laporan resmi praktikum fisiologi ternak
TRANSCRIPT
i
ANATOMI PENCERNAAN DAN
STATUS HEMATOLOGI
LAPORAN RESMI
PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK
Disusun oleh:
Kelompok XIC
Fikri Faisal Haq 23010112140124
Mohammad Ridwan Setiyono 23010112130140
Lupita Nilam Mayangsari 23010112140144
Maharani Malika Putri Aliyyie 23010112130172
JURUSAN S1-PETERNAKAN
FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN
UNIVERSITAS DIPONEGORO
SEMARANG
2013
ii
LEMBAR PENGESAHAN
Judul : LAPORAN RESMI PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK
Kelompok : XIC
(SEBELAS)C
Jurusan : S1-PETERNAKAN
Tanggal Pengesahan : Juni 2013
Menyetujui,
Koordinator Umum Asisten Praktikum
Fisiologi Ternak
Asisten Pembimbing
Hida Lailli Mutiara Rini Muhammad Taufiq Akbar
NIM. 23010110130190 NIM. 23010110130169
Mengetahui,
Koordinator Praktikum
Fisiologi Ternak
Dr. Ir. Isroli, M.P.
NIP. 19580205 198603 1 002
iii
RINGKASAN
KELOMPOK XIc. 2013. Laporan Resmi Praktikum Fisiologi Ternak (Asisten:
Muhammad Taufiq Akbar).
Praktikum Fisiologi Ternak Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia dan
Pseudo-ruminan dilaksanakan pada hari Kamis, tanggal 25 April 2013 dan 16 Mei
2013 pukul 09.00 - 11.00 WIB dan Pembuatan Apus Darah, Pengukuran Kadar
Hematokrit, Hemoglobin Darah Kelinci, Penghitungan Leukosit dan Eritrosit
Darah Ayam Broiler Jantan pada hari Kamis, tanggal 23 Mei 2013 dan 30 Mei
2013 pukul 09.00-11.00 WIB di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia Ternak,
Fakultas Peternakan dan Pertanian Universitas Diponegoro, Semarang. Tujuan
praktikum adalah mengetahui saluran pencernaan ruminansia, pseudo-ruminan,
pembuatan apus darah, pengukuran kadar hematokrit dan hemoglobin darah,
perhitungan leukosit dan eritrosit.
Materi yang digunakan dalam praktikum adalah masker, sarung tangan,
alas plastik, box plastik, meteran, gunting bedah, pisau, kaca objek, pipet tetes,
mikroskop, bunsen, pipet hemoglobin, pengaduk gelas, blok komparator, tabung
mikrokapiler, sentrifuse, junetsky, selang penyedot, bilik hitung improve neubeur,
hand counter, bahan awetan saluran pencernaan kambing, saluran pencernaan
kelinci, aquades, alkohol 70%, larutan HCl 0,1 N, larutan turk, larutan hayem,
larutan giemsa, darah kelinci, dan darah ayam broiler jantan. Metode yang
dilakukan adalah anatomi saluran pencernaan ruminansia, anatomi saluran
pencernaan pseudo-ruminan, uji apus darah, penetapan kadar hemoglobin, kadar
hematokrit, perhitungan jumlah leukosit, dan perehitungan jumlah eritrosit.
Berdasarkan hasil praktikum perbedaan pencernaan ruminansia dan
pseudo-ruminan adalah pada ruminansia memiliki lambung yang berkembang
sedangkan pada pseudo-ruminan tidak berkembang, sekum pada pseudo-ruminan
lebih besar dari sekum ruminan, ruminansia dapat mencerna serat kasar,
sedangkan pseudo-ruminan tidak dapat, hematokrit adalah persentase volume
darah total yang mengandung eritrosit, hemoglobin berfungsi mengangkut bagi
oksigen dan karbondioksida, pembuatan preparat apus suatu sarana yang
digunakan untuk menilai berbagai unsur darah, jumlah leukosit dan eritrosit pada
ayam broiler jantan lebih dari standar.
Kata kunci: Saluran Pencernaan Ruminansia, Saluran Pencernaan Pseudo-
ruminan, Apus Darah, Hematokrit, Hemoglobin, Leukosit,
Eritrosit.
iv
KATA PENGANTAR
Puji syukur penulis panjatkan atas kehadirat Allah SWT yang telah
berkenan melimpahkan rahmat-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan
Laporan Praktikum Fisiologi Ternak ini dengan sebaik-baiknya. Praktikum ini
diadakan bertujuan agar para mahasiswa mengenal dan mengetahui lebih luas
tentang Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia dan Pseudo-Ruminan serta
Fisiologi Darah Kelinci dan Ayam.
Penulis menyampaikan terimakasih kepada Bapak Dr. Ir. Isroli, M.P
selaku Koordinator Praktikum Fisiologi Ternak, Saudari Hida Lailli Mutiara Rini
selaku Koordinator Umum Asisten Praktikum Fisologi Ternak dan Saudara
Muhammad Taufiq Akbar selaku Asisten Pembimbing yang telah membimbing
dan membantu penulis selama praktikum berlangsung sampai penyusunan laporan
praktikum Fisiologi Ternak ini selesai. Harapan penulis semoga laporan
praktikum ini dapat bermanfaat bagi pembaca.
Demikian kata pengantar dari penulis, penulis ucapkan terimakasih atas
perhatian dan koreksi dari berbagai pihak.
