan 100X........................................ 25

4. Bilik Hitung Improve Neubauer Leukosit..................................... 28

5. Bilik Hitung Improve Neubauer Eritrosit ..................................... 29

ix

DAFTAR LAMPIRAN

Nomor Halaman

1. Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia ...................... 33

2. Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminansia ......... 33

ACARA I

ANATOMI SALURAN PENCERNAAN

RUMINANSIA DAN PSEUDO-RUMINAN

1

BAB I

METODOLOGI

Praktikum Fisiologi Ternak dengan materi anatomi saluran pencernaan

ruminansia dilaksanakan pada hari Kamis 25 April 2013 Pukul 09.00 - 11.00 WIB

dan anatomi saluran pencernaan pseudo-ruminan dilaksanakan pada hari Kamis

16 Mei 2013 Pukul 09.00 - 11.00 WIB di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia

Ternak, Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.

1.1. Materi

1.1.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia

Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan ruminansia

menggunakan alat antara lain, masker yang berfungsi untuk mengurangi bau

awetan saluran pencernaan kambing, sarung tangan yang berfungsi untuk

melindungi tangan dari cairan awetan saluran pencernaan kambing, alas plastik

yang berfungsi untuk meletakkan saluran pencernaan kambing yang akan diamati,

box plastik yang digunakan sebagai tempat penyimpanan awetan organ

pencernaan ruminansia, meteran berfungsi untuk mengukur panjang dan lebar

saluran pencernaan, dan alat tulis untuk menulis hasil pengamatan. Bahan yang

digunakan adalah awetan saluran pencernaan kambing yang digunakan untuk

pengamatan, pengukuran panjang dan lebar organ pencernaan, serta formalin

adalah cairan yang digunakan untuk mengawetkan saluran pencernaan pada

kambing.

2

1.1.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan

Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan pseudo-ruminan

menggunakan alat antara lain, gunting bedah yang digunakan untuk membedah

dan badan kelinci, pisau digunakan untuk menyayat bagian-bagian organ kelinci,

masker yang berfungsi untuk mengurangi bau awetan saluran pencernaan kelinci,

sarung tangan yang berfungsi untuk melindungi tangan, nampan yang berfungsi

untuk meletakkan saluran pencernaan yang akan diamati, meteran berfungsi untuk

mengukur panjang dan lebar saluran pencernaan, dan alat tulis untuk menulis hasil

pengamatan. Bahan yang digunakan adalah saluran pencernaan kelinci yang

digunakan sebagai obyek pengamatan dan air digunakan untuk membersihkan sisa

praktikum.

1.2. Metode

1.2.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia

Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan ruminansia dilakukan

dengan mengeluarkan awetan saluran pencernaan kambing dari box plastik,

meletakkan saluran pencernaan kambing diatas alas plastik, menyusun organ-

organ saluran pencernaan kambing diatas alas plastik sesuai dengan urutan bagian

anatominya. Mengukur panjang dan lebar saluran pencernaan kambing yang

meliputi esofagus, rumen, retikulum, omasum, abomasum, usus halus, usus besar,

sekum, dan anus menggunakan meteran. Mencatat hasil pengamatan pada tabel

yang telah disediakan.

3

1.2.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan

Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan pseudo-ruminan

dilakukan dengan menyembelih dan menguliti kelinci. Mengeluarkan saluran

pencernaan kelinci dalam tubuh, meletakkan saluran pencernaan kelinci diatas

nampan, menyusun organ saluran pencernaan kelinci diatas nampan sesuai dengan

urutan bagian anatominya, mengukur panjang dan lebar saluran pencernaan

kelinci yang meliputi esofagus, lambung, usus halus, sekum, usus besar, dan anus.

Mencatat hasil pengamatan pada tabel yang telah disediakan.

4

BAB II

HASIL DAN PEMBAHASAN

2.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia

Sumber : Data Primer Prktikum Fisiologi Sumber: google

Ternak, 2013.

Ilustrasi 1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia

Keterangan :

1. Esfagus 6. Usus Halus

2. Rumen 7. Usus Besar

3. Retikulum 8. Sekum

4. Omasum 9. Anus

5. Abomasum

Berdasarkan hasil pengamatan pada praktikum ini, saluran pencernaan

ruminansia (kambing) terdiri dari esofagus, rumen, retikulum, omasum,

abomasum, usus halus, usus besar, sekum, rektum dan anus. Hasil pengamatan

diperoleh panjang esofagus adalah 32 cm dan lebarnya 1,5 cm, panjang rumen

adalah 29 cm dan lebarnya 20,5 cm, panjang retikulum adalah 9 cm dan lebarnya

9,5 cm, panjang omasum adalah 8,5 cm dan lebarnya 7 cm, panjang abomasum 23

1

2

3 4 5

7

6

9

8

5

cm dan lebarnya 4,5 cm, panjang usus halus 1402 cm dan lebar 1 cm, panjang

usus besar 296 cm dan lebar 2,5 cm, serta panjang sekum 4 cm dan lebarnya 4 cm.

Organ pencernaan ruminansia terdiri dari mulut, esofagus, lambung

(rumen, retikulum, omasum, abomasum), usus halus, usus besar, sekum, dan anus.

Hal ini sesuai pendapat Blackely dan Bade (1994) bahwa hewan ruminansia

memiliki lidah untuk menarik makanan, kemudian esofagus, rumen, retikulum,

omasum, abomasum, usus halus, sekum, usus besar, dan anus. Ditambahkan oleh

Rianto dan Purbowati (2009) bahwa urutan sistem pencernaan ruminansia dimulai

dari mulut kemudian masuk ke saluran esofagus, lambung (rumen, retikulum,

omasum, abomasum), selanjutnya masuk dalam saluran usus halus, dilanjutkan ke

sekum, usus besar, rektum dan dikeluarkan melewati anus dalam bentuk feses.

2.1.1. Mulut

Proses pencernaan di dalam mulut terjadi secara mekanik dan kimiawi.