Semarang, Juni 2013
Penulis
v
DAFTAR ISI
Halaman
JUDUL .......................................................................................................... i
LEMBAR PENGESAHAN ........................................................................... ii
RINGKASAN ................................................................................................ iii
KATA PENGANTAR ................................................................................... iv
DAFTAR ISI ................................................................................................. v
DAFTAR TABEL .......................................................................................... vi
DAFTAR ILUSTRASI .................................................................................. vii
DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................. viii
ACARA I ANATOMI SALURAN PENCERNAAN RUMINANSIA DAN
PSEUDO-RUMINAN
BAB I METODOLOGI ................................................................................. 1
1.1. Materi ......................................................................................... 1
1.1.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia ....................... 1
1.1.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan ................ 2
1.2. Metode ........................................................................................ 2
2.1.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia ....................... 2
2.1.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan ................ 3
BAB II HASIL DAN PEMBAHASAN ......................................................... 4
2.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia .................................. 4
2.1.1. Mulut ............................................................................... 5
2.1.2. Esofagus........................................................................... 6
2.1.3. Lambung .......................................................................... 6
2.1.3.1. Rumen ................................................................. 7
2.1.3.2. Retikulum ........................................................... 7
2.1.3.3. Omasum .............................................................. 8
2.1.3.4. Abomasum .......................................................... 8
2.1.4. Usus Halus ....................................................................... 9
2.1.5. Sekum .............................................................................. 10
vi
2.1.6. Usus Besar ...................................................................... 10
2.1.7. Sekum .............................................................................. 10
2.1.8. Anus ................................................................................. 11
2.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan .......................... 12
2.2.1. Mulut ............................................................................... 13
2.2.2. Esofagus........................................................................... 13
2.2.3. Lambung .......................................................................... 14
2.2.4. Usus Halus ....................................................................... 14
2.2.5. Sekum .............................................................................. 15
2.2.6. Usus Besar ....................................................................... 15
2.2.7. Anus ................................................................................. 16
2.3. Perbedaan Saluran Pencernaan Ruminansia dan Pseudo-
Ruminansia .................................................................................. 16
BAB III KESIMPULAN ................................................................................ 18
DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 19
ACARA II PEMBUATAN APUS DARAH, PENGUKURAN KADAR
HEMOGLOBIN, HEMATOKRIT, PENGHITUNGAN
ERITROSIT DAN LEUKOSIT DARAH
BAB I METODOLOGI ................................................................................. 21
1.1. Materi .......................................................................................... 21
1.2. Metode ........................................................................................ 21
1.1.1. Pembuatan Preparat Apus Darah Ayam ......................... 22
1.1.2. Pengukuran Kadar Hemoglobin ..................................... 23
1.1.3. Penetapan Nilai Hematokrit ........................................... 23
1.1.4. Perhitungan Jumlah Leukosit ......................................... 23
1.1.5. Perhitungan Jumlah Eritrosit .......................................... 24
BAB II HASIL DAN PEMBAHASAN ......................................................... 25
2.1. Apus Darah.................................................................................. 25
2.2. Pengukuran Kadar Hemoglobin .................................................. 26
2.3. Penetapan Nilai Hematokrit ........................................................ 27
2.4. Penghitungan Jumlah Leukosit ................................................... 28
2.5. Penghitungan Jumlah Eritrosit .................................................... 29
BAB III KESIMPULAN ............................................................................... 31
DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 32
LAMPIRAN ................................................................................................... 33
vii
DAFTAR TABEL
Nomor Halaman
1. Penetapan Kadar Hemoglobin.................................................... 26
2. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Ruminansia......................... 33
3. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Pseudo-Ruminan................ 33
viii
DAFTAR ILUSTRASI
Nomor Halaman
1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia.................................... 4
2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan............................ 12
3. Apus Darah Perbesaran 40X dan 100X........................................ 25
4. Bilik Hitung Improve Neubauer Leukosit..................................... 28
5. Bilik Hitung Improve Neubauer Eritrosit ..................................... 29
ix
DAFTAR LAMPIRAN
Nomor Halaman
1. Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia ...................... 33
2. Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminansia ......... 33
1
BAB I
METODOLOGI
Praktikum Fisiologi Ternak dengan materi anatomi saluran pencernaan
ruminansia dilaksanakan pada hari Kamis 25 April 2013 Pukul 09.00 - 11.00 WIB
dan anatomi saluran pencernaan pseudo-ruminan dilaksanakan pada hari Kamis
16 Mei 2013 Pukul 09.00 - 11.00 WIB di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia
Ternak, Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.
1.1. Materi
1.1.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia
Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan ruminansia
menggunakan alat antara lain, masker yang berfungsi untuk mengurangi bau
awetan saluran pencernaan kambing, sarung tangan yang berfungsi untuk
melindungi tangan dari cairan awetan saluran pencernaan kambing, alas plastik
yang berfungsi untuk meletakkan saluran pencernaan kambing yang akan diamati,
box plastik yang digunakan sebagai tempat penyimpanan awetan organ
pencernaan ruminansia, meteran berfungsi untuk mengukur panjang dan lebar
saluran pencernaan, dan alat tulis untuk menulis hasil pengamatan. Bahan yang
digunakan adalah awetan saluran pencernaan kambing yang digunakan untuk
pengamatan, pengukuran panjang dan lebar organ pencernaan, serta formalin
adalah cairan yang digunakan untuk mengawetkan saluran pencernaan pada
kambing.
2
1.1.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan
Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan pseudo-ruminan
menggunakan alat antara lain, gunting bedah yang digunakan untuk membedah
dan badan kelinci, pisau digunakan untuk menyayat bagian-bagian organ kelinci,
masker yang berfungsi untuk mengurangi bau awetan saluran pencernaan kelinci,
sarung tangan yang berfungsi untuk melindungi tangan, nampan yang berfungsi
untuk meletakkan saluran pencernaan yang akan diamati, meteran berfungsi untuk
mengukur panjang dan lebar saluran pencernaan, dan alat tulis untuk menulis hasil
pengamatan. Bahan yang digunakan adalah saluran pencernaan kelinci yang
digunakan sebagai obyek pengamatan dan air digunakan untuk membersihkan sisa
praktikum.
1.2. Metode
1.2.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia
Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan ruminansia dilakukan
dengan mengeluarkan awetan saluran pencernaan kambing dari box plastik,
meletakkan saluran pencernaan kambing diatas alas plastik, menyusun organ-
organ saluran pencernaan kambing diatas alas plastik sesuai dengan urutan bagian
anatominya. Mengukur panjang dan lebar saluran pencernaan kambing yang
meliputi esofagus, rumen, retikulum, omasum, abomasum, usus halus, usus besar,
sekum, dan anus menggunakan meteran. Mencatat hasil pengamatan pada tabel
yang telah disediakan.
3
1.2.2. Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminan
Praktikum dengan materi anatomi saluran pencernaan pseudo-ruminan
dilakukan dengan menyembelih dan menguliti kelinci. Mengeluarkan saluran
pencernaan kelinci dalam tubuh, meletakkan saluran pencernaan kelinci diatas
nampan, menyusun organ saluran pencernaan kelinci diatas nampan sesuai dengan
urutan bagian anatominya, mengukur panjang dan lebar saluran pencernaan
kelinci yang meliputi esofagus, lambung, usus halus, sekum, usus besar, dan anus.
Mencatat hasil pengamatan pada tabel yang telah disediakan.
4
BAB II
HASIL DAN PEMBAHASAN
2.1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia
Sumber : Data Primer Prktikum Fisiologi Sumber: google
Ternak, 2013.
Ilustrasi 1. Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia
Keterangan :
1. Esfagus 6. Usus Halus
2. Rumen 7. Usus Besar
3. Retikulum 8. Sekum
4. Omasum 9. Anus
5. Abomasum
Berdasarkan hasil pengamatan pada praktikum ini, saluran pencernaan
ruminansia (kambing) terdiri dari esofagus, rumen, retikulum, omasum,
abomasum, usus halus, usus besar, sekum, rektum dan anus. Hasil pengamatan
diperoleh panjang esofagus adalah 32 cm dan lebarnya 1,5 cm, panjang rumen
adalah 29 cm dan lebarnya 20,5 cm, panjang retikulum adalah 9 cm dan lebarnya
9,5 cm, panjang omasum adalah 8,5 cm dan lebarnya 7 cm, panjang abomasum 23
1
2
3 4 5
7
6
9
8
5
cm dan lebarnya 4,5 cm, panjang usus halus 1402 cm dan lebar 1 cm, panjang
usus besar 296 cm dan lebar 2,5 cm, serta panjang sekum 4 cm dan lebarnya 4 cm.