Di dalam mulut terjadi proses mastikasi, salivasi, dan deglutisi. Hal ini sesuai

dengan pendapat Kamal (1994) bahwa mastikasi bertujuan untuk menghaluskan

atau mengecilkan ukuran pakan sehingga mempercepat hidrolisis, mencegah

terjadinya luka pada saluran pencernaan, dan memudahkan penelanan.

Ditambahkan oleh Blakely dan Bade (1994) bahwa hewan ruminansia

menggunakan lidah untuk menarik dan memotong rumpu-rumput kemudian

dikunyah sebentar sebelum ditelan dan dicampur dengan saliva di dalam mulut

untuk melumasinya. Salivasi merupakan pencampuran air ludah dan makanan

yang berfungsi sebagai pelincir saat penelanan. Air ludah mengandung kira-kira

6

99% air dan 1% yang terdiri dari musin, mineral-mineral, dan enzim alfa-amilase

(Tillman et al., 1998).

2.1.2. Esofagus

Berdasarkan hasil pengamatan diperoleh panjang esofagus pada saluran

pencernaan kambing adalah 32 cm dan lebarnya 1,5 cm. Pakan masuk ke dalam

mulut kemudian melewati esofagus dan dicerna di dalam lambung. Esofagus

merupakan saluran pencernaan yang berfungsi untuk menghubungkan pakan dari

mulut ke lambung. Hal ini sesuai dengan pendapat Widayati et al., (2008) bahwa

esofagus merupakan tempat lewatnya makanan dari mulut ke stomach, yang

merupakan saluran dari pharinx ke kardia. Esofagus terdiri dari otot, sub mukosa,

dan mukosa. Hal ini sesuai dengan pendapat Tillman et al., (2008) organ ini

dilapisi membran mukosa pada permukaannya.

2.1.3. Lambung

Berdasarkan hasil pengamatan diperoleh panjang rumen pada kambing

adalah 29 cm dan lebarnya 20,5 cm, panjang retikulum adalah 9 cm dan lebarnya

9,5 cm, panjang omasum adalah 8,5 cm dan lebarnya 7 cm, panjang abomasum

adalah 23 cm dan lebarnya 4,5 cm. Kambing memiliki 4 lambung yang terdiri dari

rumen, retikulum, omasum, dan abomasum. Hal ini sesuai dengan pendapat

Blackely dan Bade (1994) bahwa kambing (ruminansia) berbeda dengan ternak

mamalia lainnya karena mempunyai lambung sejati yaitu abomasum dan lambung

depan yang membesar yang mempunyai tiga ruangan yaitu retikulum, rumen, dan

7

omasum. Diperjelas oleh Srigandono (1996) bahwa lambung kambing

(ruminansia) yang terdiri atas empat bagian yaitu rumen, retikulum, omasum, dan

abomasum dengan ukuran yang bervariasi sesuai dengan umur ternak, daya

tampung air masing-masing lambung, dan makanan alamiahnya.

2.1.3.1. Rumen, panjang rumen adalah 29 cm dan lebarnya 20,5 cm. Rumen

berbentuk kantong muskular yang besar terentang dari diafragma menuju ke

pelvis dan hampir menempati sisi kiri dari rongga perut. Hal ini sesuai dengan

pendapat Frandson (1992) bahwa rumen merupakan suatu maskular yang besar

dan terentang dari diafragma menuju ke pelvis dan hampir menempati sisi kiri

dari rongga abdominal. Rumen berfungsi sebagai tempat untuk mencerna serat

kasar dan zat-zat kasar dengan bantuan mikroba dengan jalan fermentasi yang

berbentuk seperti handuk. Hal ini sesuai dengan pendapat Tillman, et al (1991)

bahwa pencernaan fermentatif dilakukan mikroorganisme rumen dan secara

hidrolisis oleh jasad renik melalui penguraian di dalam rumen. Ditambahkan oleh

Rianto dan Purbowati (2009) bahwa rumen merupakan kantong yang besar

sebagai tempat persediaan dan pencampuran bahan pakan untuk fermentasi oleh

mikroorganisme.

2.1.3.2. Retikulum, panjang retikulum adalah 9 cm dan dan lebarnya 9,5 cm.

Dibagian bawah rumen terdapat bagian retikulum yang mirip dengan sarang

lebah. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson (1992) bahwa bagian dalam dari

retikulum diselimuti oleh membran mukosa yang mengandung intersecting ridge

yang membagi permukaan menyerupai sarang lebah. Retikulum merupakan salah

8

satu bagian dari 4 lambung ruminansia setelah makanan melewati rumen maka

dilanjutkan ke retikulum. Hal ini sesuai dengan pendapat Blakely dan Bade (1994)

bahwa setelah dari rumen makanan masuk ke retikulum yang disebut juga

honcycomb, waterbag, atau pace setter. Di dalam retikulum terjadi pencernaan

fermentatif. Retikulum berfungsi untuk menyaring zat-zat asing yang masuk ke

perut serta mengatur aliran pencernaan dari rumen ke omasum. Setelah dari rumen

makanan masuk ke retikulum. Ditambahkan oleh Rianto dan Purbowati (2009)

bahwa retikulum berfungsi mengatur aliran digesta dari rumen ke omasum.

2.1.3.3. Omasum, panjang omasum adalah 8,5 cm dan lebarnya 7 cm. Makanan

yang masuk kedalam omasum ke dalam omasum akan di absorbsi. Hal ini sesuai

dengan pendapat Cambell et al., (2004) bahwa ruminansia menelan kembali

mamahan dan bergerak ke arah omasum dimana air dikeluarkan di sana.

Ditambahkan oleh Rianto dan Purbowati (2009) bahwa permukaan dinding

omasum berlipat-lipat dan kasar dimana akan terjadi penyaringan partikel digesta

yang akan masuk ke abomasum, partikel digesta yang masih terlalu besar akan

dikembalikan ke retikulum, selanjutnya partikel digesta tersebut akan mengalami

regurgitasi (dikeluarkan kembali ke mulut) dan remastikasi (dikunyah kembali).

Omasum menerima campuran pakan dan air, sebagian besar air diserap oleh

luasnya daerah penyerapan yang terdiri dari banyak lapisan, omasum memiliki pH

7 yang berarti netral (Akoso, 2002).

2.1.3.4. Abomasum, panjang abomasum adalah 23 cm dan lebarnya 4,5 cm.

Abomasum sering disebut perut sejati dan sebagian besar pencernaan di lakukan

9

di abomasum. Hal ini sesuai dengan pendapat Blakely dan Bade (1994) bahwa

sebagian besar pekerjaan pencernaan diselesaikan di abomasum yang disebut juga

perut sejati karena kemiripanya dengan fungsi perut sejati pada perut tunggal

hewan non-ruminansia. Siregar (1994) menambahkan bahwa abomasum disebut

perut sejati karena pada daerah ini terdapat kelenjar digesti yang berperan dalam

proses pemecahan zat gizi. Diperjelas oleh Rianto dan Purbowati (2009) bahwa

abomasum atau perut sejati pada ternak ruminansia berfungsi seperti pada ternak

non-ruminansia.

2.1.4. Usus Halus

Berdasarkan hasil pengamatan, usus halus kambing memiliki panjang

1402 cm dan lebar 1 cm. Usus halus ruminansia sangat panjang sehingga

penyerapan sari-sari makanan yang terjadi didalamnya akan maksimal. Usus halus

berbentuk saluran tabung yang memanjang dan tidak beraturan panjang usus

kambing mencapai 45 meter. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso (2002) bahwa

usus kambing berbentuk rabung ini beberapa kali melebar dan menyempit

sepanjang rangkaiannya sesuai dengan fungsinya. Small instenstine yang sangat

panjang itu berfungsi agar penyerapan sari-sari makanan terjadi secara maksimal.

Pada bagian small instenstine terdapat jonjot usus atau mikrovili yang berfungsi

untuk memperluas area penyerap zat nutrien pakan. Pakan yang masuk ke dalam

small instenstine yang berasal dari abomasum. Hal ini sesuai dengan pendapat

Cambell et al., (2004) bahwa makanan yang telah dicerna di abomasum akan

diteruskan ke small instenstine.

10

2.1.5. Usus Besar

Berdasarkan hasil pengamatan usus besar kambing memiliki panjang 296

cm dan lebar 2,5 cm. Bagian organ pencernaan setelah small intestine adalah

large intestine (usus besar). Pada usus besar, makanan sisa penyerapan disalurkan

ke usus besar untuk diabsorbsi komponen airnya. Hal ini sesuai dengan pendapat

Blakely dan Bade (1994) yang menyatakan bahwa bahan-bahan yang tidak

tercerna bergerak ke sekum dan usus besar. Rianto dan Purbowati (2009)

menambahkan bahwa hanya sedikit sekali digesta yang terserap lewat dinding

usus besar. Usus besar terdiri dari sekum, kolon, dan rektum. Makanan yang tidak

dapat dicerna oleh saluran pencernaan ditampung di sekum. Usus besar tidak

menghasilkan enzim karena kelenjar yang ada adalah mukosa, karenanya tiap

pencernaan yang terjadi di dalamnya adalah sisa-sisa kegiatan oleh enzim-enzim

dari usus halus dan enzim yang dihasilkan oleh jasad renik yanng banyak terdapat

pada usus besar. Didalam sekum terjadi pencernaan fermentatif (Frandson, 1992).

2.1.6. Sekum

Berdasarkan hasil pengamatan sekum kambing panjangnya 4 cm dan

lebarnya 4 cm. Ruminansia memiliki sekum yang tidak terlalu besar karena

fermentasi yang terjadi di lambung sudah efektif. Di bagian usus besar terdapat

bagian pelebaran yang disebut dengan sekum. Hal ini sesuai dengan pendapat

Blakely dan Bade (1994) yang menyatakan bahwa bahan-bahan yang tidak

tercerna bergerak ke sekum dan usus besar. Sekum terjadi pencernaan secara

fermentatif karena terdapat mikroba dalam sekum sehingga didalam sekum

11

merupakan tempat pembusukan makanan menjadi feses yang nantinya dibuang

(Akoso, 2002).

2.1.7. Anus

Berdasarkan hasil pengamatan praktikum, bagian terakhir dari saluran

pencernaan ruminansia adalah bagian anus. Makanan yang sudah melewati mulut

dan esofagus kemudian dicerna di dalam lambung, usus halus, dan usus besar,

sekum kemudian dikeluarkan lewat anus berupa ampas. Hal ini sesuai pendapat

Satter dan Roffler (1981) yang menyatakan bahwa makanan yang tidak tercerna

akan dikeluarkan dalam bentuk feses. Ditambahkan oleh Campbell et al., (2004)

bahwa pakan setelah mengalami penyerapan air sisa-sisa makanan berupa ampas

dikeluarkan melalui anus. Diperjelas oleh Rianto dan Purbowati (2009) bahwa

materi yang tidak terserap pada usus besar kemudian di keluarkan lewat anus

sebagai feses. Makanan yang sudah dicerna oleh saluran pencernaan (mulut,

esofagus, lambung, usus halus, usus besar, sekum) kemudian dikeluarkan lewat

anus berupa ampas.

12

2.2. Anatomi Saluran pencernaan Pseudo-Ruminan

Sumber : Data Primer Prktikum Fisiologi Sumber: dc373.4shared.com

Ternak, 2013.