Organ pencernaan ruminansia terdiri dari mulut, esofagus, lambung
(rumen, retikulum, omasum, abomasum), usus halus, usus besar, sekum, dan anus.
Hal ini sesuai pendapat Blackely dan Bade (1994) bahwa hewan ruminansia
memiliki lidah untuk menarik makanan, kemudian esofagus, rumen, retikulum,
omasum, abomasum, usus halus, sekum, usus besar, dan anus. Ditambahkan oleh
Rianto dan Purbowati (2009) bahwa urutan sistem pencernaan ruminansia dimulai
dari mulut kemudian masuk ke saluran esofagus, lambung (rumen, retikulum,
omasum, abomasum), selanjutnya masuk dalam saluran usus halus, dilanjutkan ke
sekum, usus besar, rektum dan dikeluarkan melewati anus dalam bentuk feses.
2.1.1. Mulut
Proses pencernaan di dalam mulut terjadi secara mekanik dan kimiawi.
Di dalam mulut terjadi proses mastikasi, salivasi, dan deglutisi. Hal ini sesuai
dengan pendapat Kamal (1994) bahwa mastikasi bertujuan untuk menghaluskan
atau mengecilkan ukuran pakan sehingga mempercepat hidrolisis, mencegah
terjadinya luka pada saluran pencernaan, dan memudahkan penelanan.
Ditambahkan oleh Blakely dan Bade (1994) bahwa hewan ruminansia
menggunakan lidah untuk menarik dan memotong rumpu-rumput kemudian
dikunyah sebentar sebelum ditelan dan dicampur dengan saliva di dalam mulut
untuk melumasinya. Salivasi merupakan pencampuran air ludah dan makanan
yang berfungsi sebagai pelincir saat penelanan. Air ludah mengandung kira-kira
6
99% air dan 1% yang terdiri dari musin, mineral-mineral, dan enzim alfa-amilase
(Tillman et al., 1998).
2.1.2. Esofagus
Berdasarkan hasil pengamatan diperoleh panjang esofagus pada saluran
pencernaan kambing adalah 32 cm dan lebarnya 1,5 cm. Pakan masuk ke dalam
mulut kemudian melewati esofagus dan dicerna di dalam lambung. Esofagus
merupakan saluran pencernaan yang berfungsi untuk menghubungkan pakan dari
mulut ke lambung. Hal ini sesuai dengan pendapat Widayati et al., (2008) bahwa
esofagus merupakan tempat lewatnya makanan dari mulut ke stomach, yang
merupakan saluran dari pharinx ke kardia. Esofagus terdiri dari otot, sub mukosa,
dan mukosa. Hal ini sesuai dengan pendapat Tillman et al., (2008) organ ini
dilapisi membran mukosa pada permukaannya.
2.1.3. Lambung
Berdasarkan hasil pengamatan diperoleh panjang rumen pada kambing
adalah 29 cm dan lebarnya 20,5 cm, panjang retikulum adalah 9 cm dan lebarnya
9,5 cm, panjang omasum adalah 8,5 cm dan lebarnya 7 cm, panjang abomasum
adalah 23 cm dan lebarnya 4,5 cm. Kambing memiliki 4 lambung yang terdiri dari
rumen, retikulum, omasum, dan abomasum. Hal ini sesuai dengan pendapat
Blackely dan Bade (1994) bahwa kambing (ruminansia) berbeda dengan ternak
mamalia lainnya karena mempunyai lambung sejati yaitu abomasum dan lambung
depan yang membesar yang mempunyai tiga ruangan yaitu retikulum, rumen, dan
7
omasum. Diperjelas oleh Srigandono (1996) bahwa lambung kambing
(ruminansia) yang terdiri atas empat bagian yaitu rumen, retikulum, omasum, dan
abomasum dengan ukuran yang bervariasi sesuai dengan umur ternak, daya
tampung air masing-masing lambung, dan makanan alamiahnya.
2.1.3.1. Rumen, panjang rumen adalah 29 cm dan lebarnya 20,5 cm. Rumen
berbentuk kantong muskular yang besar terentang dari diafragma menuju ke
pelvis dan hampir menempati sisi kiri dari rongga perut. Hal ini sesuai dengan
pendapat Frandson (1992) bahwa rumen merupakan suatu maskular yang besar
dan terentang dari diafragma menuju ke pelvis dan hampir menempati sisi kiri
dari rongga abdominal. Rumen berfungsi sebagai tempat untuk mencerna serat
kasar dan zat-zat kasar dengan bantuan mikroba dengan jalan fermentasi yang
berbentuk seperti handuk. Hal ini sesuai dengan pendapat Tillman, et al (1991)
bahwa pencernaan fermentatif dilakukan mikroorganisme rumen dan secara
hidrolisis oleh jasad renik melalui penguraian di dalam rumen. Ditambahkan oleh
Rianto dan Purbowati (2009) bahwa rumen merupakan kantong yang besar
sebagai tempat persediaan dan pencampuran bahan pakan untuk fermentasi oleh
mikroorganisme.
2.1.3.2. Retikulum, panjang retikulum adalah 9 cm dan dan lebarnya 9,5 cm.
Dibagian bawah rumen terdapat bagian retikulum yang mirip dengan sarang
lebah. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson (1992) bahwa bagian dalam dari
retikulum diselimuti oleh membran mukosa yang mengandung intersecting ridge
yang membagi permukaan menyerupai sarang lebah. Retikulum merupakan salah
8
satu bagian dari 4 lambung ruminansia setelah makanan melewati rumen maka
dilanjutkan ke retikulum. Hal ini sesuai dengan pendapat Blakely dan Bade (1994)
bahwa setelah dari rumen makanan masuk ke retikulum yang disebut juga
honcycomb, waterbag, atau pace setter. Di dalam retikulum terjadi pencernaan
fermentatif. Retikulum berfungsi untuk menyaring zat-zat asing yang masuk ke
perut serta mengatur aliran pencernaan dari rumen ke omasum. Setelah dari rumen
makanan masuk ke retikulum. Ditambahkan oleh Rianto dan Purbowati (2009)
bahwa retikulum berfungsi mengatur aliran digesta dari rumen ke omasum.
2.1.3.3. Omasum, panjang omasum adalah 8,5 cm dan lebarnya 7 cm. Makanan
yang masuk kedalam omasum ke dalam omasum akan di absorbsi. Hal ini sesuai
dengan pendapat Cambell et al., (2004) bahwa ruminansia menelan kembali
mamahan dan bergerak ke arah omasum dimana air dikeluarkan di sana.
Ditambahkan oleh Rianto dan Purbowati (2009) bahwa permukaan dinding
omasum berlipat-lipat dan kasar dimana akan terjadi penyaringan partikel digesta
yang akan masuk ke abomasum, partikel digesta yang masih terlalu besar akan
dikembalikan ke retikulum, selanjutnya partikel digesta tersebut akan mengalami
regurgitasi (dikeluarkan kembali ke mulut) dan remastikasi (dikunyah kembali).