Ilustrasi 2. Anatomi Saluran pencernaan Pseudo-Ruminan

Keterangan :

1. Esfagus 4. Sekum

2. Lambung 5. Usus besar

3. Usus Halus 6. Anus

Hasil pengamatan diperoleh panjang esofagus adalah 2 cm dan lebarnya

0,4 cm. Panjang lambung 7 cm dan lebarnya 3 cm. Usus kecil panjangnya 133 cm

dan lebarnya 0,5 cm. Sekum panjangnya 20 cm dan lebarnya 1,5 cm dan usus

besar panjangnya 48 cm dan lebarnya 0,3 cm. Anus memiliki panjang 2 cm dan

lebar 0,4 cm. Susunan organ pencernaan kelinci dimulai dari mulut, esofagus,

lambung, usus halus, usus besar, dan anus. Hal ini sesuai dengan pendapat

Parakkasi (1986) bahwa pencernaan ternak pseudoruminansia terdiri atas mulut,

oseofagus, lambung, usus halus, usus besar, dan anus. Selain itu terlihat cecum

yang berkembang yang menyebabkan usus besar terlihat membesar. Ditambahkan

oleh Tillman et al., (1991) bahwa hewan lambung tunggal (kelinci) organ saluran

4

3

1

2

6 5

13

pencernaanya terdiri dari mulut, faring, kerongkongan, lambung, usus halus yang

terdiri dari doedenum, jejenum, ileum, usus besar yang terdiri dari kolon, sekum,

dan rektum kemudian berakhir pada anus.

2.2.1. Mulut

Berdasarkan hasil pengamatan dalam praktikum anatomi digesti pseudo-

ruminansia, saluran pencernaan dimulai dari mulut dimana didalam mulut terdapat

gigi, pakan juga mengalami pencampuran dengan saliva agar mudah ditelan. Hal

ini sesuai dengan pendapat Rianto dan Purbowati (2009) bahwa di dalam mulut

pakan mengalami penghancuran pertama memalui gigi. Air ludah pseudo-

ruminansia tidak mengsekresikan enzim amilase. Hal ini sesuai dengan pendapat

Tillman et al., (1998) bahwa kelenjar ludah hewan non ruminansia tidak

mengsekresikan enzim amilase.

2.2.2. Esofagus

Hasil pengamatan diperoleh panjang esofagus kelinci adalah 2 cm dan

lebarnya 0,4 cm. Esofagus adalah saluran yang menghubungkan mulut dan

lambung. Hal ini sesuai dengan pendapat Siregar (1994) yang menyatakan bahwa

esofagus merupakan suatu saluran yang menghubungkan antara rongga mulut

dengan lambung. Esofagus memiliki kemampuan untuk melakukan gerak

peristaltik yaitu pemecahan dan perombakan pakan. Hal ini sesuai dengan

pendapat Kartadisastra (1997) yang menyataaakan bahwa dalam esofagus terjadi

gerak peristaltik sehingga pakan dapat masuk ke dalam lambung.

14

2.2.3. Lambung

Hasil pengamatan diperoleh panjang lambung kelinci 7 cm dan lebarnya

3 cm. Lambung merupakan ruangan yang berfungsi sebagai tempat pencernaan

dan penyimpanan pakan. Hewan pseudo–ruminansia merupakan hewan

monogastrik yang memiliki lambung tunggal dan sederhana. Hal ini sesuai

dengan pendapat Parakkasi (1989) yang menyatakan bahwa kelinci merupakan

hewan herbivora monogastrik yang mempunyai lambung sederhana. Di dalam

lambung terjadi pencernaan secara kimiawi serta merupakn tempat penyimpanan

semantara. Menurut Thakur dan Puranik (1981) yang menyatakan bahwa

makanan akan disimpan sementara di dalam lambung serta terjadi proses absopsi,

sekresi endokrin dan untuk pembentukan sel darah merah.

2.2.4. Usus Halus

Hasil pengamatan diperoleh panjang usus kecil kelinci 133 cm dan

lebarnya 0,5 cm. Berdasarkan hasil pengamatan anatomi saluran digesti pseudo–

ruminansia diperoleh hasil pengukuran panjang esofagus adalah 130 cm dan

lebarnya 0,4 cm. Dalam usus halus terjadi pencernaan protein dan karbohidrat.

Usus halus terbagi atas 3 bagian yaitu : duodenum, jejenum dan ileum. Hal ini

sesuai dengan pendapat Frandson (1992) yang menyatakan bahwa usus halus

merupakan tempat pencernaan utama karbohidrat. Usus halus kelinci berfungsi

untuk absorpsi dan pencernaan makanan. Menurut Siregar (1994) yang

15

menyatakan bahwa pencernaan protein pada pseudo–ruminansia lebih cepat

dibandingkan dengan ternak yang lain.

2.2.5. Sekum

Hasil pengamatan diperoleh panjang sekum kelinci 20 cm dan lebarnya

1,5 cm. Kelinci melakukan fermentasi pakan dan umumnya terjadi di sekum yaitu

50% dari seluruh kapasitas saluran pencernaannya. Hal tersebut sesuai dengan

pendapat Parakkasi (1986) yang menyatakan bahwa sekum mempunyai fungsi

seperti pada ruminansia yaitu tempat fermentasi serat kasar dan karbohidrat oleh

mikroorganisme, sintesis asam-asam amino atau protein dan vitamin B dan K oleh

mikroorganisme. Kelinci memiliki sekum yang besar tetapi tidak mampu

mencerna bahan-bahan organik dan serat kasar dari hijauan sebanyak yang dapat

dicerna oleh ternak herbivora lainnya. Berbentuk seperti kantung berwarna hijau

tua keabu-abuan. Di dalam sekum terjadi pencernaan selulosa. Hal ini didukung

oleh pendapat dari Aminudin (1996) yang menyatakan bahwa pencernaan selulosa

di sekum dilakukan oleh bakteri yang menghasilkan asam asetat, propionat, dan

butirat.

2.2.6. Usus Besar

Hasil pengamatan diperoleh panjang usus besar kelinci 48 cm dan

lebarnya 0,3 cm. Usus besar merupakan tempat terjadinya penyerapan air utama

dan terjadi di dalam kolon. Hal ini sesuai dengan pendapat dari Parakkasi (1986)

yang menyatakan bahwa kelinci mempunyai duodenum yaitu kolon besar yang

16

kapasitas utamanya kurang lebih dua kali sekum kolon kecil sehingga mampu

untuk menyerap air. Usus besar pada kelinci lebih menonjol dibandingkan yang

lainnya, hal ini didukung oleh pendapat dari Frandson (1992) yang menyatakan

bahwa variasi pada usus besar dari satu spesies ke spesies lain jauh lebih

menonjol dibandingkan dengan usus halus.

2.2.7. Anus

Anus merupakan bagian akhir dari saluran pencernaan. Anus dikontrol

oleh otot-otot spinter halus. Anus merupakan bagian terminal dari saluran

pencernaan dan kulit. Hal tersebut sesuai dengan pendapat Frandson (1992) yang

menyatakan bahwa anus dikontrol oleh otot-otot spinter halus. Hal tersebut juga

diperkuat oleh Blakely dan Bade (1994) yang berpendapat bahwa saluran

pencernaan pseudoruminansia yang paling akhir adalah anus dan sebagai saluran

untuk mengeluarkan feses.

2.3. Perbedaan Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia dan Pseudo–

Ruminansia

Perbedaan sistem pencernaan makanan pada hewan ruminansia, tampak

pada jumlah lambung dan mempunyai fungsi lambung yang berbeda-beda.

Abomasum ruminansia mempunyai fungsi yang sama dengan lambung non-

ruminansia dan pseudoruminan, sehingga abomasum disebut pula sebagai

lambung sejati. Ternak ruminansia, proses fermentasi terjadi di rumen. Sedangkan

pada ternak pseudo-ruminan, proses fermentasi terjadi di sekum. Pada ternak

ruminansia terjadi proses mamah biak sedangkan pada ternak pseudo ruminansia

17

tidak terjadi proses memamah biak. Pada ternak ruminansia terjadi proses mamak

biak sedangkan pada ternak pseudo-ruminansia tidak terjadi proses memamah

biak. Hal ini sesuai dengan pendapat Tillman et al., (1991) yang mengatakan

ternak ruminansia sangat berbeda dengan ternak mamalia lain karena ruminansia

mempunyai lambung besar yaitu abomasum, lambung muka yang membesar dan

memiliki tiga ruangan yaitu rumen, retikulum dan omasum. Lambung ruminansia

berkembang karena sebagai tempat fermentasi serat kasar yang dimakan oleh

ternak. Sedangkan ternak non rumiansia memiliki tembolok, gizzard, dan sekum

yang tidak berkembang dan ternak pseudoruminansia memilik sekum yang

berkembang sebagai tempat pencernaan fermentatif. Hal ini sesuai dengan

pendapat Parakkasi (1986) yang mengatakan bahwa pembentukan sekum akan

menyebabkan pembesaran pada kolon, tanpa sekum tidak ada coprophagi.

18

BAB III

KESIMPULAN

Ruminansia adalah ternak atau hewan pemakan tumbuhan yang

mempunyai empat bagian perut, yaitu rumen, retikulum, omasum, dan,

abomasum. Saluran pencernaan hewan ruminansia adalah mulut, esofagus,

lambung yang memiliki 4 bagian yaitu rumen, retikulum, omasum, abomasum,

usus halus, usus besar, sekum, dan anus. Sedangkan Pseudo–ruminansia adalah

hewan monogastrik yang memilki lambung tunggal dan sederhana. Saluran

pencernaan hewan pseudo-ruminansia adalah mulut, esofagus, lambung, usus

halus, sekum, usus besar dan anus.

Perbedaan pencernaan ruminansia dan pseudo-ruminansia ialah pada

ruminansia memiliki lambung yang berkembang sedangkan pseudo-ruminansia

tidak berkembang. Perbedaaan kedua adalah sekum pada pseudoruminansia lebih

besar dibanding ruminansia karena berkembang. Perbedaan ketiga adalah

ruminansia dapat mencerna serat kasar, sedangkan paseudo-ruminansia tidak

dapat mencerna serat kasar. Lambung pada psudoruminansia mempunyai fungsi

sebagai tempat pencernaan fraksi serat kasar oleh mikroba untuk fermentasi.

19

DAFTAR PUSTAKA

Akoso, B. T. 2002. Kesehatan Unggas. Kanisius, Yogyakarta.

Aminudin. 1996. Hijauan Makanan Ternak. Kanisius, Yogyakarta.

Blakely, J. dan Bade, D. H. 1994. Ilmu Peternakan Edisi Keempat. Gadjah Mada

University Press, Yogyakarta.

Campbell, N.A., Reece, J.B., dan Nitchel, L.G. (2004). Biologi: Edisi Kelima Jilid

3. Erlangga, Jakarta.

Frandson, P. D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak Cetakan Ke-2. Gajah Mada

University Press, Yogyakarta.

Kamal, M. 1994. Nutrisi Ternak I. Laboratorium Makanan Ternak Jurusan Nutrisi

Makanan Ternak. Fakultas Peternakan UGM, Yogyakarta.

Kartadisastra, H. R. 1997. Pakan Ternak. Kanisius, Yogyakarta.

Parakkasi, A. 1986. Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak Monogastrik. Universitas

Indonesia Press, Jakarta.

Rianto, E dan E. Purbowati. 2009. Panduan Lengkap Sapi Potong. Penebar

Swadaya, Jakarta.

Satter and Roffler. 1981. Comparative Anatomy of the Vertebrates. 9rd. McGraw-

Hill Higher International. Editional Biological Science Series, Singapura.

Siregar. 1994. Penggemukan Sapi. Penebar Swadaya, Jakarta.

Srigandono B. 1986. Ilmu Unggas Air. Gadjah Mada University Press,

Yogyakarta.