Omasum menerima campuran pakan dan air, sebagian besar air diserap oleh
luasnya daerah penyerapan yang terdiri dari banyak lapisan, omasum memiliki pH
7 yang berarti netral (Akoso, 2002).
2.1.3.4. Abomasum, panjang abomasum adalah 23 cm dan lebarnya 4,5 cm.
Abomasum sering disebut perut sejati dan sebagian besar pencernaan di lakukan
9
di abomasum. Hal ini sesuai dengan pendapat Blakely dan Bade (1994) bahwa
sebagian besar pekerjaan pencernaan diselesaikan di abomasum yang disebut juga
perut sejati karena kemiripanya dengan fungsi perut sejati pada perut tunggal
hewan non-ruminansia. Siregar (1994) menambahkan bahwa abomasum disebut
perut sejati karena pada daerah ini terdapat kelenjar digesti yang berperan dalam
proses pemecahan zat gizi. Diperjelas oleh Rianto dan Purbowati (2009) bahwa
abomasum atau perut sejati pada ternak ruminansia berfungsi seperti pada ternak
non-ruminansia.
2.1.4. Usus Halus
Berdasarkan hasil pengamatan, usus halus kambing memiliki panjang
1402 cm dan lebar 1 cm. Usus halus ruminansia sangat panjang sehingga
penyerapan sari-sari makanan yang terjadi didalamnya akan maksimal. Usus halus
berbentuk saluran tabung yang memanjang dan tidak beraturan panjang usus
kambing mencapai 45 meter. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso (2002) bahwa
usus kambing berbentuk rabung ini beberapa kali melebar dan menyempit
sepanjang rangkaiannya sesuai dengan fungsinya. Small instenstine yang sangat
panjang itu berfungsi agar penyerapan sari-sari makanan terjadi secara maksimal.
Pada bagian small instenstine terdapat jonjot usus atau mikrovili yang berfungsi
untuk memperluas area penyerap zat nutrien pakan. Pakan yang masuk ke dalam
small instenstine yang berasal dari abomasum. Hal ini sesuai dengan pendapat
Cambell et al., (2004) bahwa makanan yang telah dicerna di abomasum akan
diteruskan ke small instenstine.
10
2.1.5. Usus Besar
Berdasarkan hasil pengamatan usus besar kambing memiliki panjang 296
cm dan lebar 2,5 cm. Bagian organ pencernaan setelah small intestine adalah
large intestine (usus besar). Pada usus besar, makanan sisa penyerapan disalurkan
ke usus besar untuk diabsorbsi komponen airnya. Hal ini sesuai dengan pendapat
Blakely dan Bade (1994) yang menyatakan bahwa bahan-bahan yang tidak
tercerna bergerak ke sekum dan usus besar. Rianto dan Purbowati (2009)
menambahkan bahwa hanya sedikit sekali digesta yang terserap lewat dinding
usus besar. Usus besar terdiri dari sekum, kolon, dan rektum. Makanan yang tidak
dapat dicerna oleh saluran pencernaan ditampung di sekum. Usus besar tidak
menghasilkan enzim karena kelenjar yang ada adalah mukosa, karenanya tiap
pencernaan yang terjadi di dalamnya adalah sisa-sisa kegiatan oleh enzim-enzim
dari usus halus dan enzim yang dihasilkan oleh jasad renik yanng banyak terdapat
pada usus besar. Didalam sekum terjadi pencernaan fermentatif (Frandson, 1992).
2.1.6. Sekum
Berdasarkan hasil pengamatan sekum kambing panjangnya 4 cm dan
lebarnya 4 cm. Ruminansia memiliki sekum yang tidak terlalu besar karena
fermentasi yang terjadi di lambung sudah efektif. Di bagian usus besar terdapat
bagian pelebaran yang disebut dengan sekum. Hal ini sesuai dengan pendapat
Blakely dan Bade (1994) yang menyatakan bahwa bahan-bahan yang tidak
tercerna bergerak ke sekum dan usus besar. Sekum terjadi pencernaan secara
fermentatif karena terdapat mikroba dalam sekum sehingga didalam sekum
11
merupakan tempat pembusukan makanan menjadi feses yang nantinya dibuang
(Akoso, 2002).
2.1.7. Anus
Berdasarkan hasil pengamatan praktikum, bagian terakhir dari saluran
pencernaan ruminansia adalah bagian anus. Makanan yang sudah melewati mulut
dan esofagus kemudian dicerna di dalam lambung, usus halus, dan usus besar,
sekum kemudian dikeluarkan lewat anus berupa ampas. Hal ini sesuai pendapat
Satter dan Roffler (1981) yang menyatakan bahwa makanan yang tidak tercerna
akan dikeluarkan dalam bentuk feses. Ditambahkan oleh Campbell et al., (2004)
bahwa pakan setelah mengalami penyerapan air sisa-sisa makanan berupa ampas
dikeluarkan melalui anus. Diperjelas oleh Rianto dan Purbowati (2009) bahwa
materi yang tidak terserap pada usus besar kemudian di keluarkan lewat anus
sebagai feses. Makanan yang sudah dicerna oleh saluran pencernaan (mulut,
esofagus, lambung, usus halus, usus besar, sekum) kemudian dikeluarkan lewat
anus berupa ampas.
12
2.2. Anatomi Saluran pencernaan Pseudo-Ruminan
Sumber : Data Primer Prktikum Fisiologi Sumber: dc373.4shared.com
Ternak, 2013.
Ilustrasi 2. Anatomi Saluran pencernaan Pseudo-Ruminan
Keterangan :
1. Esfagus 4. Sekum
2. Lambung 5. Usus besar
3. Usus Halus 6. Anus
Hasil pengamatan diperoleh panjang esofagus adalah 2 cm dan lebarnya
0,4 cm. Panjang lambung 7 cm dan lebarnya 3 cm. Usus kecil panjangnya 133 cm
dan lebarnya 0,5 cm. Sekum panjangnya 20 cm dan lebarnya 1,5 cm dan usus
besar panjangnya 48 cm dan lebarnya 0,3 cm. Anus memiliki panjang 2 cm dan
lebar 0,4 cm. Susunan organ pencernaan kelinci dimulai dari mulut, esofagus,
lambung, usus halus, usus besar, dan anus. Hal ini sesuai dengan pendapat
Parakkasi (1986) bahwa pencernaan ternak pseudoruminansia terdiri atas mulut,
oseofagus, lambung, usus halus, usus besar, dan anus. Selain itu terlihat cecum
yang berkembang yang menyebabkan usus besar terlihat membesar. Ditambahkan
oleh Tillman et al., (1991) bahwa hewan lambung tunggal (kelinci) organ saluran
4
3
1
2
6 5
13
pencernaanya terdiri dari mulut, faring, kerongkongan, lambung, usus halus yang
terdiri dari doedenum, jejenum, ileum, usus besar yang terdiri dari kolon, sekum,
dan rektum kemudian berakhir pada anus.