Thakur. L. K. And P. G. Puranik. 1981. Rabbit A Mammalian Type. S. Chand and

company, Ltd. Ramnager. New Delhi.

Tillman, A.D., H. Hartadi, S. Reksohadiprojo, S. Prawirokusumo, S.

Lebdosoekojo. 1991. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Gadjah Mada University

Press, Yogyakarta.

Tillman, A.D., H. Hartadi, S. Reksohadiprojo, S. Prawirokusumo, S.

Lebdosoekojo. 1998. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Gajah Mada University

Press : Yogyakarta.

20

Widayati, D.T, Widayati., Ismaya., S. Bintara. 2008. Handout Ilmu Reproduksi

Ternak. Fakultas Peternakan. Universitas Gadjah Mada.Yogyakarta.

ACARA II

PEMBUATAN APUS DARAH, PENGUKURAN

KADAR HEMOGLOBIN, HEMATOKRIT,

PENGHITUNGAN LEUKOSIT

DAN ERITROSIT DARAH

21

BAB I

METODELOGI

Praktikum Fisiologi Ternak dengan materi Apus Darah, Perhitungan

Kadar Hematokrit, Perhitungan Kadar Hemoglobin pada darah Kelinci

dilaksanakan pada hari Kamis tanggal 23 Mei 2013 pada pukul 09.00 - 11.00 WIB

dan Perhitungan Jumlah Eritrosit dan Leukosit pada darah Ayam Broiler Jantan

dilaksanakan pada hari Kamis tanggal 30 Mei 2013 pada pukul 09.00 - 11.00 WIB

di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia Ternak, Fakultas Peternakan dan

Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.

1.1. Materi

Alat yang digunakan pada praktikum pembuatan apus darah adalah kaca

objek untuk tempat mengambil larutan yang akan diteteskan kedalam darah, pipet

tetes untuk mengambil larutan yang akan diteteskan ke dalam darah dan

mengambil larutan giemsa, mikroskop untuk melihat atau mengamati bagian sel

dalam darah, bunsen digunakan untuk memfiksasi preparat, termometer Sahli

yang terdiri dari pipet tetes untuk mengambil HCl 0,1 N, pipet hemoglobin untuk

mengambil darah kelinci pada tabung reaksi, pengaduk gelas untuk mengaduk

larutan HCl dengan darah, blok komparator untuk mengukur kadar hemoglobin,

tabung rekasi untuk menempatkan reaktan atau darah, tabung mikrokapiler untuk

penempatan darah agar darah tidak mengalir, sentrifuse untuk memusingkan

tabung kapiler yang didalamnya terdapat darah dalam mikrokapiler, tabung

22

kapiler sebagai tempat tabung mikrokapiler ketika dimasukkan kedalam

sentrifuse, junetsky untuk menetapkan nilai hematokrit, pipet leukosit skala 11 dan

selang penyedot untuk menghisap darah, pipet eritrosit skala 101 dan selang

penyedot untuk menghisap darah, bilik hitung Improve Neubeur sebagai tempat

meletakkan darah yang akan diamati, dan hand counter sebagai alat untuk

menghitung jumlah leukosit. Bahan yang digunakan adalah darah kelinci dan

ayam broiler jantan yang digunakan untuk sampel, aquades yang digunakan untuk

membersihkan kaca objek sebelum ditetesi darah dan sesudah ditetesi darah,

larutan giemsa untuk melakukan pewarnaan pada preparat apus darah agar mudah

terlihat, alkohol 70 % untuk membersihkan kaca objek setelah dicuci dengan

aquades, larutan HCl 0,1 N untuk membentuk asam hematin dengan campuran

darah serta aquades sebagai pengencer, larutan Turk sebagai pengencer darah

untuk leukosit, dan Hayem sebagai pengencer darah untuk eritrosit.

1.2. Metode

1.2.1. Pembuatan Preparat Apus Darah Ayam

Membersihkan 2 kaca objek munggunkan akuades dan alkohol 70 %.

Mengambil darah kelinci satu tetes, meletakkan darah kelinci pada kaca objek

pertama kemudian mendorongnya dengan kaca objek kedua sampai darah merata

memenuhi garis batas objek kedua. Memfiksasi darah diatas bunsen. Melakukan

pewarnaan dengan pewarna giemsa. Mengeringkan kaca objek yang sudah

diwarnai dengan pewarna giemsa diatas bunsen. Mengamati menggunakan

23

mikroskop dengan perbesaran 40 kali. Menggambar eritrosit, leukosit dan

trombosit yang terlihat pada mikroskop.

1.2.2. Pengukuran Kadar Hemoglobin

Mengisi HCl 0,1 N ke dalam tabung pengukur sampai angka 2.

Menghisap darah menggunakan pipet hemoglobin sampai skala 20. Memindahkan

ke tabung sahli dan mengaduk dengan menggunakan pengaduk selama 3 menit,

memasukkan tabung ke dalam blok komparator, melakukan pengenceran dengan

aquades sampai tabung memiliki warna yang sama dengan blok komparator.

Menghitung kadar hemoglobin dengan membaca tinggi permukaan cairan dalam

tabung penguku serta mencatat hasilnya di buku praktikum.

1.2.3. Penetapan Nilai Hematokrit

Mengisi tabung mikrokapiler dengan darah kelinci. Menutup salah satu

ujung tabung mikrokapiler dan selanjutnya memasukkan ke dalam sentrifuse

selam 5 menit, dengan kecepatan 3000 rpm. Membaca nilai hematokrit dengan

menggunakan grafik atau alat khusus yang disebut Junetsky kemudian mencatat

hasilnya di buku praktikum.