2.2.1. Mulut
Berdasarkan hasil pengamatan dalam praktikum anatomi digesti pseudo-
ruminansia, saluran pencernaan dimulai dari mulut dimana didalam mulut terdapat
gigi, pakan juga mengalami pencampuran dengan saliva agar mudah ditelan. Hal
ini sesuai dengan pendapat Rianto dan Purbowati (2009) bahwa di dalam mulut
pakan mengalami penghancuran pertama memalui gigi. Air ludah pseudo-
ruminansia tidak mengsekresikan enzim amilase. Hal ini sesuai dengan pendapat
Tillman et al., (1998) bahwa kelenjar ludah hewan non ruminansia tidak
mengsekresikan enzim amilase.
2.2.2. Esofagus
Hasil pengamatan diperoleh panjang esofagus kelinci adalah 2 cm dan
lebarnya 0,4 cm. Esofagus adalah saluran yang menghubungkan mulut dan
lambung. Hal ini sesuai dengan pendapat Siregar (1994) yang menyatakan bahwa
esofagus merupakan suatu saluran yang menghubungkan antara rongga mulut
dengan lambung. Esofagus memiliki kemampuan untuk melakukan gerak
peristaltik yaitu pemecahan dan perombakan pakan. Hal ini sesuai dengan
pendapat Kartadisastra (1997) yang menyataaakan bahwa dalam esofagus terjadi
gerak peristaltik sehingga pakan dapat masuk ke dalam lambung.
14
2.2.3. Lambung
Hasil pengamatan diperoleh panjang lambung kelinci 7 cm dan lebarnya
3 cm. Lambung merupakan ruangan yang berfungsi sebagai tempat pencernaan
dan penyimpanan pakan. Hewan pseudo–ruminansia merupakan hewan
monogastrik yang memiliki lambung tunggal dan sederhana. Hal ini sesuai
dengan pendapat Parakkasi (1989) yang menyatakan bahwa kelinci merupakan
hewan herbivora monogastrik yang mempunyai lambung sederhana. Di dalam
lambung terjadi pencernaan secara kimiawi serta merupakn tempat penyimpanan
semantara. Menurut Thakur dan Puranik (1981) yang menyatakan bahwa
makanan akan disimpan sementara di dalam lambung serta terjadi proses absopsi,
sekresi endokrin dan untuk pembentukan sel darah merah.
2.2.4. Usus Halus
Hasil pengamatan diperoleh panjang usus kecil kelinci 133 cm dan
lebarnya 0,5 cm. Berdasarkan hasil pengamatan anatomi saluran digesti pseudo–
ruminansia diperoleh hasil pengukuran panjang esofagus adalah 130 cm dan
lebarnya 0,4 cm. Dalam usus halus terjadi pencernaan protein dan karbohidrat.
Usus halus terbagi atas 3 bagian yaitu : duodenum, jejenum dan ileum. Hal ini
sesuai dengan pendapat Frandson (1992) yang menyatakan bahwa usus halus
merupakan tempat pencernaan utama karbohidrat. Usus halus kelinci berfungsi
untuk absorpsi dan pencernaan makanan. Menurut Siregar (1994) yang
15
menyatakan bahwa pencernaan protein pada pseudo–ruminansia lebih cepat
dibandingkan dengan ternak yang lain.
2.2.5. Sekum
Hasil pengamatan diperoleh panjang sekum kelinci 20 cm dan lebarnya
1,5 cm. Kelinci melakukan fermentasi pakan dan umumnya terjadi di sekum yaitu
50% dari seluruh kapasitas saluran pencernaannya. Hal tersebut sesuai dengan
pendapat Parakkasi (1986) yang menyatakan bahwa sekum mempunyai fungsi
seperti pada ruminansia yaitu tempat fermentasi serat kasar dan karbohidrat oleh
mikroorganisme, sintesis asam-asam amino atau protein dan vitamin B dan K oleh
mikroorganisme. Kelinci memiliki sekum yang besar tetapi tidak mampu
mencerna bahan-bahan organik dan serat kasar dari hijauan sebanyak yang dapat
dicerna oleh ternak herbivora lainnya. Berbentuk seperti kantung berwarna hijau
tua keabu-abuan. Di dalam sekum terjadi pencernaan selulosa. Hal ini didukung
oleh pendapat dari Aminudin (1996) yang menyatakan bahwa pencernaan selulosa
di sekum dilakukan oleh bakteri yang menghasilkan asam asetat, propionat, dan
butirat.
2.2.6. Usus Besar
Hasil pengamatan diperoleh panjang usus besar kelinci 48 cm dan
lebarnya 0,3 cm. Usus besar merupakan tempat terjadinya penyerapan air utama
dan terjadi di dalam kolon. Hal ini sesuai dengan pendapat dari Parakkasi (1986)
yang menyatakan bahwa kelinci mempunyai duodenum yaitu kolon besar yang
16
kapasitas utamanya kurang lebih dua kali sekum kolon kecil sehingga mampu
untuk menyerap air. Usus besar pada kelinci lebih menonjol dibandingkan yang
lainnya, hal ini didukung oleh pendapat dari Frandson (1992) yang menyatakan
bahwa variasi pada usus besar dari satu spesies ke spesies lain jauh lebih
menonjol dibandingkan dengan usus halus.
2.2.7. Anus
Anus merupakan bagian akhir dari saluran pencernaan. Anus dikontrol
oleh otot-otot spinter halus. Anus merupakan bagian terminal dari saluran
pencernaan dan kulit. Hal tersebut sesuai dengan pendapat Frandson (1992) yang
menyatakan bahwa anus dikontrol oleh otot-otot spinter halus. Hal tersebut juga
diperkuat oleh Blakely dan Bade (1994) yang berpendapat bahwa saluran
pencernaan pseudoruminansia yang paling akhir adalah anus dan sebagai saluran
untuk mengeluarkan feses.
2.3. Perbedaan Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia dan Pseudo–
Ruminansia
Perbedaan sistem pencernaan makanan pada hewan ruminansia, tampak
pada jumlah lambung dan mempunyai fungsi lambung yang berbeda-beda.
Abomasum ruminansia mempunyai fungsi yang sama dengan lambung non-
ruminansia dan pseudoruminan, sehingga abomasum disebut pula sebagai
lambung sejati. Ternak ruminansia, proses fermentasi terjadi di rumen. Sedangkan
pada ternak pseudo-ruminan, proses fermentasi terjadi di sekum. Pada ternak
ruminansia terjadi proses mamah biak sedangkan pada ternak pseudo ruminansia
17
tidak terjadi proses memamah biak. Pada ternak ruminansia terjadi proses mamak
biak sedangkan pada ternak pseudo-ruminansia tidak terjadi proses memamah
biak. Hal ini sesuai dengan pendapat Tillman et al., (1991) yang mengatakan
ternak ruminansia sangat berbeda dengan ternak mamalia lain karena ruminansia
mempunyai lambung besar yaitu abomasum, lambung muka yang membesar dan
memiliki tiga ruangan yaitu rumen, retikulum dan omasum. Lambung ruminansia
berkembang karena sebagai tempat fermentasi serat kasar yang dimakan oleh
ternak. Sedangkan ternak non rumiansia memiliki tembolok, gizzard, dan sekum
yang tidak berkembang dan ternak pseudoruminansia memilik sekum yang
berkembang sebagai tempat pencernaan fermentatif. Hal ini sesuai dengan
pendapat Parakkasi (1986) yang mengatakan bahwa pembentukan sekum akan
menyebabkan pembesaran pada kolon, tanpa sekum tidak ada coprophagi.