1.2.4. Perhitungan Jumlah Leukosit

Menghisap darah dengan pipet eritrosit dengan skala 0.5. Membersihkan

ujung pipet dengan kertas filter. Menghisap larutan Turk dengan cepat dengan

skala 11. Melepas pipet karet penghisap dan memegang ujung pipet antara ibu jari

24

dan telunjuk atau jari tengah, kemudian mengocok dengan memutar-mutar

pergelangan tangan membentuk angka 8 selama 3 menit. Membuang cairan yang

tidak mengandung sel darah merah beberapa tetes dengan meniup perlahan-lahan.

Meneteskan larutan sel darah merah tersebut kedalam kamar hitung improve

neubauer kemudian ditutup dengan kaca penutup. Mengamati dibawah mikroskop

dengan perbesaran objektif 10 kali, setelah mendapat kotak hitungannya, memulai

menghitung semua leukosit dari 4 kotak besar dengan menggunkan hand counter,

menghitung perhitungannya dengan menggunakan rumus 4 X 10/4 X 20 X L dan

mencatat hasilnya di buku praktikum.

1.2.5. Perhitungan Jumlah Eritrosit

Menghisap darah dengan pipet eritrosit dengan skala 0,5. membersihkan

ujung pipet dengan kertas filter, melakukan prosedur ini dengan cepat, teliti dan

hati-hati. Menghisap larutan hayem dengan skala 101. Melepas pipet karet

penghisap dan memegang ujung pipet menggunakan telunjuk atau jari tengah,

mengocok dengan membentuk angka 8 selama 3 menit. Membuang cairan yang

tidak mengandung sel darah merah beberapa tetes. Meneteskan larutan sel darah

merah tersebut ke dalam kamar hitung improve neubauer kemudian ditutup

dengan kaca penutup. Mengamati dibawah mikroskop dengan perbesaran objektif

10 kali, setelah mendapat kotak hitungannya, memulai menghitung semua eritrosit

dan 5 kotak dari 25 ruangan per kotak kecil dengan menggunakan hand counter,

menghitung perhitungannya dengan menggunakan rumus 50 X 200 X E kemudian

mencatat hasilnya di buku praktikum.

25

BAB II

HASIL DAN PEMBAHASAN

2.1. Uji Apus Darah

Berdasarkan hasil pengamatan diperoleh hasil sebagai berikut :

Perbesaran 40 x

Perbesaran 100 x

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013

Ilustrasi 3. Preparat Apus Darah Perbesaran 40X dan 100X

Keterangan : 1. Leukosit

2. Eritrosit

3. Trombosit

Hasil praktikum pembuatan preparat apus darah kelinci pada perbesaran

40 kali, bagian-bagian darahnya tidak terlihat secara jelas. Namun pada

perbesaran 100 kali terlihat bagian-bagian dari darah yaitu leukosit, eritrosit, dan

trombosit. Hal ini sesuai dengan pendapat Soewolo (2005) bahwa komponen

seluler darah terdiri dari leukosit, eritrosit, dan trombosit. Pengamatan preparat

apus darah kelinci dengan perbesaran 40 kali hanya tampak berupa titik–titik dan

tidak ada perbedaan yang jelas antara tiap komponen. Sedangkan pada

1

2

3

26

pengamatan 100 kali dapat terlihat jelas bentuk antara tiap komponen. Hal ini

sesuai dengan pendapat Dellman dan Brown (1999) bahwa sel darah hanya dapat

diamati dengan mikroskop,semakin besar perbesaran objek semakin jelas yang

diamati, eritrosit akan tampak seperti dua bulan sabit berwarna merah pada

intinya, leukosit berupa cairan berwarna putih kekuningan, sedangkan trombosit

merupakankeping-keping darah yang dapat menghasilkan benang-benang fibrin.

2.2. Penetapan Kadar Hemoglobin

Berikut ini adalah hasil pengamatan penetapan kadar hemoglobin darah

kelinci :

Tabel 1. Penetapan Kadar Hemoglobin

Jenis Darah Kadar Hemoglobin (g/ml)

Kelinci 8,4

Kelinci 10,6

Rata-rata 9,5

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.

Berdasarkan hasil pengamatan pada praktikum Fisiologi Darah

didapatkan bahwa kadar Hemoglobin (Hb) pada tabung pertama 8,4 g/ml

sedangkan pada tabung kedua 10,5 g/ml, maka diperoleh rata-rata sebesar 9,5

g/ml. Hasil pengamatan kadar hemoglobin pada darah kelinci tersebut

menunjukkan bahwa kadar darah kelinci berada pada kisaran normal, berarti

kelinci dalam keadaan sehat, pemberian pakan yang cukup, dan tidak terjangkit

penyakit. Hal tersebut sesuai dengan pendapat Gutyon (1989) bahwa jumlah dan

presentase hemoglobin dalam sel terletak dalam kisaran normal saat sehat, dan

tidak akan meningkat melampaui batas kecuali terdapat gangguan metabolik

27

tubuh. Selain itu Hb berfungsi untuk mengikat oksigen dan membawa oksigen

tersebut keseluruh tubuh. Hal ini sesuai dengan pernyataan Frandson (1992) yang

menyatakan bahwa Hb dalam darah membawa oksigen dari paru-paru keseluruh

jaringan tubuh dan membawa kembali karbondioksida dari seluruh sel ke paru-

paru untuk dikeluarkan dari tubuh.

2.3. Kadar Hematokrit

Berdasarkan hasil pengamatan pada kadar hematokrit darah didapatkan

nilai sebesar 27%. Hal ini tidak sesuai dengan pendapat dari Subowo (2009) yang

menyatakan bahwa dalam penentuan kadar hematokrit kelinci normal adalah 39%.