18
BAB III
KESIMPULAN
Ruminansia adalah ternak atau hewan pemakan tumbuhan yang
mempunyai empat bagian perut, yaitu rumen, retikulum, omasum, dan,
abomasum. Saluran pencernaan hewan ruminansia adalah mulut, esofagus,
lambung yang memiliki 4 bagian yaitu rumen, retikulum, omasum, abomasum,
usus halus, usus besar, sekum, dan anus. Sedangkan Pseudo–ruminansia adalah
hewan monogastrik yang memilki lambung tunggal dan sederhana. Saluran
pencernaan hewan pseudo-ruminansia adalah mulut, esofagus, lambung, usus
halus, sekum, usus besar dan anus.
Perbedaan pencernaan ruminansia dan pseudo-ruminansia ialah pada
ruminansia memiliki lambung yang berkembang sedangkan pseudo-ruminansia
tidak berkembang. Perbedaaan kedua adalah sekum pada pseudoruminansia lebih
besar dibanding ruminansia karena berkembang. Perbedaan ketiga adalah
ruminansia dapat mencerna serat kasar, sedangkan paseudo-ruminansia tidak
dapat mencerna serat kasar. Lambung pada psudoruminansia mempunyai fungsi
sebagai tempat pencernaan fraksi serat kasar oleh mikroba untuk fermentasi.
19
DAFTAR PUSTAKA
Akoso, B. T. 2002. Kesehatan Unggas. Kanisius, Yogyakarta.
Aminudin. 1996. Hijauan Makanan Ternak. Kanisius, Yogyakarta.
Blakely, J. dan Bade, D. H. 1994. Ilmu Peternakan Edisi Keempat. Gadjah Mada
University Press, Yogyakarta.
Campbell, N.A., Reece, J.B., dan Nitchel, L.G. (2004). Biologi: Edisi Kelima Jilid
3. Erlangga, Jakarta.
Frandson, P. D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak Cetakan Ke-2. Gajah Mada
University Press, Yogyakarta.
Kamal, M. 1994. Nutrisi Ternak I. Laboratorium Makanan Ternak Jurusan Nutrisi
Makanan Ternak. Fakultas Peternakan UGM, Yogyakarta.
Kartadisastra, H. R. 1997. Pakan Ternak. Kanisius, Yogyakarta.
Parakkasi, A. 1986. Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak Monogastrik. Universitas
Indonesia Press, Jakarta.
Rianto, E dan E. Purbowati. 2009. Panduan Lengkap Sapi Potong. Penebar
Swadaya, Jakarta.
Satter and Roffler. 1981. Comparative Anatomy of the Vertebrates. 9rd. McGraw-
Hill Higher International. Editional Biological Science Series, Singapura.
Siregar. 1994. Penggemukan Sapi. Penebar Swadaya, Jakarta.
Srigandono B. 1986. Ilmu Unggas Air. Gadjah Mada University Press,
Yogyakarta.
Thakur. L. K. And P. G. Puranik. 1981. Rabbit A Mammalian Type. S. Chand and
company, Ltd. Ramnager. New Delhi.
Tillman, A.D., H. Hartadi, S. Reksohadiprojo, S. Prawirokusumo, S.
Lebdosoekojo. 1991. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Gadjah Mada University
Press, Yogyakarta.
Tillman, A.D., H. Hartadi, S. Reksohadiprojo, S. Prawirokusumo, S.
Lebdosoekojo. 1998. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Gajah Mada University
Press : Yogyakarta.
20
Widayati, D.T, Widayati., Ismaya., S. Bintara. 2008. Handout Ilmu Reproduksi
Ternak. Fakultas Peternakan. Universitas Gadjah Mada.Yogyakarta.
ACARA II
PEMBUATAN APUS DARAH, PENGUKURAN
KADAR HEMOGLOBIN, HEMATOKRIT,
PENGHITUNGAN LEUKOSIT
DAN ERITROSIT DARAH
21
BAB I
METODELOGI
Praktikum Fisiologi Ternak dengan materi Apus Darah, Perhitungan
Kadar Hematokrit, Perhitungan Kadar Hemoglobin pada darah Kelinci
dilaksanakan pada hari Kamis tanggal 23 Mei 2013 pada pukul 09.00 - 11.00 WIB
dan Perhitungan Jumlah Eritrosit dan Leukosit pada darah Ayam Broiler Jantan
dilaksanakan pada hari Kamis tanggal 30 Mei 2013 pada pukul 09.00 - 11.00 WIB
di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia Ternak, Fakultas Peternakan dan
Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.
1.1. Materi
Alat yang digunakan pada praktikum pembuatan apus darah adalah kaca
objek untuk tempat mengambil larutan yang akan diteteskan kedalam darah, pipet
tetes untuk mengambil larutan yang akan diteteskan ke dalam darah dan
mengambil larutan giemsa, mikroskop untuk melihat atau mengamati bagian sel
dalam darah, bunsen digunakan untuk memfiksasi preparat, termometer Sahli
yang terdiri dari pipet tetes untuk mengambil HCl 0,1 N, pipet hemoglobin untuk
mengambil darah kelinci pada tabung reaksi, pengaduk gelas untuk mengaduk
larutan HCl dengan darah, blok komparator untuk mengukur kadar hemoglobin,
tabung rekasi untuk menempatkan reaktan atau darah, tabung mikrokapiler untuk
penempatan darah agar darah tidak mengalir, sentrifuse untuk memusingkan
tabung kapiler yang didalamnya terdapat darah dalam mikrokapiler, tabung
22
kapiler sebagai tempat tabung mikrokapiler ketika dimasukkan kedalam
sentrifuse, junetsky untuk menetapkan nilai hematokrit, pipet leukosit skala 11 dan
selang penyedot untuk menghisap darah, pipet eritrosit skala 101 dan selang
penyedot untuk menghisap darah, bilik hitung Improve Neubeur sebagai tempat
meletakkan darah yang akan diamati, dan hand counter sebagai alat untuk
menghitung jumlah leukosit. Bahan yang digunakan adalah darah kelinci dan
ayam broiler jantan yang digunakan untuk sampel, aquades yang digunakan untuk
membersihkan kaca objek sebelum ditetesi darah dan sesudah ditetesi darah,
larutan giemsa untuk melakukan pewarnaan pada preparat apus darah agar mudah
terlihat, alkohol 70 % untuk membersihkan kaca objek setelah dicuci dengan
aquades, larutan HCl 0,1 N untuk membentuk asam hematin dengan campuran
darah serta aquades sebagai pengencer, larutan Turk sebagai pengencer darah
untuk leukosit, dan Hayem sebagai pengencer darah untuk eritrosit.