Perbedaan kadar hematokrit ini disebabkan darah yang disimpan selama berhari-

hari didalam kulkas. Uji hematokrit dimulai dari mengisi tabung hematokrit,

melakukan sentrifusi hingga mendapatkan hasilnya secara langsung meggunakan

grafik atau alat khusus. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson (1992) bahwa

penetapan nilai hematokrit dilakukan dengan cara mengisi tabung hematokrit

dengan darah yang diberi zat agar tidak menggumpal, kemudian dilakukan

sentrifusi sampai sel-sel menggumpal di bagian dasar. Tes terhadap nilai

hematokrit biasanya dilakukan untuk mengetahui potensi terhadap berbagai

penyakit darah. Hal ini sesuai dengan pendapat dari Syarifan (2011) yang

menyatakan bahwa nilai hematokrit yang lebih rendah dari nilai normal dapat

mengindikasikan anemia dan kekurangan darah. Dan nilai hematokrit yang lebih

tinggi dari nilai normal dapat mengindikasi dehidrasi (polistemia).

28

2.4. Perhitungan Jumlah Leukosit

Berikut ini adalah hasil perhitungan jumlah leukosit dalam bilik hitung :

90 86

45 13

I II

III IV

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.

Ilustrasi 4. Bilik Hitung Improve Neubauer Leukosit

Hasil perhitungan kadar leukosit sebagai berikut:

= 16,512 butir/mm3

Berdasarkan hasil percobaan diperoleh hasil eritrosit 16.572,5 butir/mm3.

Hal ini tidak sesuai dengan pendapat Pearee (1995) bahwa dalam setiap mm3

darah terdapat 6000 sampai 10.000 sel darah putih. Perbedaan ini dimungkinkan

62 69

80 88

91 100

113 69

64 75

112 94

29

adanya perbedaan umur, aktifitas sehari-hari, stres, dan sistem pemeliharaan.

Leukosit tidak berwarna, bersifat bening dan bentuknya tidak tetap seperti

amoeba. Jumlah sel leukosit pada umumnya dibawah jumlah sel eritrosit dan

bervariasai tergantung dari jenis hewannya dan mengalami fluktuasi. Hal ini

sesuai dengan pendapat Dellmann dan Brown (1989) yang menyatakan bahwa

fluktuasi dalam jumlah leukosit pada tiap individu cukup besar pada kondisi

tertentu, misalnya stress, aktifitas fisiologis, gizi, umur dan lain-lain.

2.5. Perhitungan Jumlah Eritrosit

Berikut ini adalah hasil perhitungan jumlah eritrosit dalam bilik hitung :

118 103

111

98 82

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013

Ilustrasi 5. Bilik Hitung Improve Neubauer Eritrosit

Hasil perhitungan kadar eritrosit sebagai berikut:

Jumlah eritrosit = 118 + 103 + 111 + 98 + 82 = 512

Nilai kadar eritrosit = 10.000 x 512

= 5.120.000 butir/mm3

30

Berdasarkan praktikum diperoleh hasil perhitungan pada darah ayam

broiler jantan terdapat 5.120.000 butir eritrosit/mm3. Hal ini tidak sesuai dengan

pendapat Frandson (1992) bahwa jumlah eritrosit pada unggas berkisar antara

1,35 - 5,00 juta/mm3, jadi jumlah eritrosit pada unggas yang digunakan melebihi

dari batas normal. Eritrosit akan rusak jika masa tumbuhnya lebih dari 120 hari.

Hal ini sesuai dengan pendapat Dellmann dan Brown (1989) yang menyatakan

bahwa secara normal jangka hidup eritrosit berkisar antara 120 hari, setelah

jangka hidupnya habis maka akan rusak dan dikeluarkan dari peredaran darah.

Eritrosit tua biasanya hancur dalam limpa, sum-sum tulang dan hati. Zat besi dari

hemoglobin dirombak dan digunakan untuk membentuk eritrosit baru.

31

BAB III

KESIMPULAN

Berdasarkan praktikum yang telah dilaksanakan dapat disimpilkan bahwa

hematokrit adalah presentase volume darah total yang mengandung eritrosit.

Hemoglobin berfungsi mengangkut atau alat transport bagi oksigen dan

karbondioksida. Sedangkan pembuatan preparat apus adalah suatu sarana yang

digunakan untuk menilai berbagai unsur sel darah tepi seperti eritrosit, leukosit

dan trombosit. Jumlah leukosit dan jumlah eritrosit pada ayam lebih tinggi dari

standar, perbedaan ini kemungkinan disebabkan faktor seperti berbeda umur,

kondisi ayam, dan jenis ayam.

32

DAFTAR PUSTAKA

Dellmann, H. D., Esther, M. B., 1989. Buku Teks Histologi Veteriner. Penerbit

Universitas Indonesia Press, Jakarta.

Frandson R.D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak. Gadjah Mada University

Press, Yogyakarta.

Guyton, A.C., 1989. Buku Teks Fisiologi Kedokteran. Penerbit Buku Kedokteran

EGC, Jakarta.

Pearce, E., 1995. Anatomi dan Fisiologis Untuk Paramedis. Gramedia Pustaka

Utama, Jakarta.

Soewolo, M. Pd. 1999. Fisiologi Manusia. FMIPA UNM, Malang.

Subowo. 2009. Histologi Umum. Jakarta, Sagung Seto, Jakarta.

Syarifan, E. 2011. Panduan Pratikum Fisiologi Hewan. Universitas Gajah Mada,

Yogyakarta.

33

LAMPIRAN

Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia

Tabel 2. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Ruminansia

Kompartmen Panjang Lebar

Esofagus 32 cm 1,5 cm

Rumen 29 cm 20,5 cm

Retikulum 9 cm 9,5 cm

Omasum 8,5 cm 7 cm

Abomasum 23 cm 4,5 cm

Usus Kecil 1402 cm 1 cm

Usus besar 296 cm 2,5 cm

Sekum 4 cm 4 cm

Sumber: Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.

Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminansia

Tabel 3. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Pseudo-Ruminansia

Kompartmen Panjang Lebar

Esofagus 2 cm 0,4 cm

Lambung

Usus halus

7 cm

133 cm

3 cm

0,5 cm

Sekum 20 cm 1,5 cm

Usus besar 48 cm 0,3 cm

Anus 2 cm 0,4 cm

Sumber: Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.