1.2. Metode
1.2.1. Pembuatan Preparat Apus Darah Ayam
Membersihkan 2 kaca objek munggunkan akuades dan alkohol 70 %.
Mengambil darah kelinci satu tetes, meletakkan darah kelinci pada kaca objek
pertama kemudian mendorongnya dengan kaca objek kedua sampai darah merata
memenuhi garis batas objek kedua. Memfiksasi darah diatas bunsen. Melakukan
pewarnaan dengan pewarna giemsa. Mengeringkan kaca objek yang sudah
diwarnai dengan pewarna giemsa diatas bunsen. Mengamati menggunakan
23
mikroskop dengan perbesaran 40 kali. Menggambar eritrosit, leukosit dan
trombosit yang terlihat pada mikroskop.
1.2.2. Pengukuran Kadar Hemoglobin
Mengisi HCl 0,1 N ke dalam tabung pengukur sampai angka 2.
Menghisap darah menggunakan pipet hemoglobin sampai skala 20. Memindahkan
ke tabung sahli dan mengaduk dengan menggunakan pengaduk selama 3 menit,
memasukkan tabung ke dalam blok komparator, melakukan pengenceran dengan
aquades sampai tabung memiliki warna yang sama dengan blok komparator.
Menghitung kadar hemoglobin dengan membaca tinggi permukaan cairan dalam
tabung penguku serta mencatat hasilnya di buku praktikum.
1.2.3. Penetapan Nilai Hematokrit
Mengisi tabung mikrokapiler dengan darah kelinci. Menutup salah satu
ujung tabung mikrokapiler dan selanjutnya memasukkan ke dalam sentrifuse
selam 5 menit, dengan kecepatan 3000 rpm. Membaca nilai hematokrit dengan
menggunakan grafik atau alat khusus yang disebut Junetsky kemudian mencatat
hasilnya di buku praktikum.
1.2.4. Perhitungan Jumlah Leukosit
Menghisap darah dengan pipet eritrosit dengan skala 0.5. Membersihkan
ujung pipet dengan kertas filter. Menghisap larutan Turk dengan cepat dengan
skala 11. Melepas pipet karet penghisap dan memegang ujung pipet antara ibu jari
24
dan telunjuk atau jari tengah, kemudian mengocok dengan memutar-mutar
pergelangan tangan membentuk angka 8 selama 3 menit. Membuang cairan yang
tidak mengandung sel darah merah beberapa tetes dengan meniup perlahan-lahan.
Meneteskan larutan sel darah merah tersebut kedalam kamar hitung improve
neubauer kemudian ditutup dengan kaca penutup. Mengamati dibawah mikroskop
dengan perbesaran objektif 10 kali, setelah mendapat kotak hitungannya, memulai
menghitung semua leukosit dari 4 kotak besar dengan menggunkan hand counter,
menghitung perhitungannya dengan menggunakan rumus 4 X 10/4 X 20 X L dan
mencatat hasilnya di buku praktikum.
1.2.5. Perhitungan Jumlah Eritrosit
Menghisap darah dengan pipet eritrosit dengan skala 0,5. membersihkan
ujung pipet dengan kertas filter, melakukan prosedur ini dengan cepat, teliti dan
hati-hati. Menghisap larutan hayem dengan skala 101. Melepas pipet karet
penghisap dan memegang ujung pipet menggunakan telunjuk atau jari tengah,
mengocok dengan membentuk angka 8 selama 3 menit. Membuang cairan yang
tidak mengandung sel darah merah beberapa tetes. Meneteskan larutan sel darah
merah tersebut ke dalam kamar hitung improve neubauer kemudian ditutup
dengan kaca penutup. Mengamati dibawah mikroskop dengan perbesaran objektif
10 kali, setelah mendapat kotak hitungannya, memulai menghitung semua eritrosit
dan 5 kotak dari 25 ruangan per kotak kecil dengan menggunakan hand counter,
menghitung perhitungannya dengan menggunakan rumus 50 X 200 X E kemudian
mencatat hasilnya di buku praktikum.
25
BAB II
HASIL DAN PEMBAHASAN
2.1. Uji Apus Darah
Berdasarkan hasil pengamatan diperoleh hasil sebagai berikut :
Perbesaran 40 x
Perbesaran 100 x
Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013
Ilustrasi 3. Preparat Apus Darah Perbesaran 40X dan 100X
Keterangan : 1. Leukosit
2. Eritrosit
3. Trombosit
Hasil praktikum pembuatan preparat apus darah kelinci pada perbesaran
40 kali, bagian-bagian darahnya tidak terlihat secara jelas. Namun pada
perbesaran 100 kali terlihat bagian-bagian dari darah yaitu leukosit, eritrosit, dan
trombosit. Hal ini sesuai dengan pendapat Soewolo (2005) bahwa komponen
seluler darah terdiri dari leukosit, eritrosit, dan trombosit. Pengamatan preparat
apus darah kelinci dengan perbesaran 40 kali hanya tampak berupa titik–titik dan
tidak ada perbedaan yang jelas antara tiap komponen. Sedangkan pada
1
2
3
26
pengamatan 100 kali dapat terlihat jelas bentuk antara tiap komponen. Hal ini
sesuai dengan pendapat Dellman dan Brown (1999) bahwa sel darah hanya dapat
diamati dengan mikroskop,semakin besar perbesaran objek semakin jelas yang
diamati, eritrosit akan tampak seperti dua bulan sabit berwarna merah pada
intinya, leukosit berupa cairan berwarna putih kekuningan, sedangkan trombosit
merupakankeping-keping darah yang dapat menghasilkan benang-benang fibrin.
2.2. Penetapan Kadar Hemoglobin
Berikut ini adalah hasil pengamatan penetapan kadar hemoglobin darah
kelinci :
Tabel 1. Penetapan Kadar Hemoglobin
Jenis Darah Kadar Hemoglobin (g/ml)
Kelinci 8,4
Kelinci 10,6
Rata-rata 9,5
Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.
Berdasarkan hasil pengamatan pada praktikum Fisiologi Darah
didapatkan bahwa kadar Hemoglobin (Hb) pada tabung pertama 8,4 g/ml
sedangkan pada tabung kedua 10,5 g/ml, maka diperoleh rata-rata sebesar 9,5
g/ml. Hasil pengamatan kadar hemoglobin pada darah kelinci tersebut
menunjukkan bahwa kadar darah kelinci berada pada kisaran normal, berarti
kelinci dalam keadaan sehat, pemberian pakan yang cukup, dan tidak terjangkit
penyakit. Hal tersebut sesuai dengan pendapat Gutyon (1989) bahwa jumlah dan
presentase hemoglobin dalam sel terletak dalam kisaran normal saat sehat, dan
tidak akan meningkat melampaui batas kecuali terdapat gangguan metabolik
27
tubuh. Selain itu Hb berfungsi untuk mengikat oksigen dan membawa oksigen
tersebut keseluruh tubuh. Hal ini sesuai dengan pernyataan Frandson (1992) yang
menyatakan bahwa Hb dalam darah membawa oksigen dari paru-paru keseluruh
jaringan tubuh dan membawa kembali karbondioksida dari seluruh sel ke paru-
paru untuk dikeluarkan dari tubuh.
2.3. Kadar Hematokrit
Berdasarkan hasil pengamatan pada kadar hematokrit darah didapatkan
nilai sebesar 27%. Hal ini tidak sesuai dengan pendapat dari Subowo (2009) yang
menyatakan bahwa dalam penentuan kadar hematokrit kelinci normal adalah 39%.
Perbedaan kadar hematokrit ini disebabkan darah yang disimpan selama berhari-
hari didalam kulkas. Uji hematokrit dimulai dari mengisi tabung hematokrit,
melakukan sentrifusi hingga mendapatkan hasilnya secara langsung meggunakan
grafik atau alat khusus. Hal ini sesuai dengan pendapat Frandson (1992) bahwa
penetapan nilai hematokrit dilakukan dengan cara mengisi tabung hematokrit
dengan darah yang diberi zat agar tidak menggumpal, kemudian dilakukan
sentrifusi sampai sel-sel menggumpal di bagian dasar. Tes terhadap nilai
hematokrit biasanya dilakukan untuk mengetahui potensi terhadap berbagai
penyakit darah. Hal ini sesuai dengan pendapat dari Syarifan (2011) yang
menyatakan bahwa nilai hematokrit yang lebih rendah dari nilai normal dapat
mengindikasikan anemia dan kekurangan darah. Dan nilai hematokrit yang lebih
tinggi dari nilai normal dapat mengindikasi dehidrasi (polistemia).
28
2.4. Perhitungan Jumlah Leukosit
Berikut ini adalah hasil perhitungan jumlah leukosit dalam bilik hitung :
90 86
45 13
I II
III IV
Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.
Ilustrasi 4. Bilik Hitung Improve Neubauer Leukosit
Hasil perhitungan kadar leukosit sebagai berikut:
= 16,512 butir/mm3
Berdasarkan hasil percobaan diperoleh hasil eritrosit 16.572,5 butir/mm3.
Hal ini tidak sesuai dengan pendapat Pearee (1995) bahwa dalam setiap mm3
darah terdapat 6000 sampai 10.000 sel darah putih. Perbedaan ini dimungkinkan
62 69
80 88
91 100
113 69
64 75
112 94
29
adanya perbedaan umur, aktifitas sehari-hari, stres, dan sistem pemeliharaan.
Leukosit tidak berwarna, bersifat bening dan bentuknya tidak tetap seperti
amoeba. Jumlah sel leukosit pada umumnya dibawah jumlah sel eritrosit dan
bervariasai tergantung dari jenis hewannya dan mengalami fluktuasi. Hal ini
sesuai dengan pendapat Dellmann dan Brown (1989) yang menyatakan bahwa
fluktuasi dalam jumlah leukosit pada tiap individu cukup besar pada kondisi
tertentu, misalnya stress, aktifitas fisiologis, gizi, umur dan lain-lain.
2.5. Perhitungan Jumlah Eritrosit
Berikut ini adalah hasil perhitungan jumlah eritrosit dalam bilik hitung :
118 103
111
98 82
Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013
Ilustrasi 5. Bilik Hitung Improve Neubauer Eritrosit
Hasil perhitungan kadar eritrosit sebagai berikut:
Jumlah eritrosit = 118 + 103 + 111 + 98 + 82 = 512
Nilai kadar eritrosit = 10.000 x 512
= 5.120.000 butir/mm3
30
Berdasarkan praktikum diperoleh hasil perhitungan pada darah ayam
broiler jantan terdapat 5.120.000 butir eritrosit/mm3. Hal ini tidak sesuai dengan
pendapat Frandson (1992) bahwa jumlah eritrosit pada unggas berkisar antara
1,35 - 5,00 juta/mm3, jadi jumlah eritrosit pada unggas yang digunakan melebihi
dari batas normal. Eritrosit akan rusak jika masa tumbuhnya lebih dari 120 hari.
Hal ini sesuai dengan pendapat Dellmann dan Brown (1989) yang menyatakan
bahwa secara normal jangka hidup eritrosit berkisar antara 120 hari, setelah
jangka hidupnya habis maka akan rusak dan dikeluarkan dari peredaran darah.
Eritrosit tua biasanya hancur dalam limpa, sum-sum tulang dan hati. Zat besi dari
hemoglobin dirombak dan digunakan untuk membentuk eritrosit baru.
31
BAB III
KESIMPULAN
Berdasarkan praktikum yang telah dilaksanakan dapat disimpilkan bahwa
hematokrit adalah presentase volume darah total yang mengandung eritrosit.
Hemoglobin berfungsi mengangkut atau alat transport bagi oksigen dan
karbondioksida. Sedangkan pembuatan preparat apus adalah suatu sarana yang
digunakan untuk menilai berbagai unsur sel darah tepi seperti eritrosit, leukosit
dan trombosit. Jumlah leukosit dan jumlah eritrosit pada ayam lebih tinggi dari
standar, perbedaan ini kemungkinan disebabkan faktor seperti berbeda umur,
kondisi ayam, dan jenis ayam.
32
DAFTAR PUSTAKA
Dellmann, H. D., Esther, M. B., 1989. Buku Teks Histologi Veteriner. Penerbit
Universitas Indonesia Press, Jakarta.
Frandson R.D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak. Gadjah Mada University
Press, Yogyakarta.
Guyton, A.C., 1989. Buku Teks Fisiologi Kedokteran. Penerbit Buku Kedokteran
EGC, Jakarta.
Pearce, E., 1995. Anatomi dan Fisiologis Untuk Paramedis. Gramedia Pustaka
Utama, Jakarta.
Soewolo, M. Pd. 1999. Fisiologi Manusia. FMIPA UNM, Malang.
Subowo. 2009. Histologi Umum. Jakarta, Sagung Seto, Jakarta.
Syarifan, E. 2011. Panduan Pratikum Fisiologi Hewan. Universitas Gajah Mada,
Yogyakarta.
33
LAMPIRAN
Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Ruminansia
Tabel 2. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Ruminansia
Kompartmen Panjang Lebar
Esofagus 32 cm 1,5 cm
Rumen 29 cm 20,5 cm
Retikulum 9 cm 9,5 cm
Omasum 8,5 cm 7 cm
Abomasum 23 cm 4,5 cm
Usus Kecil 1402 cm 1 cm
Usus besar 296 cm 2,5 cm
Sekum 4 cm 4 cm
Sumber: Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.
Daftar Anatomi Saluran Pencernaan Pseudo-Ruminansia
Tabel 3. Hasil Pengamatan Organ Pencernaan Pseudo-Ruminansia
Kompartmen Panjang Lebar
Esofagus 2 cm 0,4 cm
Lambung
Usus halus
7 cm
133 cm
3 cm
0,5 cm
Sekum 20 cm 1,5 cm
Usus besar 48 cm 0,3 cm
Anus 2 cm 0,4 cm
Sumber: Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2013.